Fortschritte in der Ubiquitinierungsforschung mit Ub-POD
Eine neue Methode zur Untersuchung von E3-Ligasen und ihren Substratinteraktionen.
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Inhaltsverzeichnis
Ubiquitinierung ist ein Prozess, bei dem ein kleines Protein namens Ubiquitin an andere Proteine angehängt wird. Diese Anheftung kann signalisieren, dass das Zielprotein abgebaut, verändert oder an verschiedene Stellen in der Zelle geschickt werden soll. Ubiquitinierung ist entscheidend für viele zelluläre Funktionen, einschliesslich der Reaktion der Zellen auf Stress, der Reparatur von DNA und der Kontrolle des Zellzyklus.
Der Ubiquitinierungsprozess
Der Prozess der Ubiquitinierung umfasst drei Haupttypen von Enzymen: E1, E2 und E3.
E1-Enzyme (Ubiquitin-Aktivierungsenzyme): Diese Enzyme aktivieren Ubiquitin, indem sie es an sich selbst anheften und dafür Energie aus ATP nutzen.
E2-Enzyme (Ubiquitin-Konjugationsenzyme): Nach der Aktivierung überträgt E1 Ubiquitin auf E2. E2-Enzyme spielen eine Rolle beim Transport von Ubiquitin zum Zielprotein.
E3-Enzyme (Ubiquitin-Ligase): E3-Enzyme sind wichtig, weil sie helfen, welches spezifische Protein Ubiquitin erhält. Sie binden sowohl das E2-Enzym, das Ubiquitin trägt, als auch das Zielprotein und erleichtern so die Übertragung von Ubiquitin.
Dieser gesamte Prozess ist wie ein Staffellauf. E1 beginnt mit der Aktivierung von Ubiquitin, E2 trägt es dann weiter, und E3 sorgt dafür, dass es am richtigen Ziel ankommt.
Bedeutung der E3-Ligase
E3-Ligase sind entscheidend, weil sie Spezifität im Ubiquitinierungsprozess bieten. Es gibt mehr als 600 verschiedene E3-Ligase beim Menschen, und sie können Tausende von verschiedenen Proteinen anvisieren. Diese Vielfalt ermöglicht es der Zelle, viele verschiedene Prozesse effizient zu steuern.
E3-Ligase können in mehrere Familien unterteilt werden, basierend auf ihrer Struktur, wobei zwei bedeutende Gruppen die RING- und U-Box-Typen sind. RING E3-Ligase sind die häufigsten und erleichtern direkt die Übertragung von Ubiquitin auf das Zielprotein. U-Box-Ligase haben eine ähnliche Funktion, jedoch eine andere Struktur.
Identifizierung der richtigen Substrate
Um zu wissen, wie E3-Ligase in der Zelle funktionieren, ist es wichtig, ihre Substrate zu identifizieren. Traditionelle Methoden zur Auffindung dieser Interaktionen beinhalten Techniken, die oft mit der transienten Natur von E3-Substrat-Beziehungen zu kämpfen haben. Um dem entgegenzuwirken, wurden neuere Methoden entwickelt, um die Substratauswahl zu verbessern.
Ein effektiver Ansatz ist die Verwendung von Antikörpern, die Reste erkennen können, die nach der Ubiquitinierung auf Proteinen zurückbleiben. Zum Beispiel kann ein spezifisches Fragment von Ubiquitin, das erscheint, wenn Proteine zerschnitten werden, zur Analyse herangezogen werden. Eine andere Methode verwendet Fusionsproteine von Ubiquitin zu E3-Ligase, um Substrate zu "fangen", wodurch Forscher den gesamten Komplex zur Untersuchung herausziehen können.
Eine neue Methode: Ub-POD
In aktuellen Forschungen wurde eine neuartige Technik namens Ub-POD (Ubiquitin-Proximitäts-abhängige Kennzeichnung) entwickelt, um die Substrate von E3-Ligase direkt in Zellen zu kennzeichnen und zu identifizieren. Mit Ub-POD können Forscher E3-Ligase so markieren, dass sie während des Ubiquitinierungsprozesses mit den Substraten interagieren.
