Avanços em Técnicas de Rastreio Neural
Novos métodos melhoram nossa compreensão das conexões neurais e da funcionalidade do cérebro.
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Índice
- Desenvolvimento Histórico do Rastreio Neural
- Como Funcionam os Rastreadores Virais
- Avanços no Rastreio Viral
- Optogenética: Controlando Neurônios com Luz
- Projetando o Sistema Optoeletrônico
- Simplificando Técnicas de Imagem
- Combinando Tecnologias para Rastreio Aprimorado
- Aplicações e Direções Futuras
- Conclusão
- Fonte original
- Ligações de referência
O sistema nervoso é composto por milhões de células chamadas Neurônios. Em camundongos, tem cerca de 70 milhões de neurônios, enquanto os humanos têm por volta de 86 bilhões. Esses neurônios se conectam em redes complexas que ajudam a gente a pensar, lembrar e processar informações. Os cientistas estudam essas conexões pra entender melhor como o cérebro funciona e como lidar com problemas de saúde mental.
Pra ver como esses neurônios estão conectados, os pesquisadores usam técnicas especiais chamadas métodos de rastreamento neural. Ao identificar circuitos específicos de neurônios, os cientistas podem construir modelos pra estudar como o cérebro funciona e o que dá errado nos distúrbios de saúde mental.
Desenvolvimento Histórico do Rastreio Neural
Em 1971, dois pesquisadores introduziram um conceito chave que ainda é usado em muitos rastreadores neurais modernos. Eles descobriram que os neurônios podem transportar moléculas ao longo de seus longos braços, chamados axônios. Essa descoberta levou à ideia de que esses mecanismos de transporte poderiam ser usados pra carregar substâncias que marcam os neurônios. Os primeiros métodos de rastreamento usavam aminoácidos radioativos, mas precisavam de máquinas grandes pra detectá-los.
Hoje em dia, muitos métodos de rastreamento dependem de microscópios de luz e eletrônicos pra visualizar esses neurônios marcados. Métodos mais antigos muitas vezes usavam corantes, mas essas substâncias podiam se diluir ou se decompor com o tempo. Técnicas mais recentes usam vírus pra marcar neurônios. Vírus como o Vírus Herpes Simples (HSV), Vírus Adeno-Associado (AAV) e Vírus da Raiva (RV) podem entrar nos neurônios e viajar em direções diferentes pra marcá-los. Esses vírus podem ser modificados pra expressar proteínas especiais que iluminam os neurônios sob um microscópio.
Como Funcionam os Rastreadores Virais
Diferentes rastreadores virais podem marcar neurônios de diferentes maneiras:
- Marcação estática: O vírus só marca os neurônios que toca primeiro.
- Marcação monosináptica: O vírus marca neurônios próximos que estão conectados diretamente.
- Marcação polisináptica: O vírus marca várias camadas de neurônios conectados.
Ao combinar esses rastreadores virais com ferramentas genéticas especiais, os pesquisadores podem ter ainda mais controle sobre como e onde os rastreadores se espalham. Várias propriedades, como o tamanho do material genético que podem carregar e quão tóxicos são para as células, determinam qual rastreador viral é melhor pra um estudo específico.
O AAV é limitado a carregar pequenas quantidades de material genético, enquanto outros vírus como o HSV podem lidar com cargas muito maiores. No entanto, o HSV e outros vetores grandes podem ser tóxicos para as células ou ter limitações em seu uso como rastreadores.
Avanços no Rastreio Viral
O vírus da raiva recombinante (RV) é uma escolha popular pra rastreamento neural porque os pesquisadores podem controlar como ele se espalha removendo um gene específico. Quando esse gene é removido, eles conseguem permitir a propagação controlada pelos neurônios conectados.
Outra forma de melhorar o controle sobre a propagação viral é através de um receptor especial chamado TVA, que permite que o vírus da raiva se espalhe de forma mais precisa. No entanto, sem um controle cuidadoso, o vírus pode se espalhar demais e marcar neurônios em excesso, tornando difícil estudar conexões específicas.
Alguns pesquisadores desenvolveram novas variantes do RV que minimizam a toxicidade e permitem a marcação de neurônios a longo prazo. Ao ajustar a composição genética do vírus, eles podem melhorar sua capacidade de se espalhar enquanto mantêm a segurança para as células.
Optogenética: Controlando Neurônios com Luz
Uma ferramenta fascinante que surgiu nesse campo é a optogenética, que envolve o uso de luz pra controlar a atividade dos neurônios. Os pesquisadores encontraram maneiras de vincular proteínas sensíveis à luz aos genes responsáveis pela propagação viral. Ao iluminar essas proteínas, os cientistas conseguem ligar ou desligar a propagação do vírus.
