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シナプス小胞の自動セグメンテーションの進歩

新しいディープラーニングの方法がシナプス小胞の解析精度を向上させる。

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自動化シナプスイメージング自動化シナプスイメージングのブレイクスルー度を向上させる。ディープラーニングはシナプス小胞の分析精
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細胞はすべての生き物の基本的な構成要素なんだ。細胞にはたくさんの重要なパーツがあって、それぞれ特定の機能を持ってるよ。科学者たちは、これらの小さなコンポーネントやその配置を研究するために、クライオ電子トモグラフィー(cryo-ET)という技術を使ってる。この方法を使うと、研究者たちは細胞の詳細な画像を、構造を保持したまま自然な水分状態で撮影できるんだ。

科学者たちが細胞を見るとき、よくマクロ分子と呼ばれる大きな分子に注目する。もしこれらの分子のコピーがcryo-ETで撮影した画像に十分にあれば、研究者たちはそれが細胞の中でどこにいるかを正確に特定できる。しかし、これらの画像を分析するのは難しいこともある。生物サンプルは電子ビームに敏感で、ノイズの多いデータを持つことがあるからなんだ。

細胞の3D画像を作成するためには、異なる角度から複数の画像を撮る必要があるんだけど、サンプルの形のせいで撮影できる角度が限られているから、情報に隙間ができちゃう。この問題は「欠損くさびアーチファクト」と呼ばれ、特に膜に完全に囲まれた構造のクリアな画像を得るのが難しいんだ。

細胞の中で特に面白いのがシナプス。これは脳の細胞、つまり神経細胞同士がコミュニケーションする特別なエリアなんだ。シナプスは二つの部分からなっていて、信号が始まる前シナプス領域と、信号を受け取る後シナプス領域があるよ。神経細胞は神経伝達物質という化学物質を放出することで信号を送るんだけど、これはシナプス小胞(SV)という小さなパッケージに保存されてるんだ。SVの数や内容物の放出のしやすさは、コネクタという構造によって相互作用に依存してる。

これらのコネクタがどう機能するかを分析するためには、Pytoというソフトウェアを使って、これらの構造を整理したり特定したりするんだけど、Pytoを効果的に使うには、研究者たちがまずSVを正確に特定する必要があるんだ。今はこのプロセスが手作業で行われていて、たった一つの画像セットを処理するのに数日かかることもある。自動化しようとした試みもあったけど、以前の方法は満足のいく結果を出せなかったんだ。

この問題に取り組むために、研究者たちは深層学習というAIの一種に基づく別のアプローチを選んだよ。深層学習の技術の一つに畳み込みニューラルネットワーク(CNN)っていうのがあって、これが似たような研究で画像のセグメンテーションに成功してるんだ。ただ、この方法は視覚的には役立ったけど、Pytoでの構造の正確な特定にはまだ応えられなかった。

いくつかの研究では、CNNがシナプスの2D画像の分析に良い結果を提供できることが示されてるけど、3Dデータは独自のチャレンジを持ってる。通常、cryo-ETでは2D画像が分けられて独立に分析されるため、他の画像から重要なコンテキストが欠けてしまうんだ。これによって、丸いSVが開いているように見えたり、実際には閉じているはずのものがそう見えたりするギャップができる。これを解決するために、研究者たちは統計的方法を使って、これらの構造の見た目を調整するフィッティングステップを作った。

3D画像を扱う最良の方法は、3D版のCNNを使用することなんだけど、いくつかの研究では他のcryo-ETのタスクに3Dネットワークを適用しようとしたけど、詳細な膜のセグメンテーションに特化したものはなかった。

そこで、研究者たちはU-Netと呼ばれる特定のタイプの3D CNNを使うことにしたよ。このネットワークは、ノイズの多い画像で失われた詳細を復元するのに役立つことが示されてる。いくつかの分析には役立ったけど、Pytoに必要な精度にはまだ達してなかった。そこで、研究者たちは初期のセグメンテーションの後に結果を洗練させるための後処理の方法を開発したんだ。

この新しい方法では、セグメント化されたオブジェクトを球体に変えて、そのサイズや位置を調整するんだ。プロセスにはエラーの特定と修正が含まれ、より正確なSVの表現が得られるようになる。これによって、その結果は手動セグメンテーションで得られたものと比較できるようになったんだ。

このシステムはもともとはSVのために作られたけど、細胞の他のタイプの小胞や輸送小胞、分泌小胞にも適用できるし、ちょっとした変更で他の膜で囲まれた構造や細胞膜を正確にセグメントすることもできるかもしれない。

セグメンテーションモデルのトレーニング

SVの手動セグメンテーションの課題を考慮して、研究者たちはこのプロセスを自動化することを目指したんだ。以前に、彼らは複数の画像セットを手動でセグメント化し、それをモデルのトレーニングの参考にした。彼らはラットのシナプトソームの9つのセグメント化された画像のグループを使ってU-Netをトレーニングしたよ。

新しいパイプラインの効果を確認するために、3つの画像セットを分析したんだ。プロセスは、画像を小さなセクションに分けて、それをセグメンテーションネットワークに投入するところから始まる。確率マスクを得たら、パッチを元に戻して完全なマスクを作る。そして、その完全なマスクを洗練させて精度を高めるんだ。