Wie Ub-POD funktioniert
Die Ub-POD-Methode nutzt, dass E3-Ligase eine stabile Verbindung mit ihren Substraten bilden. Ein spezielles Enzym namens BirA wird in diesem Prozess verwendet:
BirA wird an die E3-Ligase markiert.
Ubiquitin wird mit einem kleinen Peptid-Tag (Akzeptorpeptid, AP) modifiziert.
Wenn die E3-Ligase sowohl an Ubiquitin als auch an das Substrat bindet, kann BirA das mit AP verbundene Ubiquitin mit Biotin markieren.
Die biotinilierten Substrate können dann mithilfe von Streptavidin-Perlen aus dem Zellgemisch herausgezogen werden.
Schliesslich analysieren Forscher diese biotinilierten Proteine, um die Ziele der E3-Ligase zu identifizieren.
Diese Methode reduziert das Hintergrundrauschen, das oft bei anderen Techniken zu sehen ist, und ermöglicht eine effiziente Visualisierung, wo Ubiquitinierung in der Zelle stattfindet.
Testen von Ub-POD mit E3-Ligase
Um den Ub-POD-Ansatz zu validieren, haben Forscher ihn auf zwei verschiedene E3-Ligase angewendet: RAD18 und TRAF6.
RAD18 und DNA-Reparatur
RAD18 ist an der Reparatur von DNA beteiligt, wenn sie beschädigt wird. Es fügt Ubiquitin an ein Protein namens PCNA hinzu, das eine Rolle bei der DNA-Replikation spielt. Mit Ub-POD haben die Forscher herausgefunden, dass RAD18 PCNA in Zellen nach der Exposition gegenüber UV-Licht, das DNA-Schäden verursacht, effektiv kennzeichnet.
Durch die Verwendung dieser Methode konnten sie verfolgen, wie RAD18 PCNA modifiziert und möglicherweise andere Substrate identifizieren, die RAD18 unter verschiedenen Bedingungen anvisiert.
TRAF6 und Immunantworten
TRAF6 ist eine weitere E3-Ligase, die eine bedeutende Rolle in Immunantworten spielt. Forscher verwendeten die Ub-POD-Methode, um TRAF6 zu untersuchen, und fanden heraus, dass sie eine Reihe von Proteinen identifizieren konnte, die an Signalwegen beteiligt sind, die mit Entzündung und Zellüberleben verbunden sind.
Dieser Prozess ermöglichte es ihnen, zuvor bekannte TRAF6-Substrate zu bestätigen und auch neue potenzielle Substrate zu entdecken, die mit Immunantworten verbunden sind.
Anwendung auf andere Ligase: CHIP
Eine weitere E3-Ligase, bekannt als CHIP, ist wichtig für die Aufrechterhaltung der Proteinqualität in der Zelle. Wie RAD18 und TRAF6 haben Forscher die Ub-POD-Methode auf CHIP angewendet, um seine Substrate zu identifizieren.
Durch die Anpassung des Ansatzes, um CHIP mit verschiedenen Linkern und Bedingungen einzuschliessen, fanden die Forscher nicht nur bekannte Substrate von CHIP, sondern auch neue potenzielle Ziele. Diese Anpassungsfähigkeit der Ub-POD-Methode zeigt ihre Stärke bei der Identifizierung verschiedener E3-Ligase-Substrate.
Vorteile von Ub-POD gegenüber anderen Methoden
Es gibt mehrere Gründe, warum die Ub-POD-Methode herausragt, wenn es um die Identifizierung von Ubiquitin-Ligase-Substraten geht:
Spezifität: Im Gegensatz zu traditionellen Methoden der Nähe-Kennzeichnung, die viele nicht verwandte Proteine markieren können, ist Ub-POD darauf ausgelegt, spezifisch Proteine zu kennzeichnen, die direkt am Ubiquitinierungsprozess beteiligt sind.
