Avanço na Profilagem Celular: Enfrentando Efeitos de Lote na Análise de Imagens
Um estudo explora métodos para corrigir efeitos de lotes na análise de imagens de células.
― 9 min ler
Índice
A análise de imagem é super importante na pesquisa biológica e médica, ajudando os cientistas a estudar as formas, estruturas e comportamentos das células. Usando corantes especiais e técnicas avançadas de microscopia, os pesquisadores conseguem observar amostras biológicas com muitos detalhes ao longo do tempo e de diferentes ângulos. Isso ajuda a entender melhor como as células funcionam e como reagem a mudanças no ambiente.
A microscopia de alto rendimento, um método que captura várias imagens rapidamente, pode fornecer informações detalhadas sobre como as células mudam quando expostas a diferentes influências genéticas ou químicas. As medições feitas a partir dessas imagens podem revelar insights sobre como os genes atuam e como as doenças se desenvolvem, além de ajudar a identificar os efeitos e perigos potenciais de novos tratamentos.
Cada perfil de imagem representa várias características de uma célula, incluindo tamanho, forma, brilho (intensidade) e textura. Embora esses perfis sejam geralmente medidos no nível de células individuais, eles também podem ser combinados para dar uma visão geral da experiência ou tratamento.
Cell Painting
Uma das técnicas mais populares de perfilagem de imagem é chamada Cell Painting. Esse método usa uma combinação de seis corantes para colorir oito partes da célula, como o núcleo e as mitocôndrias, capturando imagens em cinco canais. Isso possibilita a extração de detalhes ricos sobre como as células se parecem e como se comportam. Um software automático processa essas imagens para analisar os dados, fornecendo não só informações específicas sobre células individuais, mas também insights sobre a variedade dentro de uma população celular.
Cell Painting é econômico, já que o custo dos corantes é relativamente baixo, e os pesquisadores podem obter milhares de imagens de células em um único experimento. Importante, os dados do Cell Painting podem ser combinados com métodos de aprendizado de máquina para criar modelos que ajudam na descoberta e desenvolvimento de medicamentos.
A Necessidade de um Banco de Dados Compartilhado
Para aproveitar totalmente o potencial da análise de imagem e do Cell Painting, os pesquisadores precisam ter acesso a uma grande coleção de dados compartilhados. Enquanto empresas individuais têm trabalhado em seus próprios dados, ter um conjunto de dados disponível publicamente é essencial para avançar na pesquisa biológica. Outros campos, como a genômica, já mostraram os benefícios de coleções de dados compartilhados, demonstrando como isso pode levar a progressos significativos.
Para atender a essa necessidade, foi formada uma colaboração chamada Joint Undertaking for Morphological Profiling (JUMP) Cell Painting Consortium. Essa parceria inclui empresas farmacêuticas, provedores de tecnologia e organizações sem fins lucrativos. Juntos, lançaram um grande conjunto de dados público que inclui informações de mais de 140.000 experimentos, capturando uma ampla gama de influências genéticas e químicas nas células. Uma característica chave desse conjunto de dados é que permite aos pesquisadores comparar suas descobertas com dados existentes, melhorando os resultados da pesquisa.
Desafios com Efeitos de Lote
Em qualquer grande experimento biológico, vários fatores entram em jogo que podem afetar os resultados. Por exemplo, quando os dados são coletados em lotes separados-seja de grupos diferentes de poços em uma placa ou em diferentes ambientes laboratoriais-variações indesejadas podem surgir. Essas variações são conhecidas como "efeitos de lote" e podem obscurecer sinais biológicos reais, dificultando a interpretação precisa dos dados pelos pesquisadores.
Os efeitos de lote podem ocorrer devido a múltiplos fatores, como diferenças nas condições experimentais, o tempo necessário para processar amostras e o equipamento utilizado. No contexto do JUMP Cell Painting, variações nos ajustes do microscópio, a forma como as células foram cultivadas, e até mudanças na intensidade da luz podem influenciar os perfis de imagem coletados.
Para lidar com esses efeitos de lote, os pesquisadores usam métodos de correção de lote. Esses métodos ajudam a minimizar essas variações indesejadas, facilitando a identificação de diferenças biológicas reais. No entanto, existem poucos métodos estabelecidos para corrigir efeitos de lote em perfilagem baseada em imagem, o que significa que esse é um desafio contínuo para os pesquisadores.
Uma Visão Geral das Técnicas de Correção de Lote
Neste estudo, vários métodos para corrigir efeitos de lote foram comparados. Esses métodos visavam estabelecer como podiam reduzir o ruído relacionado a lotes enquanto mantinham informações biológicas importantes intactas. Isso foi feito examinando o desempenho de sete técnicas diferentes, que foram derivadas principalmente de métodos usados em sequenciamento de RNA de célula única, mas adaptadas para uso em perfilagem baseada em imagem.
Essas técnicas incluíram:
- Combat: Esse método considera os efeitos de lote modelando-os como ruído adicionado aos sinais biológicos.
- Harmony: Um algoritmo que funciona de forma iterativa para ajustar os dados com base na diversidade dos lotes.
- MNN (Mutual Nearest Neighbors): Essa técnica alinha os dados encontrando amostras semelhantes entre os lotes.
- Scanorama: Semelhante ao MNN, mas observa vários lotes de uma vez para encontrar clusters de amostras semelhantes.
- scVI: Esse método usa um tipo de modelo de aprendizado profundo que trabalha com dados de célula única.
- DESC: Essa técnica foca em preservar informações biológicas enquanto corrige os efeitos de lote.
