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# Biologie# Biochemie

Neue Methoden zur Untersuchung von integralen Membranproteinen

Forscher entwickeln innovative Techniken, um integrale Membranproteine und ihre Wechselwirkungen mit Medikamenten besser zu verstehen.

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Inhaltsverzeichnis

Integrale Membranproteine (IMPs) sind spezielle Proteine, die in unseren Zellen eine entscheidende Rolle spielen. Sie helfen bei verschiedenen Aufgaben wie dem Senden von Signalen zwischen Zellen, dem Erkennen anderer Zellen und dem Bewegen von Nährstoffen und Ionen rein und raus aus den Zellen. Stell dir vor, sie sind wie Türsteher und Bodyguards in einem Club, die kontrollieren, wer rein darf, wer raus darf und dafür sorgen, dass alles reibungslos läuft.

Das Dilemma der Arzneimittelentwicklung

Obwohl IMPs nur einen kleinen Teil unseres Genoms ausmachen – nur etwa 20 bis 30 % – sind sie für einen Grossteil der Arzneimittelziele verantwortlich. Tatsächlich machen sie fast zwei Drittel der Ziele aus, die Forscher mit neuen Medikamenten anvisieren möchten. Das zeigt, wie wichtig IMPs für unsere Gesundheit und Medizin sind. Allerdings ist das Studieren dieser Proteine oft knifflig, weil sie selten und wasserabweisend sind, was die Untersuchung in einem Labor erschwert.

Proteomik zur Untersuchung von Proteinen

Um diese schlüpfrigen Proteine zu untersuchen, haben Wissenschaftler auf Proteomik zurückgegriffen. Das ist ein Bereich, der sich darauf konzentriert, Proteine und deren Wechselwirkungen zu identifizieren und zu verstehen. Eine beliebte Methode ist die Affinitätsreiniger-Massenspektrometrie (AP-MS). Dabei werden spezielle chemische Verbindungen verwendet, um Proteine zu fangen und zu identifizieren. Denk daran wie an klebrige Fallen, um Mäuse zu fangen – nur hier versuchen wir, Proteine zu fangen.

Eine weitere clevere Methode ist die Drug Affinity Responsive Target Stability (DARTS), die nach Veränderungen der Proteine sucht, wenn sie mit Medikamenten interagieren. Diese Technik hilft Wissenschaftlern zu sehen, wie Proteine ihre Form ändern, wenn sie ihren „Freunden“ begegnen, was entscheidend für die Entwicklung neuer Medikamente ist.

Dann gibt es noch das thermale Proteom-Profiling (TPP), eine Methode, die beobachtet, wie Proteine auf Wärme reagieren. Sie kann zeigen, ob ein Medikament dazu beiträgt, ein Protein stabil zu halten, ähnlich wie eine warme Decke dich an einem Winterabend kuschelig hält. Allerdings konzentriert sich TPP oft auf lösliche Proteine und lässt unsere geliebten transmembranen Proteine im Stich.

Bessere Wege zur Untersuchung von IMPs finden

Um diese Herausforderungen zu umgehen, haben Wissenschaftler verschiedene Strategien erkundet, darunter die Entwicklung von Membran-Mimetika (MMs). Das sind Werkzeuge, die helfen, Membranproteine in einer wasserfreundlichen Umgebung zu halten, damit sie ihre Form oder Funktion nicht verlieren. Eines dieser Werkzeuge, das Peptidisc genannt wird, wirkt wie ein unterstützender Freund, der das Protein umarmt und stabil hält.

Mit Peptidisc-Bibliotheken können Wissenschaftler die gesamte Sammlung von Membranproteinen untersuchen, von winzigen Bakterien bis zu grossen Säugetierzellen. Diese Bibliotheken helfen, die Proteine in ihrem natürlichen Zustand zu halten, was wichtig ist, um zu verstehen, wie sie funktionieren und mit Medikamenten interagieren.

Der neue Ansatz: MMs mit TPP kombinieren

In einer aktuellen Studie beschlossen Forscher, die Peptidisc-Methode in den Workflow des thermalen Proteom-Profileings zu integrieren. Dieser innovative Ansatz ermöglicht einen besseren Blick darauf, wie integrale Membranproteine mit Liganden (kleine Moleküle, die an Proteine binden) interagieren, ohne dass Reinigungsmittel stören, die die Dinge durcheinanderbringen können.

