Comprendere i fibrilli proteici: intuizioni e tecniche
Esplorare la struttura e il ruolo delle fibrille proteiche nella salute e nella malattia.
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Indice
- Il Ruolo delle Fibrille nelle Malattie
- La Sfida di Studiare le Fibrille
- Microscopia Elettronica Criogenica (cryo-EM)
- Risonanza Magnetica Nucleare (NMR) allo Stato Solido
- Combinare le Tecniche
- Come Tm1-LC Forma le Fibrille
- Osservare le Fibrille Usando la Microscopia Elettronica
- Costruire Modelli Strutturali
- Confrontare Diverse Tecniche
- L'Importanza della Dinamica delle Fibrille
- Conclusione: I Vantaggi di Usare Entrambi i Metodi
- Fonte originale
La fibrillazione proteica è un processo in cui le proteine formano strutture lunghe e filamentose chiamate Fibrille. Questo può succedere sia in normali funzioni del corpo che in malattie. Capire come le proteine cambiano forma e formano queste fibrille è importante perché può aiutarci a imparare di più su alcune malattie, soprattutto quelle che colpiscono il cervello, come l'Alzheimer e la SLA. Alcune ricerche mostrano che il modo in cui queste fibrille sono strutturate può aiutarci a capire quanto può essere grave una malattia.
Il Ruolo delle Fibrille nelle Malattie
In malattie come la SLA (sclerosi laterale amiotrofica) e la demenza frontotemporale, alcune proteine possono ripiegarsi male e creare tipi distinti di fibrille, che sono dannose per le cellule. La proteina TDP-43, trovata in queste malattie, può formare strutture diverse o forme conosciute come polimorfi. Queste forme sembrano essere collegate a quanto è grave la malattia. È interessante notare che non tutte le fibrille formate dalle proteine sono cattive; alcune possono avere ruoli in importanti funzioni biologiche, come la formazione di biofilm o il coinvolgimento nella memoria.
La Sfida di Studiare le Fibrille
Studiare le fibrille proteiche non è facile perché non c'è un metodo unico che possa dirci tutto su come succede. Gli scienziati usano spesso tecniche avanzate come la Microscopia Elettronica Criogenica (cryo-EM) e la risonanza magnetica nucleare (NMR) allo stato solido per studiare queste strutture. Ogni metodo ha i suoi punti di forza e limiti, quindi è importante sapere come possono lavorare insieme.
Microscopia Elettronica Criogenica (cryo-EM)
La cryo-EM è uno strumento potente che aiuta gli scienziati a vedere la forma e la struttura complessiva delle proteine a un livello di dettaglio molto alto. Tuttavia, di solito non fornisce buone informazioni sulle parti più flessibili delle proteine. Questo è cruciale perché quelle regioni flessibili possono influenzare significativamente come le proteine funzionano e formano fibrille.
Quando gli scienziati usano la cryo-EM, devono preparare i campioni di proteine con molta attenzione. Questo implica assicurarsi che i campioni siano nella forma giusta e abbiano lo spessore giusto di ghiaccio intorno. A volte devono anche usare detergenti per separare correttamente le fibrille, il che può essere un compito complicato.
Risonanza Magnetica Nucleare (NMR) allo Stato Solido
D'altra parte, la NMR allo stato solido può fornire dettagli sulle regioni rigide e flessibili delle fibrille proteiche. Questo metodo non richiede di separare le fibrille, il che può essere un vantaggio. La NMR allo stato solido può anche dare informazioni senza necessità che le fibrille abbiano una forma specifica e attorcigliata. Tuttavia, richiede più campioni e può essere complicato perché alcune parti degli spettri potrebbero essere difficili da interpretare.
Combinare le Tecniche
Usare sia la cryo-EM che la NMR allo stato solido consente ai ricercatori di ottenere un quadro completo delle fibrille proteiche. La cryo-EM può mostrare come è strutturata la parte rigida della fibrilla, mentre la NMR allo stato solido può rivelare il comportamento delle regioni più flessibili. Ad esempio, negli studi della proteina Tm1-LC delle mosche della frutta, entrambe le tecniche hanno fornito informazioni complementari su come la proteina si ripiega e si comporta.
Come Tm1-LC Forma le Fibrille
Per studiare la Tm1-LC, i ricercatori hanno prodotto la proteina in laboratorio. Hanno scoperto che quando messa in un ambiente specifico, le proteine Tm1-LC formerebbero naturalmente fibrille. Questo processo implica mescolarle in una soluzione, trattarle con ultrasuoni e poi lasciarle riposare per una settimana in condizioni specifiche. Le osservazioni hanno mostrato che queste fibrille erano ben formate e distanziate.
La sequenza di aminoacidi nella Tm1-LC rivela che ha molti tipi particolari di residui che aiutano con la sua struttura. I ricercatori hanno previsto che parti specifiche della Tm1-LC sarebbero state inclini a formare fibrille, ma i programmi di previsione standard non hanno riconosciuto questo in regioni specifiche.
