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# Biologia# Neurociência

Avanços na Microscopia Eletrônica para Mapeamento do Cérebro

Novas técnicas melhoram a velocidade e a precisão da imagem na pesquisa do cérebro.

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A Microscopia Eletrônica de Seção Serial (ssEM) é uma técnica usada pelos cientistas para olhar de perto os circuitos minúsculos nos cérebros de pequenos animais, tipo minhocas, moscas e peixes. Ela ajuda a criar mapas detalhados mostrando como as células do cérebro se conectam. Os cientistas também estão usando isso pra entender como essas conexões funcionam em mamíferos, tipo camundongos, pra identificar características importantes de aprendizado, memória e desenvolvimento cerebral.

A área de Conectômica, que estuda as conexões no cérebro, tá crescendo. Os pesquisadores agora estão comparando os mapas cerebrais de diferentes animais pra aprender sobre a evolução do cérebro e os problemas que podem causar doenças. Com mais mapas cerebrais sendo criados, tá claro que encontrar maneiras de coletar e analisar essas imagens de forma rápida e eficiente é essencial.

Limitações Atuais na Coleta de Imagens Cerebrais

Atualmente, apenas alguns laboratórios têm o equipamento especial e caro necessário pra coletar essas imagens cerebrais. Eles usam máquinas sofisticadas, tipo a Câmera de Microscopia Eletrônica de Transmissão ou microscópios eletrônicos de varredura com múltiplos feixes. Até agora, conseguir as imagens não era o maior desafio; era analisar os dados dessas imagens. O método tradicional de analisar essas imagens leva tempo porque envolve quebrar as imagens pra reconhecer cada célula e suas conexões.

Avanços recentes na tecnologia, especialmente em Aprendizado de Máquina, aceleraram a análise de dados. O desafio agora é que os pesquisadores precisam de maneiras mais rápidas de coletar imagens pra acompanhar a velocidade da análise. Uma forma de melhorar essa situação é modificar microscópios eletrônicos existentes, que são mais acessíveis, pra coletar os dados necessários.

Como Funcionam os Microscópios Eletrônicos de Varredura

Quando usa um microscópio eletrônico de varredura pra coletar imagens do cérebro, o tempo que leva pra juntar uma imagem depende de quanto tempo a máquina foca em cada pixel. Pra imagens de boa qualidade, o feixe de elétrons geralmente precisa ficar em cada pixel por pelo menos 1000 nanosegundos. Mover o feixe de um pixel pra outro leva muito pouco tempo em comparação a quanto tempo ele fica em cada pixel.

Pra acelerar o processo de imagem na conectômica, os pesquisadores precisam reduzir o tempo em que o feixe permanece em cada pixel, mas ainda assim coletar informação suficiente. A precisão dessas imagens é crítica porque precisa mostrar os contornos corretos das células do cérebro e suas conexões.

Importância da Precisão da Imagem na Pesquisa Cerebral

O fator mais importante na qualidade da imagem pra pesquisa cerebral é a capacidade de identificar com precisão as bordas dos neurônios e suas conexões, chamadas sinapses. Os métodos tradicionais usam um tempo de permanência fixo pra todos os pixels, onde um tempo maior significa imagens mais precisas. No entanto, isso cria um conflito porque imagens mais rápidas geralmente vêm à custa da precisão.

Métodos anteriores que buscavam melhorar a qualidade da imagem após a imagem inicial ser criada dependiam de técnicas como remoção de ruído ou aumento da resolução. No entanto, essas técnicas não conseguem adicionar detalhes que foram perdidos durante a coleta inicial da imagem.

Pra lidar com essa limitação, os pesquisadores desenvolveram um método que recupera informações cruciais durante o processo de imagem real. Eles criaram um pipeline "inteligente" que reconhece áreas em uma imagem que provavelmente contêm erros e leva mais tempo pra reexaminar essas regiões pra clareza.

O Pipeline SmartEM Explicado

O pipeline SmartEM foi projetado pra identificar e corrigir rapidamente áreas em imagens cerebrais que podem ser difíceis de interpretar. Ele identifica regiões que são desafiadoras pra analisar ou contêm características importantes, como sinapses, e concentra mais esforço de imagem nessas áreas. Isso acontece em tempo real durante a imagem inicial, resultando em imagens de melhor qualidade sem aumentar muito o tempo total de imagem.

A abordagem envolve usar algoritmos de aprendizado de máquina que rodam no computador do microscópio. Esses algoritmos, chamados ERRNET, aprendem a detectar áreas onde a qualidade da imagem pode estar ruim. Assim que identifica essas áreas, o sistema decide quais precisam ser reexaminadas a uma taxa mais lenta pra melhorar a precisão.

Efeitos do Tempo de Permanência na Precisão da Segmentação

Pra testar como diferentes tempos de permanência afetam a qualidade da imagem, os cientistas olharam imagens do córtex visual de camundongos, escaneando-as em diferentes tempos de permanência de 25 a 1200 nanosegundos. O estudo descobriu que, embora tempos de permanência mais curtos sejam mais rápidos, eles frequentemente levam a erros na segmentação da imagem. Por outro lado, tempos de permanência mais longos melhoraram a precisão, mas levaram muito mais tempo.