- Sphering: Um método que usa amostras controle para ajustar os dados para variação indesejada.
Cada um desses métodos opera sob diferentes pressupostos e busca alcançar o melhor equilíbrio entre remover efeitos de lote e reter sinais biológicos.
Avaliando os Métodos
Para avaliar a eficiência desses métodos, a equipe montou cinco cenários diferentes que variavam em complexidade. Esses cenários ajudaram a medir quão bem cada método poderia lidar com diferentes tipos de dados, coletados do mesmo laboratório ou em múltiplos laboratórios com equipamentos diferentes.
Cenário 1: Laboratório Único e Microscópio
No primeiro cenário, todos os dados foram coletados de um único laboratório usando o mesmo microscópio. As condições foram controladas, com múltiplas réplicas para cada composto. Essa situação permitiu que os pesquisadores estabelecessem um desempenho básico para os métodos de correção de lote. No geral, a maioria dos métodos foi eficaz em reduzir os efeitos de lote, com o Harmony mostrando os melhores resultados ao preservar a variação biológica.
Cenário 2: Múltiplos Laboratórios, Mesmo Microscópio
Esse cenário envolveu dados de vários laboratórios, mas usou o mesmo tipo de microscópio. Aqui, os efeitos de lote se tornaram mais pronunciados devido a variações introduzidas por diferentes laboratórios. Harmony e Scanorama tiveram o melhor desempenho na agrupação de amostras de acordo com os compostos, demonstrando sua capacidade de corrigir os efeitos de lote melhor que os outros.
Cenário 3: Múltiplos Laboratórios, Múltiplos Compostos
Neste caso, os pesquisadores analisaram dados de vários laboratórios, mas com uma gama mais ampla de compostos e menos réplicas por composto. Os métodos tiveram mais dificuldade aqui em remover os efeitos de lote, embora Harmony, Scanorama e scVI ainda tenham apresentado resultados melhores que os outros.
Cenário 4: Diferentes Tipos de Microscópios
O quarto cenário introduziu diferentes sistemas de imagem de alto rendimento enquanto mantinha o número de compostos o mesmo. As variações na tecnologia de imagem produziram efeitos de lote mais fortes, complicando o processo de correção de lote. Novamente, Harmony e Scanorama forneceram os melhores resultados quantitativos, mas todos os métodos mostraram desempenho reduzido devido à complexidade introduzida pela instrumentação diversa.
Cenário 5: Cenário Mais Complexo
O cenário final combinou múltiplos tipos de microscópios, diferentes laboratórios, vários compostos, e poucas réplicas. Nesse caso, os efeitos de lote se mostraram os mais desafiadores, e nenhum método conseguiu corrigir totalmente os efeitos. Scanorama ainda teve um desempenho melhor em lidar com a remoção de lote enquanto Harmony manteve a maior pontuação para preservar informações biológicas.
Conclusão
Os avanços em ensaios baseados em imagem de alto rendimento, como o Cell Painting, oferecem oportunidades significativas para descobertas científicas na biologia e no desenvolvimento de novos tratamentos. No entanto, a gestão e interpretação dos dados produzidos por essas tecnologias podem ser complicadas, principalmente devido aos efeitos de lote.
Esta pesquisa identificou a necessidade de métodos eficazes de correção de lote para garantir o valor dos conjuntos de dados compartilhados. Ao comparar múltiplas técnicas em diversos cenários, foi encontrado que Harmony e Scanorama geralmente apresentaram o melhor desempenho. Esses métodos mostram potencial para enfrentar os efeitos de lote, mas também destacam as limitações enfrentadas quando a complexidade dos dados aumenta, especialmente quando diferentes equipamentos e laboratórios estão envolvidos.
O estudo enfatiza a importância de refinar os métodos de correção de lote e explorar novas abordagens para facilitar a integração de conjuntos de dados diversos. Trabalhos futuros devem focar em desenvolver ainda mais esses métodos para aumentar sua escalabilidade e eficácia, apoiando assim aplicações mais amplas na pesquisa biológica e na descoberta de medicamentos.
Título: Evaluating batch correction methods for image-based cell profiling
Resumo: High-throughput image-based profiling platforms are powerful technologies capable of collecting data from billions of cells exposed to thousands of perturbations in a time- and cost-effective manner. Therefore, image-based profiling data has been increasingly used for diverse biological applications, such as predicting drug mechanism of action or gene function. However, batch effects pose severe limitations to community-wide efforts to integrate and interpret image-based profiling data collected across different laboratories and equipment. To address this problem, we benchmarked seven high-performing scRNA-seq batch correction techniques, representing diverse approaches, using a newly released Cell Painting dataset, the largest publicly accessible image-based dataset. We focused on five different scenarios with varying complexity, and we found that Harmony, a mixture-model based method, consistently outperformed the other tested methods. Our proposed framework, benchmark, and metrics can additionally be used to assess new batch correction methods in the future. Overall, this work paves the way for improvements that allow the community to make best use of public Cell Painting data for scientific discovery.
Autores: Shantanu Singh, J. Arevalo, E. Su, R. van Dijk, A. E. Carpenter
Última atualização: 2024-02-28 00:00:00
Idioma: English
Fonte URL: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2023.09.15.558001
Fonte PDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2023.09.15.558001.full.pdf
Licença: https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/
Alterações: Este resumo foi elaborado com a assistência da AI e pode conter imprecisões. Para obter informações exactas, consulte os documentos originais ligados aqui.
Obrigado ao biorxiv pela utilização da sua interoperabilidade de acesso aberto.