CaV1.3カルシウムチャネルのクラスター化を理解する
この研究は、CaV1.3チャネルが心臓細胞でどのように集まって相互作用するかを明らかにしている。
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L型カルシウムチャネル(LTCC)は、心臓筋がどのように収縮するかを調整する重要な役割を果たしているんだ。神経が心臓細胞にアクションポテンシャル(信号)を送ると、これらのチャネルが開いてカルシウムが細胞内に流れ込む。カルシウムの急激な流入は、心臓筋を収縮させるタンパク質を活性化するんだ。CaV1.3は、心臓のリズムと収縮の強さを制御するのを助けるLTCCの一種で、主に心臓の上部の部屋に見られ、別のタイプのCaV1.2よりも低い電位で活性化される。
これらのチャネルは自由に浮遊しているわけじゃなくて、細胞膜の特定の場所に集まる傾向がある。この集まり方はカルシウムを放出するのに役立ち、すべてのチャネルタンパク質が一緒に効果的に働けるようにしている。CaV1.3に関する過去の研究では、その振る舞いが構造や他のタンパク質との関係によって変わることが示されていて、これは心臓細胞での振る舞いにも同じルールが適用されるかもしれないという手がかりを与えている。
最近の実験では、別のタイプのLTCCであるCaV1.2がどのように調整されているかが明らかになった。研究者たちは、チャネルの活動が直接的な化学修飾によって増加するという従来の考え方が間違っていることを発見した。代わりに、Radというタンパク質が追加の化学タグをつけることなくチャネルの活動を高めることがわかった。これらのチャネルを調整するもう一つの方法は、その集まり方に関係しているかもしれない。ただ、これがどのように起こるのか、そして集まりの正確な動きについてはまだよくわかっていない。以前の実験では、Calmodulinという特定のタンパク質がチャネルと相互作用して集まるのを助けていることが示唆されていたが、この集まりを顕微鏡レベルで確認するまでのしっかりとした証拠はなかった。
最近、CaV1.2のようなチャネルが、血管細胞内でPKAというタンパク質によって特定の部分の構造が修飾されたときに、より集まることがわかった。一方、CaV1.3は心臓細胞での集まりに関して十分に研究されていないのは、主に心臓の下部の部屋には見られないからだ。
研究の目標
この研究では、研究者たちは人間の幹細胞から派生したhiPSC-aCMというタイプの細胞を使って、CaV1.3チャネルがどのように集まるかを調べることにした。彼らはCaV1.3チャネルとタグ付けシステムを組み合わせた特別なタンパク質を作成し、これによりリアルタイムでこれらのクラスターを追跡・視覚化できるようにした。さらに、異なるタグ付けシステムを使って、より詳細な小規模のイメージングのための類似のタグ付けバージョンのチャネルを作った。
これらのイメージング技術を使って、彼らはこれらのチャネルが細胞膜の特定のエリアでどのようにグループ化されているかを詳しく見ようとした。これはこれまで明確に定義されていなかったことなんだ。
CaV1.3のクラスターを見つける
まず、研究者たちはhiPSC-aCM細胞を取り、CaV1.3チャネルのタグ付けバージョンを導入した。細胞の電圧変化への反応でこのタグ付けバージョンが適切に機能することを確認した後、先進的なイメージング方法を使って、生きた細胞内でチャネルがどのように配置されているかを見たんだ。
生きた細胞のイメージングでは、タグ付けされたCaV1.3が膜にある特定のスポット状の信号が見つかって、これらのクラスターは従来のイメージング方法では見えにくかったが、より先進的な技術を使うことで明らかになった。これらの画像を解析した結果、集まった信号は平均して直径約120ナノメートルで、クラスターごとに約9つのチャネルが含まれていることがわかった。
先進的なイメージング技術
研究者たちは、STEDとDNA-PAINTという2つの先進的なイメージング方法を使用した。STEDは、従来の共焦点顕微鏡よりも小さい構造を見ることを可能にし、以前は見逃されていた集まったチャネルの配置を明らかにした。DNA-PAINTを使うことで、個々のチャネルタンパク質の正確な位置を特定でき、チャネルがグループを形成していることを確認したが、そういったグループは密接に詰まってはいなかったんだ。
DNA-PAINTを使って、彼らはチャネルの位置を見ることができ、その集まりの中での個々のチャネルタンパク質間の距離も評価できた。興味深いことに、ほとんどのチャネルは互いにかなりの距離を置いていることがわかり、彼らが密に詰まっているという以前の考えを挑戦する結果となった。
チャネルの動き
さらに一歩進んで、研究者たちはこれらのチャネルが集まりの中でどれだけ動き回っているかを調べた。彼らは個々のチャネルとクラスター全体をラベル付けする実験を設計し、その動きを追跡した。彼らは、個々のチャネルは形成したクラスターよりもはるかに移動性が高いことを発見した。これは、クラスター自体は安定している一方で、その中のチャネルはかなり動くことができることを示唆している。
一部のチャネルは移動可能から不動に変わることがあり、これは時々細胞膜の異なるエリア間を切り替えることができることを示している。この動きや切り替えは、クラスターが時間とともにどのように形成され、解散するかの動的な性質をほのめかしている。
他のタンパク質との相互作用
研究者たちはまた、CaV1.3チャネルが細胞内の他のタンパク質とどのように協力するかを調査した。特に、CaV1.3チャネルが心臓細胞内のカルシウム放出ユニット(CRU)を形成することで知られるタンパク質とどのように関連しているかを研究した。これらのCRUは、心臓筋の収縮にとって重要な細胞内のカルシウムの放出に必要なものなんだ。
共焦点顕微鏡法を使って、CaV1.3が他の2つのタンパク質JPH2とRyR2とともに、細胞膜の表面で安定した関連を形成することを発見し、心臓機能にとって重要な強いパートナーシップを示している。
C末端領域の役割
CaV1.3チャネルの重要な部分は、そのC末端領域で、これはチャネルの特定の形によって異なることがある。研究者たちは、この領域がチャネルの集まりに必要かどうかを調査した。彼らはC末端テールのタグ付けバージョンを持つ新しいタンパク質を設計し、これらも集まるかどうかをテストした。短縮形でも集まることができたが、長い形よりも効率は良くなかった。
