NASBAとCRISPRで迅速診断テストが進化中
新しい検査方法で、少ない人手でウイルスの検出が早くなるって。
― 1 分で読む
目次
最近、ウイルスや他の病原体をすぐに検出できる新しいタイプの検査を作ることに対する関心が高まってるんだ。特にCOVID-19のパンデミックの時に、その必要性が明らかになったよ。従来の検査方法は、ケースが増えた時に感じるほど速く広がりがなかったからね。通常、利用可能な最高の検査、RT-PCRなどは、複雑な手続きや専門のプロが必要だから、地元のクリニックや自宅で簡単に使うには向いてないんだ。
目指してるのは、人の関与を最小限に抑え、シンプルな手続きでできる迅速な検査を開発すること。これらの検査は素早く結果が出て、操作に必要なステップも少なくなってる。最近の多くの検査はウイルスの特定の遺伝子配列を増幅して、これを検出することに焦点を当ててる。特に注目すべき方法は、ループ媒介等温増幅(LAMP)やリコンビナースポリメラーゼ増幅(RPA)だ。この方法は検査プロセスを速めて、即時結果を提供するようなシンプルな検出方法と一緒に使えるんだ。妊娠検査みたいな lateral flow assay 形式でね。
さらに進めるために、研究者たちは信頼性のある現場で結果を出せるポータブルデバイスやコンパクトなラボキットを作ってる。そんな中で、新しい診断テストが開発されて、特定のRNA配列をターゲットにしてる。これは核酸配列増幅法(NASBA)という方法を使ってウイルスからRNAの量を増やし、CRISPR技術を利用してウイルスの存在を示す検出可能な信号を作る仕組みなんだ。
テストの仕組み
新しいテストはいくつかのステップから成り立ってる。まず、NASBAが3つの酵素、逆転写酵素、RNase H、T7 RNAポリメラーゼの組み合わせを使ってターゲットRNAを増幅する。プロセスは、ウイルスからの一本鎖RNAを二本鎖DNAに変換してT7プロモーターを持たせるところから始まる。このDNAは再びRNAに変換されて、アクティベーターRNAが作られる。このアクティベーターRNAは、CRISPR-Casシステムを使った検出ステップを引き起こすために重要なんだ。
簡単に言うと、アクティベーターRNAがあると、Cas13a酵素に認識される。Cas13aがアクティベーターRNAを見つけると、特定のRNAレポーターモルクルを切って、陽性のテスト結果を示す蛍光信号を生成する。この方法はフレキシブルで、使うプライマーやガイドRNAは簡単に変更できるから、いろんなRNA配列を検出できるんだ。
NASBAの大きな利点の一つは、LAMPのような他の方法と比べて低温で動作すること。これにより、特別な加熱機器が不要で、現場での使用が楽なのがいいところだ。さらにコスト効率も良く、特許に縛られないから、革新や広い利用が可能なんだ。
テストの構成要素
酵素とプライマー
テストはRNAを増幅するのを助ける特定の酵素を利用してる。適切な酵素の選択は重要で、使用する酵素によってテストの効果が変わることがあるからね。また、増幅プロセスに必要な短いDNA鎖、すなわちプライマーのデザインも重要だ。プライマーはRNAの柔軟で構造が少ない部分をターゲットにするように設計されるべきだね。
CRISPR-Cas13a
このセットアップでのCas13aの役割は、ウイルスの存在を検出するために不可欠だ。Cas13aはRNAにガイドされていて、ターゲットRNAに特有にデザインされたガイドRNA(gRNA)がCas13aを誘導してレポータRNAを切る。この切断アクションが信号を放出して、標的ウイルスがサンプルに含まれているかどうかを示すんだ。
テストと最適化
テストが効果的であることを確保するために、さまざまな条件を試す必要がある。研究者たちは、酵素の異なる組み合わせ、RNA濃度、その他の要因を考慮して、テストのパフォーマンスを最適化してる。これらのテストは通常何度も行われて、多くのデータが集まるんだ。
テストの効率
効率は主に、テストがどれだけ早く正確に結果を出せるかに依存する。研究者たちは、酵素の濃度が信号に与える影響を調べた。そして、反応をシミュレーションするモデルを使って、さまざまな条件下でのシステムの挙動を予測できるようにしてる。この種のモデリングは、どのセットアップが最良の結果をもたらすかを見つけるのに役立つんだ。
ハイスループットスクリーニング
テストの改善には、ハイスループットスクリーニングが大いに役立つ。これにより、研究者は異なる条件の組み合わせを同時に多数テストできるので、最適化プロセスが大幅に加速される。RNAの量を変えたり、酵素の濃度を調整したりすることで、反応の変化が結果にどう影響するかを確認できるんだ。
メカニズムモデルの開発
数学はテストの仕組みを理解するために重要な役割を果たしてる。反応のさまざまな要素とそれらが互いにどのように影響し合うかを説明するために、メカニズムモデルが開発された。このモデルを使えば、異なる条件下でのテストの挙動をシミュレーションできて、実際の状況で何が起こるかの洞察を得られるんだ。
パラメータ感度分析
このモデルの構築時に、研究者たちは感度分析を行って、どのパラメータがテストの結果に最も大きな影響を与えるかを解明した。特に、システム内の要素の結合率や非活性化率などの特定の側面が、変化に対して非常に敏感であることがわかった。この発見はテストの最適化において重要で、どの要因を注意深くコントロールすればパフォーマンスを向上できるかを示してくれるんだ。
検出限界
診断テストの重要なパフォーマンス指標の一つは、検出限界、つまり信頼性を持って特定のRNAの最小量を識別できるかということだ。この新しく開発されたテストは、ウイルスからのRNAの非常に低濃度を検出する能力を示していて、迅速診断ツールとしての効果を示唆してるんだ。
