Neue Einblicke in die Chromatinstruktur und -funktion
Forschung bringt Licht ins Dunkel über die Chromatinorganisation und ihre Rolle in zellulären Prozessen.
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Inhaltsverzeichnis
- Bewertung der Nukleosomenverteilung
- Fortschritte in der Sequenzierungstechnologie
- Verwendung von Angelicin zur Untersuchung von Chromatin
- Methodologie zur Verwendung von Angelicin
- Analyse von Nanopore-Daten
- Ergebnisse aus der Verwendung von Add-seq
- Nutzung von neuronalen Netzwerken zur Vorhersage
- Auswirkungen auf die zukünftige Forschung
- Zusammenfassung
- Originalquelle
- Referenz Links
Chromatin ist ein Komplex, der aus DNA besteht, die um Proteine namens Histone gewickelt ist. Diese Struktur findet man in eukaryotischen Zellen, also Zellen mit einem Zellkern. Wie Chromatin angeordnet ist, spielt eine entscheidende Rolle dabei, wie Zellen wachsen, sich entwickeln und auf ihre Umgebung reagieren.
Nukleosomen sind die Bausteine des Chromatins. Jedes Nukleosom besteht aus etwa 147 Basenpaaren DNA, die sich um ein Set von acht Histonproteinen winden. Wenn viele Nukleosomen zusammenkommen, entsteht eine Struktur, die unter dem Mikroskop wie Perlen auf einer Schnur aussieht. Diese Anordnung erschwert es Proteinen, die Zugang zur DNA brauchen, sich zu binden, was wichtige Prozesse wie das Kopieren von DNA, das Reparieren oder das Lesen der Gene blockieren kann.
Die Anordnung der Nukleosomen variiert in verschiedenen Bereichen des Genoms. Einige Bereiche des Chromatins sind offener, während andere dicht gepackt sind. Diese Variation kann sich ändern, je nachdem, wie die Zelle wächst oder sich in verschiedene Zelltypen differenziert.
Durch das Studium der Anordnung des Chromatins können Wissenschaftler wichtige Informationen darüber gewinnen, wie Zellen sich entwickeln, wie Krankheiten entstehen könnten und wie Zellen auf Medikamente reagieren.
Bewertung der Nukleosomenverteilung
Kurz nachdem Nukleosomen entdeckt wurden, haben Wissenschaftler Wege gefunden, ihre Verteilung über Gene zu untersuchen. Frühe Methoden schauten sich an, wie gut der Chromatin für bestimmte Enzyme zugänglich war, die DNA schneiden. Diese Techniken haben sich im Laufe der Zeit weiterentwickelt, und jetzt verwenden wir fortschrittliche Methoden wie Short-Read-Sequenzierung, um die Nukleosomenverteilung über das gesamte Genom zu betrachten.
Obwohl diese Short-Read-Methoden uns viel über Chromatin gelernt haben, bieten sie hauptsächlich einen allgemeinen Überblick. Sie zeigen uns nicht die Unterschiede, die in einzelnen Zellen auftreten könnten, oder wie Nukleosomen über längere DNA-Abschnitte angeordnet sind. Ausserdem können die Prozesse zur Probenvorbereitung für die Sequenzierung Fehler einführen.
Fortschritte in der Sequenzierungstechnologie
Eine neue Methode namens Long-Read-Nanopore-Sequenzierung ist jetzt da. Diese Technologie nutzt einen biologischen Pore und einen elektrischen Strom, um die DNA zu lesen, während sie durch die Pore hindurchgeht. Änderungen im Strom können unterschiedliche DNA-Sequenzen anzeigen, was es Wissenschaftlern ermöglicht, Modifikationen in der DNA ohne die Verzerrungen der Short-Read-Methoden zu identifizieren.