Os pesquisadores descobriram uma diferença significativa na qualidade das imagens com base na região estudada; algumas áreas podem ser capturadas com precisão com tempos de permanência mais curtos, enquanto outras precisavam de tempos mais longos pra um contorno preciso. O objetivo era desenvolver um método que usa tempos de permanência curtos onde possível, aplicando tempos de permanência mais longos de forma seletiva nas áreas mais desafiadoras.

Implementando o Método SmartEM

O pipeline SmartEM funciona escaneando inicialmente a imagem toda de forma rápida. Depois de coletar essas informações, ele usa os algoritmos ERRNET pra identificar regiões propensas a erros. O próximo passo é reexaminar essas regiões com tempos de permanência mais longos pra imagens mais detalhadas.

Após coletar todas as imagens, o pipeline SmartEM combina as regiões capturadas rapidamente com as áreas mais precisamente escaneadas. Essa junção cria uma imagem completa que representa com precisão a estrutura do cérebro com menos erros.

O pipeline também inclui um recurso adicional pra fazer as imagens finais parecerem mais uniformes, ajudando os pesquisadores a interpretá-las melhor. Mesmo que as imagens brutas possam diferir devido aos tempos de permanência variáveis, o pós-processamento as faz parecer consistentes.

Benefícios do SmartEM

O pipeline SmartEM reduz significativamente o tempo necessário pra coletar imagens cerebrais de alta qualidade em comparação com métodos tradicionais. Com um aumento de mais de sete vezes na velocidade, o SmartEM possibilita que os pesquisadores coletem dados conectômicos de forma rápida e eficiente sem sacrificar a qualidade dos dados.

Aplicações Além da Conectômica

Embora o foco principal do SmartEM tenha sido na conectômica, seus princípios podem ser aplicados a muitas outras áreas. Por exemplo, na ciência dos materiais, onde diferentes partes de uma amostra podem ter níveis variados de detalhe, o método SmartEM pode melhorar a eficiência na coleta de imagens.

Além disso, o pipeline SmartEM é adaptável. Ele pode ser modificado dependendo dos requisitos específicos de diferentes projetos de pesquisa ou equipamentos. Essa flexibilidade significa que pesquisadores de várias áreas podem se beneficiar de técnicas de imagem melhoradas sem precisar de máquinas totalmente novas.

Futuro do SmartEM

À medida que a tecnologia de aprendizado de máquina continua evoluindo, o pipeline SmartEM provavelmente se tornará ainda mais eficaz. Melhorias nos algoritmos usados para segmentação e detecção de erros podem levar a velocidades de imagem mais rápidas e até maior precisão. Isso promete abrir caminho para aplicações mais amplas em biologia, ciência dos materiais e manufatura.

Além disso, conforme a tecnologia se torna mais acessível, permitirá que mais laboratórios coletem e analisem dados de alta qualidade, impulsionando ainda mais a pesquisa em conectômica e outras áreas que exigem imagens detalhadas.

Conclusão

O pipeline SmartEM representa um avanço significativo no campo da microscopia eletrônica, especialmente pra conectômica. Ao agilizar o processo de aquisição de imagens e torná-lo mais eficiente, os pesquisadores conseguem coletar dados de qualidade mais rápido. Essa inovação não só ajuda no estudo imediato da conectividade cerebral, mas também prepara o terreno para futuros avanços em várias disciplinas científicas. À medida que a tecnologia avança, há um futuro brilhante pela frente para técnicas de imagem e os valiosos insights que elas fornecem sobre a estrutura dos sistemas biológicos.

Fonte original

Título: SmartEM: machine-learning guided electron microscopy

Resumo: Connectomics provides essential nanometer-resolution, synapse-level maps of neural circuits to understand brain activity and behavior. However, few researchers have access to the high-throughput electron microscopes necessary to generate enough data for whole circuit or brain reconstruction. To date, machine-learning methods have been used after the collection of images by electron microscopy (EM) to accelerate and improve neuronal segmentation, synapse reconstruction and other data analysis. With the computational improvements in processing EM images, acquiring EM images has now become the rate-limiting step. Here, in order to speed up EM imaging, we integrate machine-learning into real-time image acquisition in a single-beam scanning electron microscope. This SmartEM approach allows an electron microscope to perform intelligent, data-aware imaging of specimens. SmartEM allocates the proper imaging time for each region of interest - scanning all pixels equally rapidly, then re-scanning small subareas more slowly where a higher quality signal is required to achieve accurate segmentability, in significantly less time. We demonstrate that this pipeline achieves a 7-fold acceleration of image acquisition time for connectomics using a commercial single-beam SEM. We apply SmartEM to reconstruct a portion of mouse cortex with the same accuracy as traditional microscopy but in less time.

Autores: Yaron Meirovitch, C. F. Park, L. Mi, P. Potocek, S. Sawmya, Y. Li, I. S. Chandok, T. L. Athey, N. Karlupia, Y. Wu, D. R. Berger, R. Schalek, H. Pfister, R. Schoenmakers, M. Peemen, J. W. Lichtman, A. Samuel, N. Shavit

Última atualização: 2024-06-15 00:00:00

Idioma: English

Fonte URL: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2023.10.05.561103

Fonte PDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2023.10.05.561103.full.pdf

Licença: https://creativecommons.org/licenses/by-nc/4.0/

Alterações: Este resumo foi elaborado com a assistência da AI e pode conter imprecisões. Para obter informações exactas, consulte os documentos originais ligados aqui.

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