最初は、いくつかの小胞がうまくセグメント化されなかった。近くにあるときに誤って一つのエンティティとして特定されてしまったんだ。これを修正するために、研究者たちは検出設定を調整した。さらに、セグメントの中に小胞の一部だけが含まれていることがあったので、設定を変更して小胞をより正確に捉える必要があったんだ。

セグメンテーションプロセスの後、研究者たちは初期の結果は良さそうに見えたけど、まだ問題があった。時々、小胞がフラットすぎたり、セグメントの中心に入っていなかったりしたんだ。これらのセグメントを洗練させるために、各小胞を球体で表現し、その中心と半径を微調整してた。

研究者たちは、各球体の中心周辺の強度を調べて、セグメント化された小胞が実際の形に合うように調整した。このプロセスは、画像内の小胞をより正確に表現するために重要だったんだ。

改善を行ったものの、いくつかの問題は残った。セグメント化された小胞のいくつかの特性を測定することで、期待されるパターンに合わないアウトライヤーを特定したんだ。統計的手法を使って、これらのアウトライヤーセグメントを捉え、洗練させることができたよ。

パフォーマンスの評価

研究者たちは、自分たちの手法がどれだけうまく機能したかを、セグメンテーションの結果を手動の参照と比較することで評価した。彼らは、予測されたセグメントと実際のものとの類似性を評価するためにダイス係数という指標を使ったんだ。結果は、特に後処理のステップの後に、彼らの手法が精度を大幅に改善したことを示してた。

さらに、チームは自分たちの手法が異なるソースの画像にも適用できることを確認して、汎用性を示したんだ。これによって、ラットのシナプトソームだけでなく、さまざまな細胞タイプにも使えることを意味してるよ。

新しい方法の利点

手動から自動セグメンテーションへの移行は重要で、従来の方法は遅くて限られた範囲にとどまることが多いから、今のシステムを使うことで研究者たちはシナプス全体を以前よりもずっと早く分析できるようになった。さらに、自動的なアプローチは、手動の方法よりも広い分析エリアを可能にするんだ。

研究者たちは、インタラクティブツールとセグメンテーションモデルを統合して、ユーザーが簡単にミスを調整できるようにしてる。この柔軟性は、最も正確な最終結果を保証するんだ。

複雑な3D画像を分析するために特化されたソフトウェアであるPytoは、シナプスの研究に特に役立つんだ。これを使うことで、シナプス機能に欠かせないコネクタやテザーを検出できる。新しく開発されたセグメンテーションツールCryoVesNetは、Pytoとシームレスに連携して、小胞の相互作用に関する貴重な情報を提供するよ。

結論

クライオ-ETにおける自動セグメンテーションの進展は、科学者たちがシナプス小胞やそれに関連する構造を研究する方法に大きな改善をもたらした。深層学習と効率的な後処理技術の組み合わせは、研究者たちにとって効果的で正確な解決策を提供する。この研究分野が進展するにつれて、細胞構造に対するより深い洞察を促すツールは、生命現象の理解を高めるためにますます重要になるだろう。

オリジナルソース

タイトル: CryoVesNet: A Dedicated Framework for Synaptic Vesicle Segmentation in Cryo Electron Tomograms

概要: Cryo-electron Tomography (Cryo-ET) has the potential to reveal cell structure down to atomic resolution. Nevertheless, cellular cryo-ET data is often highly complex, and visualization, as well as quantification, of subcellular structures require image segmentation. Due to a relatively high level of noise and anisotropic resolution in cryo-ET data, automatic segmentation based on classical computer vision approaches usually does not perform satisfactorily. For this reason, cryo-ET researchers have mostly performed manual segmentation. Communication between neurons relies on neurotransmitter-filled synaptic vesicle (SV) exocytosis. Recruitment of SVs to the plasma membrane is an important means of regulating exocytosis and is influenced by interactions between SVs. Cryo-ET study of the spatial organization of SVs and of their interconnections allows a better understanding of the mechanisms of exocytosis regulation. Extremely accurate SV segmentation is a prerequisite to obtaining a faithful representation of SVs state of connectivity. Hundreds to thousands of SVs are present in a typical synapse, and their time-consuming manual segmentation is a bottleneck in this analysis. Several attempts to automate vesicle segmentation by classical computer vision or machine learning algorithms have not yielded robust results. We addressed this problem by designing a workflow consisting of a U-Net convolutional segmentation network followed by post-processing steps. This combination yields highly accurate results. Furthermore, we provide an interactive tool for accurately segmenting spherical vesicles in a fraction of the time required by available manual segmentation methods. This tool can be used to segment vesicles that were missed by the fully automatic procedure or to quickly segment a handful of vesicles while bypassing the fully automatic procedure. Our pipeline can in principle be used to segment any spherical vesicle in any cell type as well as extracellular vesicles.

著者: Benoit Zuber, A. Khosrozadeh, R. Seeger, G. Witz, J. Radecke, J. B. Sorensen

最終更新: 2024-02-28 00:00:00

言語: English

ソースURL: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.02.26.582080

ソースPDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.02.26.582080.full.pdf

ライセンス: https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/

変更点: この要約はAIの助けを借りて作成されており、不正確な場合があります。正確な情報については、ここにリンクされている元のソース文書を参照してください。

オープンアクセスの相互運用性を利用させていただいた biorxiv に感謝します。

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