POLAR-seqを使った遺伝子工学の進展
POLAR-seqは遺伝子解析を簡単にして、合成生物学の研究を加速させるんだ。
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目次
合成生物学と代謝工学は、新しいタスクを実行したり、価値のある物質を生産できる生物を設計することに重点を置いてる。科学者たちはこれらの生物の中の遺伝子を改良して、エンジニアリングされた宿主生物を作り出す。このプロセスは、特定の遺伝子やそれらの活動を制御する要素を生物のDNA内の一箇所に挿入することが一般的に含まれる。
代謝工学の課題
代謝工学では、望ましい分子を生産するための経路を作成するためにいくつかのステップが必要。これは慎重なバランスが求められる。科学者たちは、ターゲットとなる分子が十分な量で生産されると同時に、生物の内部の条件が適切に保たれていることを確認しなきゃいけない。生物の自然なプロセスをオーバーロードさせず、有害な物質が内部に蓄積しないようにすることが重要。
通常、研究者はデザイン、構築、テスト、学習のサイクルを使ってエンジニアリングされた生物を洗練させる。この方法は遅くて複雑な場合が多く、より迅速な戦略が必要とされるんだ。
より早くエンジニアリングするための新しいツール
このプロセスを加速させるために、合成生物学の新しいツールが登場してる。これらのツールは、科学者が多様な遺伝子の組み合わせを迅速に作れるモジュラーDNAアセンブリ法を利用してる。それらの方法を機能テストと組み合わせることで、研究者は以前よりも早く最適な遺伝子のセットアップを見つけられる。これにより、たった一回の実験で多くの遺伝子の組み合わせを分析できるようになるんだ。
科学者たちが探求する他の側面には、遺伝子の位置や配置がどのように活動に影響を与えるかが含まれる。こういった研究は、より良い遺伝子セットアップの最適化方法を明らかにすることがある。
遺伝子工学における多様性の創出
特定の機能のための遺伝子セットを組み立てるとき、研究者は遺伝子配列のプールを作成することが多い。このプールは宿主生物に変換され、遺伝子がそのDNAにうまく統合されることを確保する。しかし、全ての機能を持つ遺伝子を宿主生物のDNAの1箇所に配置するという別のアプローチもある。その後、ターゲット方法で生物の中のこれらの遺伝子の間に多様性を生じさせることができるので、多くのバリエーションを素早く生成できるんだ。
SCRaMbLE
注目すべき方法:合成遺伝子のバリエーションを作るために広く知られている方法はSCRaMbLEと呼ばれる。この技術は、特定の認識部位を持つ領域でDNAを再配置する。もともとは酵母用に開発されたSCRaMbLEでは、遺伝子の削除や複製などの制御された変更が可能になる。
当初は科学者が遺伝子の機能を理解するために役立てることを目的としてたけど、遺伝子デザインの微調整にも可能性を示してる。例えば、酵母でSCRaMbLEを使って、β-カロテンという化合物の生産を大幅に増加させる株のライブラリを作成した。
遺伝子最適化の新しい選択肢
最近、SCRaMbLEに触発された新しいシステムが開発され、遺伝子の発現を最適化することができる。この方法は、遺伝子の調節要素を再配置でき、細胞集団の中での遺伝子発現の多様性をさらに加える。
ジェノタイプ決定のスピードが必要
合成生物学で組み合わせの方法が人気になる中で、遺伝情報を分析するスピードは重要な課題として残ってる。大量の株をテストする際、研究者は最も有望な候補を特定するために蛍光やその他の特性を利用するんだ。スクリーニングの後、これらの最もパフォーマンスの良い株の元のDNA配列を決定して、遺伝子セットアップとその効果の間の関連性を見つける必要がある。
このアプローチは短い配列に対してはうまく機能するけど、研究者が複数の遺伝子を含む構築物を扱うときは、従来の方法では不十分なことがある。全ゲノムシーケンシングが必要になることが多いけど、このプロセスはコストがかかり時間もかかる。その結果、通常はわずか数株しかシーケンスされず、多くの価値ある情報が失われる。
新しいシーケンシング方法:POLAR-seq
これらの課題に対処するために、POLARシーケンシング(POLAR-seq)という新しい方法が導入された。このシンプルな方法には主に3つのステップがある:細胞からDNAを単離し、PCRを使って望ましいDNA領域を増幅し、ロングリード技術を使ってシーケンシングする。
この方法により、研究者は以前よりも効率的に複雑な遺伝子配置を分析できるようになる。POLAR-seqを使うことで、遺伝子の変更を経た細胞集団の中の遺伝的変異のより明確なイメージが得られる。
ロングレンジPCRの最適化
ロングレンジPCR増幅の課題の一つは、テンプレートとして使用されるDNAの質だ。高分子量のDNAサンプルが好ましく、増幅が成功するために必要になる。PCRプロセスにおいて適切な条件を決定すること、特に適切なDNAポリメラーゼを選択することが高品質な結果を生成するためには非常に重要。
ポリメラーゼの選択は長いDNAセグメントを増幅する能力に影響を与える。さまざまなオプションをテストした結果、特定のポリメラーゼがより良い性能を示し、シーケンシングに必要な大きなセグメントの成功した増幅を可能にした。
細胞プールのテスト
ロングレンジPCRの方法が確立された後、研究者は個々のコロニーではなく細胞のプールからDNAを増幅できる能力をテストすることに移った。これらのプールを準備して遺伝的変化を誘導することで、シーケンシングに必要なDNAを効果的に増幅し、このプロセス中に形成された遺伝子配置に関する貴重な情報を明らかにした。
ロングリードシーケンシングデータの分析
ロングレンジPCR産物をシーケンシングした後、研究者は得られたデータを分析した。彼らは再配置プロセスから生じた多数のユニークな遺伝子の組み合わせを成功裏に特定した。この迅速な特定プロセスにより、遺伝子の削除やその他の構造的変異に関する洞察が得られ、科学者たちに結果として得られた遺伝的風景の詳細な見解を提供した。
遺伝子再配置の理解
データ分析から、特定の遺伝子が他の遺伝子よりも削除されやすいことがわかった。各遺伝子の存在を定量化することで、研究者は遺伝子セットアップを維持するためのその重要性に関する詳細を推測できた。この種の分析は、特定の条件下で生存や機能にとって重要な遺伝子を強調するのに役立つ。
