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# 健康科学# 感染症(HIV/AIDSを除く)

呼吸器感染の診断の進展

新しい方法が肺感染のバクテリアと耐性遺伝子の検出を改善した。

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呼吸器感染のための新しいP呼吸器感染のための新しいPCR検査上させる。細菌と耐性遺伝子の迅速検出が治療結果を向
目次

下気道感染症(LRTI)は、世界中で多くの病気や死亡を引き起こす深刻な健康問題なんだ。2016年だけで、LRTIのケースは約3億3600万件あって、240万人近い死亡者が出てる、その中には5歳未満の子どもが約65万2000人も含まれてる。インフルエンザウイルスや呼吸器合胞体ウイルス(RSV)などのウイルスが多くのLRTIの原因になるけど、致命的なケースの大半はストレプトコッカス・ニューモニエやインフルエンザ桿菌などのバイ菌に関連してる。

抗菌薬耐性の課題

最近、呼吸器感染症を引き起こすバイ菌の抗菌薬耐性(ARM)が増えてきて、これが深刻な懸念になってる。これによって、抗生物質での治療が難しくなるし、多くのバイ菌が複数の薬に耐性を持っているから。多剤耐性のバイ菌は、特に集中治療室(ICU)にいるLRTI患者によく見られる。耐性があると、健康状態が悪化したり、入院期間が長くなったり、死亡リスクが高くなることがある。

こうした感染を効果的に治療し、重篤な合併症の可能性を減らすためには、感染を引き起こしているバイ菌をすぐに特定し、その耐性特性を理解することが重要なんだ。

従来の診断方法

現在、呼吸器病原体を特定するために、顕微鏡検査、バイ菌培養、抗原検出などの従来の診断方法が使われてる。ただ、これらの方法には制約があって、いろんなサンプルが必要だったり、感度が低かったり、結果が出るのに時間がかかったりすることがある。

最近は、より進んだ診断ツールも開発されてきた。例えば、PCR(ポリメラーゼ連鎖反応)を使った分子検査は、多くのウイルスやバイ菌を同時に検出できるんだ。特定のパネルを使えば、肺炎を引き起こす複数のバイ菌や耐性マーカーを特定できる。

ただ、こうした先進的な検査は高価な場合があって、特に低所得国ではあまり一般的に使われてないこともある。

新しい診断アプローチ

有望な代替手段の一つは、エヴァグリーンという特殊な染料を使ったマルチプレックスリアルタイムPCRなんだ。この方法は、複数のバイ菌やその耐性遺伝子を同時にテストするための実用的で手頃な方法を提供してくれる。古い方法に比べて、より早く、より多くのターゲットを低コストで検出できるんだ。

エヴァグリーンの利点

エヴァグリーンは、PCRでよく使われる他の染料よりも効果的だって証明されてる。高濃度でもテストに影響を与えず、さまざまなタイプのDNA領域にしっかり結合することができる。この染料を使うことで、呼吸器感染症に関連する複数のバイ菌を迅速かつ正確に特定できるんだ。

研究の目的

私たちの研究の目的は、エヴァグリーンを使って、呼吸器サンプルから6つの特定のバイ菌と14の耐性遺伝子を特定する新しいテストを作って検証することだった。

使用したバイ菌

新しいテストを開発するために、いろんなバイ菌の株を使ったよ。これには、よく知られている実験室の株や患者から収集した臨床分離株が含まれてる。LRTIを引き起こす一般的なバイ菌や、抗生物質に耐性を示すバイ菌も含まれてる。

サンプル収集とテスト

サンプルは、病院で治療を受けた患者から収集された。これには、気管吸引(TA)と痰のサンプルが含まれてて、これらは微生物学部門に送られて通常のテストが行われた。残りのサンプルは、新しいテストの有効性を評価するために私たちのラボで使われた。

テスト用のサンプル準備

テストを行う前に、サンプルを適切に準備する必要があった。これには、特定の溶液と混ぜたり、より良い結果を得るための処理を行ったり、存在するバイ菌からDNAを抽出することが含まれてた。DNAの質を評価して、信頼できるテストができるようにしたよ。

テストの設計

特定のプライマーを設計したよ。これらは、ターゲットバイ菌や耐性遺伝子を特定するのを助ける短いDNA配列なんだ。私たちのプライマーは、検出したいバイ菌のDNAの特定の領域に結合するように作られた。

テストと検証

準備したサンプルと新しく設計したプライマーを使ってテストを行った。これには、PCR増幅を行い、DNAの溶融温度を分析して、特定のバイ菌や遺伝子の存在を示すんだ。

私たちのテストは良い結果を示して、サンプルからターゲットバイ菌や耐性遺伝子を正確に特定できることがわかったよ。

テストの結果

新しいテストを、すでに使われている従来の培養方法と比較した。私たちの研究には、患者からの50のサンプルが含まれてたんだけど、新しいテストは従来の培養方法よりも多くのバイ菌を検出できたんだ。

