Die Rolle von zirkulierenden Tumorzellen bei Lungenkrebs
Lerne, wie CTCs die Krebsbehandlung und -überwachung beeinflussen können.
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Inhaltsverzeichnis
Zirkulierende Tumorzellen (CTCs) sind Krebszellen, die sich von Tumoren lösen und durch das Blut reisen. Sie können vom Haupttumor oder von anderen Tumoren stammen, die an anderen Stellen im Körper gebildet wurden. CTCs sind wichtig, weil sie Informationen über die Vielfalt der Krebszellen bei einem Patienten und deren Fähigkeit, sich in andere Bereiche auszubreiten, liefern. Durch das Studium von CTCs können Ärzte mehr darüber erfahren, wie Krebs voranschreitet und wie er auf Behandlungen reagieren könnte.
Warum sind CTCs wichtig?
CTCs bieten eine Möglichkeit, Krebs zu überwachen, ohne invasive Verfahren wie Biopsien durchführen zu müssen. Ihre Anwesenheit im Blut deutet oft auf eine schlechtere Prognose für die Patienten hin. Die Verfolgung der Anzahl von CTCs kann Ärzten helfen zu verstehen, wie gut eine Behandlung wirkt oder ob Krebs nach der Behandlung wahrscheinlich zurückkommt. Bei Patienten mit nicht-kleinzelligem Lungenkrebs (NSCLC) sind die CTC-Zahlen normalerweise niedrig, aber diese Werte können trotzdem nützliche Informationen liefern, besonders in den frühen Phasen der Krankheit.
Wie werden CTCs nachgewiesen?
In den letzten Jahren haben technologische Fortschritte das Erkennen von CTCs erleichtert. Hochtechnologische Methoden sind jetzt verfügbar, die sehr kleine Mengen dieser Zellen im Blut identifizieren können. Eine Möglichkeit, CTCs zu untersuchen, ist die Anwendung von Einzelzell-Multi-Omics-Technologien, die einzelne CTCs analysieren, um ihre Eigenschaften zu verstehen. Studien haben gezeigt, dass CTCs sich stark voneinander unterscheiden können und oft früh im Krankheitsverlauf auftreten. Diese Variation unter den CTCs deutet darauf hin, dass sie eine Rolle dabei spielen könnten, Krebs nach der Behandlung zurückzubringen.
CTCs und Lungenkrebs
Bei Lungenkrebs, insbesondere NSCLC, kann das Finden und Zählen von CTCs eine Herausforderung sein, weil sie oft selten sind. Forschungen haben gezeigt, dass verschiedene Methoden zur Blutentnahme unterschiedliche Mengen an CTCs liefern können. Zum Beispiel hat Blut, das während einer Operation aus der Lungenvene entnommen wird, tendenziell mehr CTCs als Blut, das aus einer anderen Vene im Körper abgenommen wird. Dieses Ergebnis zeigt die Notwendigkeit verbesserter Methoden zur Sammlung und Analyse von CTCs, um Behandlungentscheidungen zu unterstützen.
Herausforderungen bei der CTC-Detektion
Auch wenn CTCs wertvolle Informationen für das Management von Krebs liefern können, gibt es immer noch Herausforderungen bei ihrer Verwendung in klinischen Umgebungen. Die Anzahl der CTCs im Blut ist oft sehr niedrig, was das Studium ihrer Eigenschaften erschwert. Dies gilt besonders für frühere Krebsstadien, wo bessere Nachweismethoden den Ärzten helfen könnten, effektivere Behandlungen anzubieten.
In den letzten Jahren wurden verschiedene Technologien zur Isolierung von CTCs aus dem Blut entwickelt. Diese Methoden basieren hauptsächlich auf zwei Strategien: der Verwendung von Antikörpern, die an der Zelloberfläche haften, und Methoden, die auf den physikalischen Eigenschaften der Zellen, wie Grösse oder Form, basieren.