Osservare le Fibrille Usando la Microscopia Elettronica
Usando la microscopia elettronica con colorante negativo, i ricercatori sono riusciti a osservare direttamente le fibrille di Tm1-LC. Hanno scattato foto che mostrano il distanziamento e la forma delle fibrille, aiutandoli a capire come queste strutture variassero. Hanno notato diverse forme di fibrille sulla stessa rete, il che era importante per la loro analisi.
Costruire Modelli Strutturali
Per ottenere informazioni dettagliate sulla struttura delle fibrille Tm1-LC, i ricercatori hanno usato la cryo-EM per raccogliere dati. Hanno elaborato questi dati con attenzione per trovare schemi specifici nelle fibrille. Sono riusciti a identificare quattro distinte strutture di fibrille, portando a una migliore comprensione di come queste proteine erano disposte.
Con l'aiuto di un programma per computer, i ricercatori sono stati in grado di costruire modelli di queste strutture basati sulle mappe di densità ottenute dalla cryo-EM. I modelli mostrano come apparivano le diverse classi di fibrille e hanno aiutato a comprendere la loro struttura quaternaria, che si riferisce a come queste molecole proteiche interagiscono in un assemblaggio più grande.
Confrontare Diverse Tecniche
Dopo aver ottenuto risultati dalla cryo-EM, i ricercatori hanno usato la NMR allo stato solido per analizzare gli stessi campioni di proteine Tm1-LC. I risultati di entrambi i metodi erano strettamente allineati, mostrando che potevano concordare sulla struttura del nucleo rigido delle fibrille. Nonostante le differenze, hanno anche fornito informazioni sulle regioni circostanti il nucleo che non erano visibili nella cryo-EM, sottolineando l'importanza di studiare entrambi gli aspetti.
L'Importanza della Dinamica delle Fibrille
Le aree intorno al nucleo rigido delle fibrille Tm1-LC giocano un ruolo cruciale nella loro struttura complessiva. La NMR allo stato solido ha mostrato che mentre il nucleo era fisso e ben definito, parti della proteina più lontane potevano muoversi più liberamente. Queste regioni flessibili sono essenziali per comprendere la struttura e la funzione completa delle fibrille.
Conclusione: I Vantaggi di Usare Entrambi i Metodi
Attraverso le loro ricerche, gli scienziati hanno scoperto che combinare cryo-EM e NMR allo stato solido fornisce un quadro più completo delle fibrille Tm1-LC. Mentre la cryo-EM mostrava la forma complessiva e il nucleo rigido, la NMR allo stato solido era in grado di esplorare la dinamica e il comportamento delle regioni flessibili. Ogni metodo ha portato punti di forza unici all'analisi, aiutando nella caratterizzazione di queste strutture proteiche complesse.
Nel futuro, usare insieme queste tecniche potrebbe portare a una migliore comprensione di come le proteine interagiscono in varie condizioni e come affrontare malattie che coinvolgono il ripiegamento e la fibrillazione delle proteine. Studiando sia le regioni rigide che quelle mobili delle proteine, i ricercatori potrebbero aprire nuove strade per scoprire trattamenti e ottenere ulteriori approfondimenti sui processi biologici.
Titolo: Cryo-EM and Solid State NMR Together Provide a More Comprehensive Structural Investigation of Protein Fibrils
Estratto: The Tropomyosin 1 isoform I/C C-terminal domain (Tm1-LC) fibril structure is studied jointly with cryogenic electron microscopy (cryo-EM) and solid state nuclear magnetic resonance (NMR). This study demonstrates the complementary nature of these two structural biology techniques. Chemical shift assignments from solid state NMR are used to determine the secondary structure at the level of individual amino acids, which is faithfully seen in cryo-EM reconstructions. Additionally, solid state NMR demonstrates that the region not observed in the reconstructed cryo-EM density is primarily in a highly mobile random coil conformation rather than adopting multiple rigid conformations. Overall, this study illustrates the benefit of investigations combining cryo-EM and solid state NMR to investigate protein fibril structure. SignificanceThe use of multiple techniques to structurally characterize proteins provides models that accurately describe molecular conformations better than a technique used in isolation. Combination approaches allow for the study of proteins not only as rigid objects, but rather dynamic molecules that "breathe" over time. Cryogenic electron microscopy and solid state nuclear magnetic resonance are used jointly to provide a more detailed model of the same protein fibrils, and each technique provides novel insights.
Autori: Dylan T Murray, B. D. Fonda, M. Kato, Y. Li
Ultimo aggiornamento: 2024-06-02 00:00:00
Lingua: English
URL di origine: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.05.30.596698
Fonte PDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.05.30.596698.full.pdf
Licenza: https://creativecommons.org/licenses/by-nc/4.0/
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