検出率の比較

私たちのテストは、培養方法に比べて高い感度と特異度を持っていることがわかった。感度は感染している人を正しく特定する能力を示し、特異度は感染していない人を正しく特定する精度を示す。ほとんどのバイ菌は正確に特定されて、混合感染のものも含まれていたよ。

混合感染

面白いことに、私たちのテストは、一部のサンプルで複数のバイ菌を検出したけど、これは培養方法では完全には特定できなかった。このことは、従来の方法が重要な病原体を見逃す可能性があることを示してる、特に複数が存在する場合にはね。

耐性遺伝子の検出

バイ菌の特定に加えて、私たちのテストは耐性遺伝子も探したよ。これらの遺伝子は、バイ菌が抗生物質に対抗する能力を持たせる。私たちは、これらの遺伝子の存在と、サンプルから検出されたバイ菌の耐性プロファイルの間に明確な相関があることを見つけた。

結論

私たちの研究は、呼吸器サンプルから重要なバイ菌とその耐性遺伝子を迅速かつ効果的に検出する方法を成功裏に開発した。これには、結果が早く、バイ菌の量を定量化できるといった多くの利点があるんだ。

バイ菌の耐性を迅速に特定し理解する能力は、抗生物質治療を導く上で重要だし、特に抗生物質耐性が一般的な環境ではね。この方法は、感染の診断にかかる時間を短縮し、患者の管理を向上させ、全体的な治療成果を改善する可能性があるんだ。

こうした先進的な診断技術を臨床で採用することで、抗菌薬耐性との戦いを助け、さまざまな医療環境での患者ケアを向上させることができるんだ。

オリジナルソース

タイトル: The development and validation of multiplex real-time PCRs with fluorescent melting curve analysis for simultaneous detection of six bacterial pathogens of lower respiratory tract infections and antimicrobial resistance genes.

概要: Klebsiella pneumoniae, Acinetobacter baumannii, Pseudomonas aeruginosa, Escherichia coli, Streptococcus pneumoniae and Staphylococcus aureus are among the major bacterial causative agents of lower respiratory tract infections (LRTIs), causing substantial morbidity and mortality globally. The rapid increase of antimicrobial resistance (AMR) in these pathogens poses significant challenges for effective antibiotic therapy of LRTIs. In low-resourced settings, the diagnostics of LRTIs relies heavily on microbiological culture and patients are often treated with empirical antibiotics while awaiting several days for culture results. Rapid detection of LRTIs pathogens and AMR genes could prompt early antibiotic switching and inform antibiotic treatment duration. In this study, we developed multiplex quantitative real-time PCRs using EvaGreen dye and melting curve analysis (MCA) to rapidly identify the six major LRTIs pathogens and their AMR genes directly from the tracheal aspirate and sputum samples. The accuracy of RT-PCRs was assessed by comparing its performance against the gold standard, conventional culture method on 50 tracheal aspirate and sputum specimens. Our RT-PCR assays had 100% sensitivity for K. pneumoniae, A. baumannii, P. aeruginosa, E. coli and 63.6% for S. aureus and the specificity ranked from 87.5% to 97.6%. The kappa correlation values of all pathogens between the two methods varied from 0.63 to 0.95. The limit of detection (LOD) of target bacteria in multiplex RT-PCRs was 1600 CFU/mL. Compared to the culture results, PCR assays exhibited higher sensitivity in detecting mixed infections and S. pneumoniae. Our findings also demonstrated a high level of concordance between the detection of AMR gene and AMR phenotype in single infections. We conclude that our multiplex quantitative RT-PCRs with fluorescence MCA is simple but sensitive and specific in detecting six major drug resistant bacterial pathogens of LRTIs and should be further evaluated for clinical utility.

著者: Duy Thanh Pham, D. T. N. Tran, P. V. Voong, V. Chau, L. P. H. Nguyen, P. L. N. Nguyen, N. T. Q. Le, G. Thwaites, L. Thwaites, M. Rabaa, A. T. K. Nguyen

最終更新: 2023-04-06 00:00:00

言語: English

ソースURL: https://www.medrxiv.org/content/10.1101/2023.04.05.23288171

ソースPDF: https://www.medrxiv.org/content/10.1101/2023.04.05.23288171.full.pdf

ライセンス: https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/

変更点: この要約はAIの助けを借りて作成されており、不正確な場合があります。正確な情報については、ここにリンクされている元のソース文書を参照してください。

オープンアクセスの相互運用性を利用させていただいた medrxiv に感謝します。

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