結論
NASBAやCRISPRのような新しい技術を組み合わせることで、研究者たちはさまざまな場面で使えるRNA検出の迅速なテストの開発に成功してる。これらの進展は公衆衛生の反応を改善する可能性を秘めていて、特にパンデミックの際に有効だ。これらのテストを最適化し、慎重なモデリングを通じて基礎メカニズムを理解し、ハイスループットスクリーニングを行うことで、この重要なヘルスケア分野での革新を進めていくんだ。将来的には、これらの方法を実際のシナリオでテストして、その結果に基づいてテストを洗練させることを計画してるよ。この実験的手法と計算的手法を組み合わせたアプローチは、診断において大きな前進を示しているんだ。
タイトル: Developing, characterizing and modelingCRISPR-based point-of-use pathogen diagnostics
概要: Recent years have seen intense interest in the development of point-of-care nucleic acid diagnostic technologies to address the scaling limitations of laboratory-based approaches. Chief among these are combinations of isothermal amplification approaches with CRISPR-based detection and readouts of target products. Here, we contribute to the growing body of rapid, programmable point-of-care pathogen tests by developing and optimizing a one-pot NASBA-Cas13a nucleic acid detection assay. This test uses the isothermal amplification technique NASBA to amplify target viral nucleic acids, followed by Cas13a-based detection of amplified sequences. We first demonstrate an in-house formulation of NASBA that enables optimization of individual NASBA components. We then present design rules for NASBA primer sets and LbuCas13a guide RNAs for fast and sensitive detection of SARS-CoV-2 viral RNA fragments, resulting in 20 - 200 aM sensitivity without any specialized equipment. Finally, we explore the combination of high-throughput assay condition screening with mechanistic ordinary differential equation modeling of the reaction scheme to gain a deeper understanding of the NASBA-Cas13a system. This work presents a framework for developing a mechanistic understanding of reaction performance and optimization that uses both experiments and modeling, which we anticipate will be useful in developing future nucleic acid detection technologies.
著者: Julius B Lucks, J. K. Jung, K. S. Dreyer, K. E. Dray, J. J. Muldoon, J. George, S. Shirman, M. D. Cabezas, A. E. D'Aquino, M. S. Verosloff, K. Seki, G. A. Rybnicky, K. K. Alam, N. Bagheri, M. C. Jewett, J. N. Leonard, N. M. Mangan
最終更新: 2024-07-03 00:00:00
言語: English
ソースURL: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.07.03.601853
ソースPDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.07.03.601853.full.pdf
ライセンス: https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/
変更点: この要約はAIの助けを借りて作成されており、不正確な場合があります。正確な情報については、ここにリンクされている元のソース文書を参照してください。
オープンアクセスの相互運用性を利用させていただいた biorxiv に感謝します。