Aktuelle Fortschritte haben es ermöglicht, zu erkennen, wenn DNA auf spezifische Weise modifiziert wurde. Diese Long-Read-Techniken erlauben es Wissenschaftlern, Einblicke in die Chromatinstruktur und -funktion auf einem detaillierteren Niveau zu erhalten.
Verwendung von Angelicin zur Untersuchung von Chromatin
Um die Anordnung der Nukleosomen zu untersuchen, haben Forscher eine Methode entwickelt, die ein kleines Molekül namens Angelicin verwendet. Wenn es UV-Licht ausgesetzt wird, bindet sich Angelicin an bestimmte DNA-Basen, was es möglich macht, Chromatin genauer zu studieren. Angelicin hat spezifische Bindungseigenschaften, die es ihm ermöglichen, sich an DNA zu heften, ohne grossen Schaden zu verursachen.
In ihrer neuen Methode, bekannt als Add-seq, verwenden Forscher Angelicin, um zugängliche Bereiche des Chromatins zu markieren. Indem sie die elektrischen Signale während der Nanopore-Sequenzierung beobachten, können sie erkennen, wo Angelicin an die DNA gebunden hat.
Methodologie zur Verwendung von Angelicin
Um Angelicin zu verwenden, isolieren Wissenschaftler zunächst die Zellkerne von Hefezellen. Die Kerne, die das genetische Material enthalten, werden mit Angelicin behandelt und dann mehrmals UV-Licht ausgesetzt, um die Bindung von Angelicin zu unterstützen. Nach der Behandlung wird hochwertige DNA für die Sequenzierung extrahiert.
Der Sequenzierungsprozess umfasst das Laden der modifizierten DNA in ein Nanopore-Gerät. Während die DNA durch die Pore hindurchgeht, ändert sich der Strom, was wertvolle Daten über die DNA-Sequenz und vorhandene Modifikationen liefert.
Analyse von Nanopore-Daten
Nachdem die Sequenzierung abgeschlossen ist, analysieren Wissenschaftler die Daten, um herauszufinden, wie viel Angelicin die DNA modifiziert hat. Besondere Muster im Signal können anzeigen, wo die Bindung von Angelicin stattgefunden hat. Forscher haben Algorithmen entwickelt, um diese Daten zu verarbeiten und die Positionen der Nukleosomen sowie die Zugänglichkeit des Chromatins zu identifizieren.
Mit diesem Ansatz können Forscher sehen, wie die Zugänglichkeit des Chromatins um wichtige Bereiche des Genoms, wie Transkriptionsstartstellen (TSS) und Transkriptionsterminationsstellen (TTS), variiert. Sie können auch detaillierte Karten der Nukleosomenanordnung bei bestimmten Genen erstellen.
Ergebnisse aus der Verwendung von Add-seq
Bei der Verwendung der Add-seq-Methode zur Untersuchung von Chromatin fanden Forscher heraus, dass die Modifikationsmuster um TSS und TTS mit den bekannten Erwartungen übereinstimmten. Zum Beispiel gab es eine erhöhte Zugänglichkeit in der Nähe des Starts und des Endes von Genen, was mit dem bisherigen Wissen über die Chromatinstruktur übereinstimmt.
Die Ergebnisse zeigten auch Variabilität in der Positionierung der Nukleosomen, was Unterschiede offenbarte, die zuvor schwer zu erkennen waren. Diese Variabilität kann Einblicke geben, wie Gene reguliert werden und wie Zellen auf verschiedene Bedingungen reagieren.
Nutzung von neuronalen Netzwerken zur Vorhersage
Um die Analyse der Sequierungsdaten zu verbessern, setzten die Forscher einen maschinellen Lernansatz mit einem neuronalen Netzwerk namens NEMO ein. Dieses Modell wurde mit bekannten Daten trainiert, um vorherzusagen, wo wahrscheinlich Angelicinmodifikationen auftreten, basierend auf den Nanopore-Signalen.