Um exemplo envolve uma proteína de planta específica que responde a diferentes cores de luz. Quando uma luz vermelha é direcionada à proteína, ela ativa o gene para a propagação do vírus da raiva. Se luz far-vermelha for usada, o processo pode ser suprimido. Isso permite um controle muito preciso sobre onde o rastreamento viral ocorre.
Projetando o Sistema Optoeletrônico
Construir um sistema efetivo pra controlar esses processos envolve uma combinação de vários componentes. Os pesquisadores projetaram equipamentos que incluem um painel de luz especial e uma câmera. A câmera captura imagens enquanto o painel de luz brilha luz vermelha ou far-vermelha pra controlar a expressão gênica e a propagação viral.
O processo começa com os vetores virais infectando neurônios, permitindo que eles sejam marcados. Quando a luz é usada pra ativar neurônios específicos, o vírus se espalha para os neurônios conectados, permitindo que os pesquisadores visualizem a rede de conexões em tempo real.
Simplificando Técnicas de Imagem
Desenvolvimentos recentes em técnicas de imagem também tornaram mais fácil visualizar as conexões entre os neurônios. Em vez de usar microscópios convencionais, os pesquisadores começaram a usar sistemas de imagem sem lentes. Esses sistemas podem tirar fotos de grandes áreas sem precisar de equipamentos complexos e caros.
A imagem sem lentes funciona coletando padrões de luz de uma amostra sem precisar de uma lente tradicional. Isso permite que os pesquisadores capturem imagens de fatias do cérebro inteiramente de forma rápida e eficiente.
Combinando Tecnologias para Rastreio Aprimorado
Em seu trabalho, os pesquisadores combinaram vetores virais de alta capacidade com ferramentas Optogenéticas pra criar um sistema de rastreamento poderoso. Ao projetar um baculovírus pra carregar vários componentes necessários, eles podem controlar a expressão do gene do vírus da raiva responsável pela propagação.
A configuração geral permite o rastreamento de circuitos neurais, infectando primeiro os neurônios com baculovírus. Uma vez que os neurônios expressam os componentes necessários, o vírus da raiva pode ser introduzido. Quando a luz ativa os genes do vírus da raiva, o vírus se espalha pelos neurônios conectados, permitindo um mapeamento detalhado das vias neurais.
Aplicações e Direções Futuras
Essa abordagem optogenética pra rastrear conexões neurais tem muitas aplicações potenciais. Pode ser usada pra entender como diferentes regiões do cérebro se comunicam e como essas conexões mudam em doenças ou estágios de desenvolvimento.
Os pesquisadores podem usar esse mapeamento detalhado pra investigar distúrbios psiquiátricos, doenças neurodegenerativas e outras condições neurológicas. Além disso, esse tipo de rastreamento pode ajudar a identificar quais neurônios são responsáveis por funções específicas no cérebro.
Conclusão
A combinação de rastreamento viral e optogenética representa um grande avanço na nossa capacidade de estudar circuitos neurais. Ao permitir que os pesquisadores visualizem e controlem esses circuitos de forma mais eficaz, abrimos novos caminhos pra entender as complexidades do cérebro e suas conexões. À medida que a tecnologia continua a melhorar, o potencial de descobrir novas terapias e entender doenças neurológicas se torna ainda mais promissor.
Título: Light-Guided Rabies Virus Tracing for Neural Circuit Analysis
Resumo: Neuronal tracing methods are essential tools to understand the fundamental architecture of neural circuits and their connection to the overall functional behavior of the brain. Viral vectors used to map these transsynaptic connections are capable of cell-type-specific and directional-specific labeling of the neuronal connections. Herein, we describe a novel approach to guide the transsynaptic spreading of the Rabies Virus (RV) retrograde tracer using light. We built a Baculovirus (BV) as a helper virus to deliver all the functional components necessary and sufficient for a nontoxic RV to spread from neuron to neuron, with a light-actuated gene switch to control the RV polymerase, the L gene. This design should allow for precisely controlled polysynaptic viral tracing with minimal viral toxicity. To use this system in a highly scalable and automated manner, we built optoelectronics for controlling this system in vitro with a large field of view using an off-the-shelf CMOS sensor, OLED display panel, and microcontrollers. We describe the assembly of these genetic circuits using the uLoop DNA assembly method and a library of genetic parts designed for the uLoop system. Combining these tools provides a framework for increasing the capabilities of nontoxic tracing through multiple synapses and increasing the throughput of neural tracing using viruses.
Autores: Phillip Kyriakakis, S. Zhang, Y. Ma, W. Ngamkanjanarat, S. Takahashi, D. Gibbs, T. Coleman, S. Doan
Última atualização: 2024-02-23 00:00:00
Idioma: English
Fonte URL: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2023.03.04.531104
Fonte PDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2023.03.04.531104.full.pdf
Licença: https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/
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