構造分析を超えるPOLAR-seqの使用
POLAR-seqは、削除やその他の再配置を分析するのに効果的であることが証明されたけど、その可能性は構造的変化だけにとどまらない。この方法は、遺伝子セットアップの最適なデザインを明らかにするためにも使える。
例えば、遺伝子コンポーネントを選択する代わりに、研究者は一度に遺伝子配列のライブラリを組み立て、その後POLAR-seqと機能スクリーニングを併用して分析することができる。また、研究者は時間の経過とともに異なる遺伝子の組み合わせの適応性を追跡することができ、さまざまな条件下でどのセットアップが最も良く機能するかを理解できるようになる。
POLAR-seqのコスト効果
POLAR-seqの利点の一つは、その手頃な価格だ。代替方法と比較して、大量の遺伝子変異を分析するためのコスト効果の高い方法を提供している。実験に必要な基本的な材料はコストを抑えられるため、広範囲の研究アプリケーションにアクセスしやすくなる。
可能な制限に対処
POLAR-seqは強力だけど、限界もある。この方法は、個々の塩基レベルでの変化を検出するのではなく、構造的変異に焦点を当てている。つまり、生物内の遺伝的変異のすべてのニュアンスを捉えることができないかもしれない。
データの質を向上させるために、高忠実度ポリメラーゼを使用することでPCRステップ中のエラー率を低下させる助けになる。また、シーケンシング技術の進歩は、使用する方法の全体的な精度を向上させ続けている。
結論
要するに、POLAR-seqの開発は合成生物学と代謝工学の分野において重要な進展を示している。複雑な遺伝子セットアップの分析プロセスを簡素化することによって、この方法は研究者がエンジニアリングされた生物をよりよく理解し利用する新たな機会を開く。遺伝的変異を迅速かつ正確に評価する能力は、バイオテクノロジーから医療までのさまざまなアプリケーションにおける発見を加速させる可能性を秘めている。方法が進化する中で、さらなる改善があれば遺伝子工学の複雑さについての理解がより深まるかもしれない。
タイトル: Combinatorial Design Testing in Genomes with POLAR-seq
概要: Synthetic biology projects increasingly use modular DNA assembly or synthetic in vivo recombination to generate diverse combinatorial libraries of genetic constructs for testing. But as these designs expand to multigene systems it becomes challenging to sequence these in a cost-effective way that reveals the genotype to phenotype relationships in the libraries. Here, we introduce a new quick, low-cost method designed for assessing combinational designs of genome-integrated multigene constructs that we call Pool of Long Amplified Reads (POLAR) sequencing. POLAR-seq takes genomic DNA isolated from library pools and uses long range PCR to amplify target genomic regions up to 35 kb long containing combinatorial designs. The pool of long amplicons is then directly read by nanopore sequencing with full length reads then used to identify the gene content and structural variation of individual genotypes in the library and read count indicating how abundant a genotype is within the pool. Using yeast cells with loxP-containing synthetic gene clusters that rearrange in vivo in the presence of Cre recombinase, we demonstrate how POLAR-seq can be used to identify global patterns from combinatorial experiments, find the most abundant genotypes in a pool and also be adapted to sequence-verify gene clusters from isolated strains.
著者: Tom Ellis, K. Ciurkot, X. Lu, A. Malyshava, L. Soro, A. Lees, T. E. Gorochowski
最終更新: 2024-06-06 00:00:00
言語: English
ソースURL: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.06.06.597521
ソースPDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.06.06.597521.full.pdf
ライセンス: https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/
変更点: この要約はAIの助けを借りて作成されており、不正確な場合があります。正確な情報については、ここにリンクされている元のソース文書を参照してください。
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