NEMO konnte Bereiche der Chromit Zugänglichkeit auf einer viel feineren Skala identifizieren als traditionelle Methoden. Durch die Analyse überlappender Datenfenster lieferte NEMO eine detailliertere Sicht auf die Positionierung der Nukleosomen und die Struktur des Chromatins.
Auswirkungen auf die zukünftige Forschung
Trotz Herausforderungen wie Datenarmut und potenzieller Quervernetzung der DNA-Stränge durch die Angelicin-Behandlung zeigt die Forschung einen signifikanten Fortschritt im Verständnis der Chromatinstruktur. Indem sie zugängliches Chromatin und Nukleosomenanordnungen pinpointen, können Wissenschaftler tiefere Einblicke in die Genregulation und zelluläre Prozesse gewinnen.
Zukünftige Arbeiten könnten die Optimierung des Angelicin-Behandlungsprotokolls oder die Verwendung fortschrittlicher Sequenzierungstechnologien zur Verbesserung der Datenerhebung umfassen. Diese Forschung öffnet Türen zur gründlicheren Untersuchung der Chromatindynamik, was potenziell zu Erkenntnissen über verschiedene biologische Funktionen und Krankheiten führen könnte.
Zusammenfassung
Zusammenfassend ist das Studium von Chromatin und Nukleosomenorganisation entscheidend für das Verständnis, wie Zellen funktionieren. Mit Hilfe neuer Methoden wie Add-seq und Long-Read-Sequenzierung entdecken Forscher die komplexe Natur des Chromatins. Die Fähigkeit, die Zugänglichkeit des Chromatins und die Positionierung der Nukleosomen in hoher Auflösung zu visualisieren, ebnet den Weg für Entdeckungen, die unser Verständnis von Genetik und Zellbiologie transformieren könnten. Durch fortwährende Fortschritte in Technologie und Methodologie sieht die Zukunft der Chromatinforschung vielversprechend aus.
Titel: Probing chromatin accessibility with small molecule DNA intercalation and nanopore sequencing
Zusammenfassung: Genome-wide identification of chromatin organization and structure has been generally probed by measuring accessibility of the underlying DNA to nucleases or methyltransferases. These methods either only observe the positioning of a single nucleosome or rely on large enzymes to modify or cleave the DNA. We developed adduct sequencing (Add-seq), a method to probe chromatin accessibility by treating chromatin with the small molecule angelicin, which preferentially intercalates into DNA not bound to core nucleosomes. We show that Nanopore sequencing of the angelicin-modified DNA is possible and allows visualization and analysis of long single molecules with distinct chromatin structure. The angelicin modification can be detected from the Nanopore current signal data using a neural network model trained on unmodified and modified chromatin-free DNA. Applying Add-seq to Saccharomyces cerevisiae nuclei, we identified expected patterns of accessibility around annotated gene loci in yeast. We also identify individual clusters of single molecule reads displaying different chromatin structure at specific yeast loci, which demonstrates heterogeneity in the chromatin structure of the yeast population. Thus, using Add-seq, we are able to profile DNA accessibility in the yeast genome across long molecules. GRAPHICAL ABSTRACT O_FIG O_LINKSMALLFIG WIDTH=200 HEIGHT=134 SRC="FIGDIR/small/585815v1_ufig1.gif" ALT="Figure 1"> View larger version (39K): [email protected]@cd5e90org.highwire.dtl.DTLVardef@fb5b05org.highwire.dtl.DTLVardef@14b10c_HPS_FORMAT_FIGEXP M_FIG C_FIG
Autoren: Angela N Brooks, G. Bai, N. Dhillon, C. A. Felton, B. Meissner, B. Saint-John, R. Shelansky, E. Meyerson, E. Hrabeta-Robinson, B. Hodjat, H. Boeger
Letzte Aktualisierung: 2024-03-22 00:00:00
Sprache: English
Quell-URL: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.03.20.585815
Quell-PDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.03.20.585815.full.pdf
Lizenz: https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/
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