Sie testeten ihre kombinierte Methode – nennen wir sie MM-TPP – an E. coli und Mauslebermembranen. Ziel war es zu sehen, wie gut dieses Setup Proteine identifizieren konnte, die mit ATP und anderen verwandten Verbindungen interagieren. ATP ist wie Treibstoff für unsere Zellen, daher ist es wichtig zu verstehen, wie es mit Proteinen interagiert.

Wie die MM-TPP-Methode funktioniert

Die MM-TPP-Methode ist einfach, aber effektiv. Zuerst bereiten die Forscher rohe Membranen aus Geweben vor. Dann rekombinieren sie integrale Membranproteine in der Peptidisc-Bibliothek. Danach setzen sie die Proben einem Liganden oder einer Kontrollsubstanz aus, gefolgt von einer Erwärmung, um zu beobachten, wie sich die Proteine verhalten. Kurz gesagt, es ist wie ein Workout für die Proteine, um zu sehen, wie fit sie im Beisein verschiedener Liganden sind.

Sobald alles erhitzt und abgekühlt ist, analysieren die Forscher die Proben mittels Massenspektrometrie, die hilft, Proteine zu identifizieren, die sich aufgrund des Liganden stabilisiert oder destabilisiert haben. Dieser Prozess gibt den Wissenschaftlern ein klareres Bild davon, welche Proteine wahrscheinlich mit Medikamenten interagieren.

Die Proteine im Blick behalten

Um ihre Methode zu validieren, konzentrierten sich die Forscher auf ein spezielles ABC-Transporterprotein namens MsbA. Sie fanden heraus, dass das MsbA-Protein bei Exposition gegenüber ATP und einer anderen Verbindung namens Vanadat bei höheren Temperaturen stabiler wurde. Das war ein gutes Zeichen dafür, dass ihre MM-TPP-Methode funktionierte.

Sie schauten sich auch die Daten der Massenspektrometrie an, um zu bestimmen, wie viele integrale Membranproteine Stabilitätsänderungen zeigten. Überraschenderweise fanden sie sogar unter den harten Bedingungen der Leber, dass eine signifikante Anzahl von Proteinen eine erhöhte thermale Stabilität mit ATP und Vanadat aufwies, ähnlich wie die Proteine in E. coli.

Die ABC-Transporter-Entdeckung

Unter den Ergebnissen bemerkten sie eine Gruppe von ABC-Transportern in der Leber, die für den Transport von Substanzen in und aus den Zellen entscheidend sind. Acht von zehn ABC-Transportern zeigten eine signifikante Stabilisierung bei Exposition gegenüber ATP-Vanadat – ein beeindruckendes Ergebnis! Ein Protein, BCS1L, zeigte sogar eine erstaunliche 30-fache Erhöhung der Stabilität, als es mit AMP-PNP, einem nicht-hydrolysierbaren ATP-Analogen, behandelt wurde.

Diese Ergebnisse sind nicht nur spannend für Wissenschaftler; sie haben auch Auswirkungen auf die Arzneimittelentdeckung, besonders bei Krankheiten, bei denen diese Transporter eine Rolle spielen.

Aufdecken von Off-Target-Effekten

Noch interessanter ist, dass einige Membranproteine ohne ein ATP-bindendes Etikett ebenfalls signifikante Stabilisierung zeigten. Das könnte darauf hindeuten, dass einige Proteine Stabilität durch Verbindungen mit anderen ATP-bindenden Proteinen finden oder sogar durch andere Moleküle, die während des ATP-Stoffwechsels produziert werden.

Zum Beispiel zeigten zwei Rezeptoren, P2RY6 und P2RY12, stabiles Verhalten, obwohl sie hauptsächlich auf ADP reagieren, nicht auf ATP. Das wirft Fragen auf, wie verschiedene Liganden die Stabilität von Proteinen beeinflussen können, ein Bereich, den es wert ist, tiefer zu erkunden.

Die Lektion, die gelernt wurde

All diese Erkenntnisse zeigen die Effektivität der Verwendung von Peptidisc-Bibliotheken im thermalen Proteom-Profiling. Diese Methode ermöglicht es Wissenschaftlern, Membranproteine direkt aus Geweben zu studieren und dabei alles so natürlich wie möglich zu halten. Sie bewahrt, wie Proteine in realen biologischen Umgebungen interagieren und reagieren, was sie vor Verzerrungen durch traditionelle Labormethoden schützt.