Derzeit gibt es zwei von der FDA zugelassene Geräte zur Anreicherung von CTCs, aber keines ist speziell für Lungenkrebs zugelassen. Der CellSearch®-Test ist bekannt für Brust-, Darm- und Prostatakrebs und zeigt damit eine Lücke in der Technologie zur Erkennung von Lungenkrebs.
Neue Technologien zur CTC-Isolation
In den letzten zehn Jahren hat die Zahl neuer Geräte zur Isolierung von CTCs erheblich zugenommen. Diese Geräte helfen Forschern und Ärzten, CTCs und ihre Rolle bei Krebs besser zu verstehen:
CellMag™-System: Diese Methode nutzt Magnete und Antikörper, um CTCs basierend auf ihren Oberflächenmarkern zu erfassen. Es hat sich als effektiv beim Erfassen von CTCs erwiesen, ist jedoch nur für Forschungszwecke zugelassen.
EasySep™-System: Diese Technologie zielt darauf ab, unerwünschte Zellen im Blut zu entfernen, was die Isolation von CTCs erleichtert. Sie arbeitet schnell, was schnellere Ergebnisse liefert, obwohl die Rückgewinnungsraten im Vergleich zu anderen Methoden geringer sein können.
RosetteSep™-System: Diese Methode verwendet einen speziellen Cocktail, um unerwünschte Blutzellen zu zielen und zu gruppieren, was eine bessere Sammlung von CTCs ermöglicht.
Parsortix®-Systeme: Diese Geräte erfassen CTCs, indem sie deren Grösse und Flexibilität nutzen, und können die Zellen auch für weitere Analysen einfärben. Sie bieten Optionen sowohl für die Färbung im Kassettensystem als auch für die Ernte der Zellen für andere Tests.
Vorbereitung der Zellen für die CTC-Isolation
Um CTCs zu studieren, verwenden Wissenschaftler oft etablierte Krebszelllinien, die aus Krebspatienten im Labor gezüchtete Zellen sind. In unserem Fall wurde eine spezifische Lungenkrebszelllinie, genannt H1975, für Tests verwendet. Diese Zellen können mit einem fluoreszierenden Farbstoff markiert werden, was sie unter dem Mikroskop leichter identifizierbar macht.
Der Vorbereitungsprozess umfasst das Wachsen dieser Zellen in einer speziellen Nährlösung, das Färben mit fluoreszierenden Farbstoffen und dann die Verdünnung, um eine spezifische Konzentration zu erreichen, bevor sie mit Blutproben gemischt werden. Diese gemischte Probe kann dann durch verschiedene CTC-Isolierungstechnologien verarbeitet werden, um zu bestimmen, wie gut jede Methode funktioniert.
Bewertung der CTC-Isolationsmethoden
Um zu vergleichen, wie gut verschiedene CTC-Isolationssysteme funktionieren, wurden mehrere Methoden mit der H1975-Lungenkrebszelllinie getestet. Jede Methode hat ihre eigenen Vor- und Nachteile:
CellMag™ hatte die höchste Rückgewinnungsrate und erfasste etwa 70 % der hinzugefügten Krebszellen. Es basiert auf einer gut etablierten Methode und ist benutzerfreundlich, kann jedoch zeitaufwendig sein.
EasySep™ und RosetteSep™ hatten die niedrigsten Rückgewinnungsraten von etwa 18 % bzw. 25 %. Obwohl diese Methoden schnell und einfach auszuführen sind, erfassen sie möglicherweise aufgrund ihres Designs nicht so viele CTCs.
Parsortix® PR1 zeigte gute Rückgewinnungsraten und war konsistent in den Tests, was eine gründliche Untersuchung nach der Isolation ermöglichte.
Parsortix® PX+, eine verbesserte Version von PR1, bearbeitete Proben schneller. Es war jedoch noch im Test und bot im Vergleich zu PR1 geringere Rückgewinnungsraten.