結果は、C末端テールが集まりにとって重要であっても、唯一の要因ではないことを示唆している。他のタンパク質間の相互作用も、これらのチャネルがどれだけうまく集まるかに寄与している可能性が高い。これは、集まりのプロセスが複雑であり、いくつかの異なるタンパク質と構造要素が関与しているかもしれないことを示している。
結論と今後の方向
この研究で行われたことは、CaV1.3のようなL型カルシウムチャネルがどのように集まり、他の細胞内タンパク質と相互作用するかを理解する重要性を示している。この洞察は、細胞レベルでの心臓機能の理解にとって重要であり、心臓の疾患の新しい治療法の道を開くかもしれない。この研究は、細胞内の複雑な相互作用を探るための先進的なイメージング技術を使う可能性を示している。
今後の研究では、これらのチャネルの動態や相互作用をさらに探求し、異なる要因が集まりや機能にどのように影響するかを見ていくことができる。これは、心臓細胞がどのように機能し、問題が発生したときにどのように治療されるかに関する重要な発見につながるかもしれない。
これらの洞察は、心臓を超えてカルシウムシグナルが重要な他の生物学の分野にも広がる可能性がある。このような詳細なレベルでこれらのシステムを理解することは、研究者が治療法をより効果的にターゲットにし、可能性として新しい治療戦略につながる手助けになるかもしれない。
タイトル: Nanoscale architecture and dynamics of CaV1.3 channel clusters in cardiac myocytes revealed by single channel nanoscopy
概要: The clustering of L-type calcium channels in cardiac myocytes presents an important mechanism for functional regulation of calcium signaling. Here we applied targeted super-resolution imaging techniques for the study of atrial-specific CaV1.3 channel clusters in human iPSC-derived atrial cardiomyocytes (hiPSC-aCM). We thereby clarified cluster localization, dimensions, architecture, and dynamics, which were largely unexplored previously. Live-cell STimulated Emission Depletion (STED) imaging identified that cell surface-localized clusters contained 9 channel molecules within 120 nm diameter on average. DNA Points Accumulation for Imaging in Nanoscale Topography (DNA-PAINT) optimized for molecular mapping revealed an irregular arrangement of channels with significant spacing. Single Particle Tracking (SPT) further evidenced that clustered channels do not associate into rigidly packed structures (oligomers or lattices), but rather co-diffuse in confined and stationary membrane nanodomains. Immunofluorescence showed consistent cell-surface colocalization with Ryanodine Receptor type 2 and Junctophilin-2 forming stable calcium release units, similar to dyadic junctions containing CaV1.2 in ventricular cardiomyocytes. Lastly, novel genetic constructs for live-cell imaging showed that the cytosolic C-terminal tail of CaV1.3 by itself is sufficient for cluster formation. In conclusion, a novel strategy for LTCC clustering studies in atrial cells was established, suitable for a wide range of super-resolution imaging techniques. Based on live-cell STED, DNA-PAINT and SPT data, we propose that CaV1.3 channel clusters consist of mobile individual channels inside defined membrane nanodomains.
著者: Stephan E. Lehnart, N. Schwenzer, R. Tsukanov, T. Kohl, S. Basak, F. Seibertz, N. Voigt, J. Enderlein
最終更新: 2024-02-28 00:00:00
言語: English
ソースURL: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.02.26.582084
ソースPDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.02.26.582084.full.pdf
ライセンス: https://creativecommons.org/licenses/by-nc/4.0/
変更点: この要約はAIの助けを借りて作成されており、不正確な場合があります。正確な情報については、ここにリンクされている元のソース文書を参照してください。
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