Indem sie verstehen, wie Liganden diese Proteine beeinflussen, können Forscher wertvolle Einblicke für die Arzneimittelentwicklung gewinnen, insbesondere für Medikamente, die möglicherweise mit mehreren Zielen interagieren.

Der Weg nach vorne

Obwohl es immer noch Herausforderungen gibt – wie die Sicherstellung, dass physiologische Funktionen nach der Ligandenbindung erhalten bleiben –, bietet die Kombination von Membran-Mimetika mit bestehender Technologie wie TPP vielversprechende Möglichkeiten. Sie ermöglicht einen klareren Blick darauf, wie Medikamente im Körper wirken könnten und wie Stoffwechselprodukte die Wirksamkeit und Sicherheit von Medikamenten beeinflussen können.

Zusammenfassend zeigt die Forschung, dass ein wenig Kreativität und Innovation einen grossen Unterschied machen können, wenn es um integrale Membranproteine geht. Wenn Forscher weiterhin erforschen, wie diese Proteine mit Medikamenten interagieren, könnten wir bald bessere Wege finden, Behandlungen zu entwickeln, die effizienter sind und weniger Nebenwirkungen bei vielen Krankheiten verursachen.

Vorbereitung von E. coli- und Mauslebermembranen

Schauen wir hinter die Kulissen. Wie bereiten Wissenschaftler diese Membranen genau für die Untersuchung vor?

Zuerst nehmen sie E. coli, ein häufiges Bakterium. Nachdem sie es in einem speziellen Nährmedium gezüchtet haben, spinnen sie es in einer Zentrifuge – einem Gerät, das Materialien durch schnelles Drehen trennt. Sie verwenden einen speziellen Puffer, um die Bakterienzellen zu waschen und aufzubrechen, sodass alle nützlichen Teile herauskommen.

Sobald sie den Zellinhalt haben, spinnen sie es erneut bei hohen Geschwindigkeiten, um die Membranen – die Spieler, die uns interessieren – zu isolieren. Dann suspendieren sie diese Membranen in einem Puffer für die spätere Verwendung.

Bei der Mausleber ist der Prozess ähnlich, erfordert aber etwas mehr Feingefühl. Nachdem die Mäuse (natürlich auf humane Weise) geopfert wurden, waschen die Forscher die Leber, um das Blut zu entfernen. Dann zerhacken sie sie und verwenden einen speziellen Lysespüler, um die Zellen aufzubrechen und sicherzustellen, dass sie zu den Membranen gelangen.

Wie bei E. coli durchlaufen auch die Leberproben eine Zentrifugation, um die benötigten Membranproteine für die Analyse zu extrahieren.

Erstellen von Peptidisc-Membranproteingbibliotheken

Jetzt, wo die Membranproteine isoliert sind, ist es an der Zeit, die Peptidisc-Bibliothek vorzubereiten. Dabei werden die Membranproteine in einem Detergens solubilisiert, was hilft, sie stabil und funktional zu halten.

Nach der Solubilisation werden die Proteine mit Peptidisc-Peptiden gemischt, die es den Proteinen erlauben, eine stabile Struktur zu bilden. Die Wissenschaftler gehen dann durch eine Reihe von Verdünnungs- und Konzentrationsschritten, um sicherzustellen, dass das Detergens auf einem niedrigen Niveau ist, sodass es die Funktionalität der Proteine in der Peptidisc nicht stört.

Sobald alles fertig ist, sind diese Peptidisc-Bibliotheken bereit für die Verwendung in der MM-TPP-Methode!

Durchführung des MM-TPP-Profilings

Um das Profiling zu starten, teilen die Forscher die vorbereitete Peptidisc-Bibliothek in zwei Portionen – eine zur Behandlung und eine zur Kontrolle. Sie fügen einer der Chargen ATP hinzu und lassen die andere als Kontrolle. Nachdem die Proben eine Weile standen, erhitzen sie sie, um zu sehen, wie die Proteine reagieren.