Ergebnisse und Erkenntnisse
Insgesamt war das CellMag™-System am effektivsten bei der Rückgewinnung von CTCs, während die Parsortix®-Systeme ein gutes Gleichgewicht zwischen Effizienz und Konsistenz zeigten. Die EasySep™- und RosetteSep™-Methoden, obwohl einfacher, lieferten weniger Zellen, was ihre Nützlichkeit in klinischen Umgebungen einschränken könnte.
Darüber hinaus können mehrere Faktoren die Wirksamkeit dieser Methoden beeinflussen, wie viele Krebszellen in das Blut gemischt werden, wie das Blut gesammelt wird und die technischen Fähigkeiten der Forscher, die diese Technologien nutzen.
Fazit
Das Finden und Analysieren von zirkulierenden Tumorzellen ist entscheidend dafür, zu verstehen, wie Krebs sich ausbreitet und wie er auf Behandlungen reagieren könnte. Während verschiedene Technologien existieren, hat jede ihre Stärken und Schwächen. Das CellMag™-System sticht durch seine Effektivität hervor, während Entwicklungen im Parsortix-System vielversprechend für zukünftige Verbesserungen sind.
Zu verstehen, wie man CTCs am besten isoliert und untersucht, kann wertvolle Einblicke in das Krebsmanagement geben, insbesondere bei Typen wie Lungenkrebs, wo aktuelle Methoden keine Genehmigung für die klinische Anwendung haben. Wenn die Technologie weiter fortschreitet, könnten wir effizientere und effektivere Möglichkeiten zur Überwachung und Diagnose von Krebs sehen.
Zukünftige Richtungen
Mit der Weiterentwicklung des Feldes könnte die Kombination verschiedener Isolations-Technologien die Fähigkeit verbessern, eine breitere Palette von CTC-Typen zu erfassen. Weitere Studien mit PatientProben werden auch entscheidend sein, um die Wirksamkeit dieser Systeme in realen Szenarien zu validieren. Letztendlich bleibt das Ziel, die Patientenergebnisse durch bessere Erkennungs- und Behandlungsoptionen zu verbessern.
Titel: A comparative study of circulating tumor cell isolation and enumeration technologies in lung cancer
Zusammenfassung: Circulating tumor cells (CTCs) have potential as diagnostic, prognostic and predictive biomarkers in solid tumors. Despite FDA approval of CTC devices in various cancers, their rarity and limited comparison between analysis methods hinder their clinical integration for lung cancer. This study aimed to evaluate five CTC isolation technologies using a standardized spike-in protocol: the CellMag (EpCAM-based enrichment), EasySep and RosetteSep (blood cell depletion), and the Parsortix(R) PR1 and next generation Parsortix(R) Plus (PX+) (size-based enrichment). The Parsortix(R) systems were also evaluated for any difference in recovery rates between cell harvest versus in- cassette staining. Healthy donor blood (5 mL) was spiked with 100 fluorescently labeled H1975 lung adenocarcinoma cell line, processed through each system and the isolation efficiency was calculated. All tested systems yielded discordant recovery rates with the CellMag having the highest mean recovery (70 {+/-} 14%) followed by the PR1 (in-cassette staining) with a recovery of 49 {+/-} 2% while the EasySep had the lowest recovery (18 {+/-} 8%). The CellMag and Parsortix(R) PR1 may have potential clinical applications for lung cancer patients, albeit needing further optimization and validation.
Autoren: Kathy Gately, V. M. Saini, E. Oner, M. Ward, S. Hurley, B. D. Henderson, F. Lewis, S. P. Finn, J. O'Leary, S. O'Toole, L. O'Driscoll
Letzte Aktualisierung: 2024-02-08 00:00:00
Sprache: English
Quell-URL: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.02.05.578972
Quell-PDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.02.05.578972.full.pdf
Lizenz: https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/
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