Kontrolle über die Bedingungen: Die Methode erlaubt es Forschern, Faktoren wie das Timing der Biotinaddition und die Dauer der Exposition gegenüber verschiedenen Bedingungen zu kontrollieren, was dazu beiträgt, die Substratauswahl für verschiedene Ligase zu optimieren.
Vielseitigkeit: Ub-POD kann auf verschiedene E3-Ligase angewendet werden, einschliesslich solcher mit unterschiedlichen Strukturen und Funktionen. Diese universelle Natur macht es zu einem wertvollen Werkzeug im Bereich der Biologie.
Visualisierung: Die Methode erleichtert auch die Visualisierung, wo Ubiquitinierung in der Zelle stattfindet, was Einblicke in die zellulären Funktionen verschiedener E3-Ligase bietet.
Fazit
Ubiquitinierung ist ein essentieller zellulärer Prozess, der eine breite Palette von Funktionen beeinflusst. Zu verstehen, wie E3-Ligase ihre Substrate identifizieren und modifizieren, ist entscheidend für das Entschlüsseln ihrer Rollen in Gesundheit und Krankheit. Die Ub-POD-Methode bietet einen neuen und leistungsstarken Weg, um diese Interaktionen zu studieren, und verbessert unser Verständnis von Proteostase, DNA-Reparatur, Immunantworten und mehr.
Die Fortschritte in diesem Bereich könnten zu besseren Einblicken in Krankheiten führen, die mit Proteinfehlfaltung, Defiziten bei der DNA-Reparatur und Immunstörungen verbunden sind, was möglicherweise therapeutische Strategien in der Zukunft leiten könnte.
Titel: A ubiquitin-specific, proximity-based labeling approach for the identification of ubiquitin ligase substrates
Zusammenfassung: Ubiquitination of proteins is central to protein homeostasis and other cellular processes including DNA repair, vesicular transport, cell-division etc. The process of ubiquitination is conserved from yeast to humans and is carried out by the sequential action of three enzymes: E1, E2 and E3. There are an estimated >600 E3 ligases in humans that execute ubiquitination of specific target proteins in a spatio-temporal manner to elicit desired signaling effects. Here, we developed a ubiquitin-specific proximity-based labeling method to selectively biotinylate substrates of a given ubiquitin ligase. Our method exploits the proximity and the relative orientation of the E3-ligase catalytic domain with respect to ubiquitin observed in the enzymatic intermediate-state structures of E3-E2[~]Ub. By fusing the biotin ligase BirA and an Avi-tag variant to the candidate E3 ligase and ubiquitin, respectively, we were able to specifically enrich bona fide substrates and potential new substrates of a ligase using a one-step streptavidin pulldown under denaturing conditions. As proof-of-principle, we applied our method, which we named Ub-POD, to the RING E3 ligase RAD18. RAD18 ubiquitinates DNA-sliding clamp PCNA upon UV-induced DNA damage. We identified PCNA and several other critical players in the DNA damage repair pathway in a single RAD18 Ub-POD experiment. We went on to validate DNA replicase POLE as a possible new substrate of RAD18. Through RAD18 Ub-POD, we were also able to pin down the cellular localization of RAD18-mediated ubiquitination to the damaged DNA nuclear puncta using streptavidin immunofluorescence. Furthermore, we applied Ub-POD to TRAF6, another RING ubiquitin ligase involved in NF-{kappa}B signaling and successfully identified known and potentially new TRAF6 substrates. Finally, we adapted our method to the U-box-type E3 ubiquitin ligase CHIP to demonstrate that we can identify substrates of two major classes of mammalian ubiquitin ligases. We anticipate that our method and principle could be widely adapted to all classes of ubiquitin ligases to identify substrates and localize the cellular site(s) of ubiquitination.
Autoren: Sagar Bhogaraju, U. Mukhopadhyay, S. Levantovsky, S. Gharbi, F. Stein, C. Behrends
Letzte Aktualisierung: 2024-02-29 00:00:00
Sprache: English
Quell-URL: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2023.09.04.556194
Quell-PDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2023.09.04.556194.full.pdf
Lizenz: https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/
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