Nach der Wärmebehandlung werden die Proben erneut zentrifugiert, um die löslichen Proteine zu extrahieren, die intakt bleiben. Die Forscher analysieren diese Proteine dann mit Massenspektrometrie, um zu sehen, wie sie sich als Reaktion auf die Ligandenexposition (ATP) verändert haben.

Die Bedeutung der Massenspektrometrie

Die Massenspektrometrie ist ein wichtiger Teil dieses gesamten Prozesses. Diese Technik ermöglicht es Forschern, Proteine zu identifizieren und ihre Mengen in einer Probe zu messen. Es ist wie eine superempfindliche Waage, die dir nicht nur sagt, was du hast, sondern auch, wie viel von jedem Ding vorhanden ist.

Durch die Analyse der Proteine, die nach der Ligandenexposition stabil oder instabil bleiben, können Forscher identifizieren, welche Proteine wahrscheinlich mit diesen Liganden interagieren, und so potenzielle Ziele für die Arzneimittelentwicklung aufzeigen.

Statistische Analyse zur Ergebnisse verstehen

Nachdem die Proteine identifiziert wurden, führen die Forscher statistische Analysen durch, um zu sehen, welche Proteine sich aufgrund der Behandlung signifikant verändert haben. Sie suchen nach Proteinen, die bei der Exposition gegenüber ATP oder anderen Verbindungen erhebliche Zunahmen oder Abnahmen in der Stabilität zeigten.

Durch sorgfältige Datenanalyse können sie ein klareres Bild vom Verhalten und den Wechselwirkungen der Membranproteine zeichnen, was zu wertvollen Einblicken führt, die die Arzneimittelentwicklung informieren können.

Fazit

In dieser Welt der integralen Membranproteine bahnen sich Forscher neue Wege, um zu verstehen, wie diese Proteine funktionieren und wie sie für Arzneimitteltherapien gezielt werden können. Die innovative Verbindung von Membran-Mimetika mit dem thermalen Proteom-Profiling erweist sich als Wendepunkt und ermöglicht es Wissenschaftlern, diese wichtigen Proteine besser als je zuvor zu erkunden und zu verstehen.

Während wir weiterhin diese Proteine und ihre Interaktionen untersuchen, öffnen wir Türen zu potenziellen Durchbrüchen bei der Behandlung einer Vielzahl von Krankheiten. Es mag kompliziert erscheinen, aber im Kern ist es eine faszinierende Reise in die mikroskopische Welt, die unsere Gesundheit beeinflusst.

Originalquelle

Titel: Membrane mimetic thermal proteome profiling (MM-TPP) towards mapping membrane protein-ligand dynamics

Zusammenfassung: Integral membrane proteins (IMPs) remain the principal target of small-molecule therapeutics, and yet modalities towards probing on and off-target hits against this protein class in a robust, unbiased, and detergent-free manner remain starkly underdeveloped. Previously, we introduced the Peptidisc membrane mimetic (MM) for the water-soluble stabilization of the Escherichia coli membrane proteome and interactome (Carlson et al., 2019). Herein, we implement the Peptidisc into thermal proteome profiling (TPP), enabling for the first time a broad-scale level characterization of membrane protein-ligand interactions while completely circumventing structural perturbations invoked by detergents. Using a library prepared from the whole mouse liver, we determine the influence of ATP and orthovanadate on the thermal stability of IMPs, including pharmaceutically relevant ATP-binding cassette ABC transporters and G-protein coupled receptors. MM-TPP also detects thermal stability changes driven by ATP by-products, where non-canonical ATP binders can be validated with next-generation computational tools. MM-TPP thus offers a robust platform for identifying on- and off-target ligand effects, providing insights into the druggable membrane proteome and its stability as a consequence of changing and often dynamic small molecules.

Autoren: Rupinder Singh Jandu, Mohammed Al-Seragi, Hiroyuki Aoki, Mohan Babu, Franck Duong van Hoa

Letzte Aktualisierung: Nov 3, 2024

Sprache: English

Quell-URL: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.11.02.621677

Quell-PDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.11.02.621677.full.pdf

Lizenz: https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/

Änderungen: Diese Zusammenfassung wurde mit Unterstützung von AI erstellt und kann Ungenauigkeiten enthalten. Genaue Informationen entnehmen Sie bitte den hier verlinkten Originaldokumenten.

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