CATALYTEC: Eine neue Hoffnung für genetische Diagnostik
Innovative CRISPR-Methode verbessert die Genanalyse bei Netzhauterkrankungen.
Valentin J. Weber, Alice Reschigna, Maximilian-J. Gerhardt, Klara S. Hinrichsmeyer, Dina Y. Otify, Thomas Heigl, Frank Blaser, Isabelle Meneau, Martin Biel, Stylianos Michalakis, Elvir Becirovic
― 7 min Lesedauer
Inhaltsverzeichnis
- Die Rolle von Next-Generation Sequencing
- Der Bedarf an besseren Techniken
- Warum sich auf bestimmte Gene konzentrieren?
- Zur Sache kommen
- Die Herausforderung der Transfektion von Primärzellen
- Den richtigen Punkt finden
- In die Praxis testen: Ein Blick in Patientenzellen
- Die Ergebnisse zusammenfassen
- Die Zukunft: Was kommt als Nächstes für CATALYTEC?
- Fazit: Ein Schritt zu besseren Diagnosen
- Originalquelle
- Referenz Links
Genetische Krankheiten können echt kompliziert sein zu diagnostizieren, und überraschenderweise könnten selbst in gut ausgestatteten Ländern viele Patienten die richtigen Tests verpassen. Es gibt coole Technologien wie Next-Generation Sequencing (NGS), die helfen können, genetische Probleme zu erkennen, aber die sind nicht perfekt. Manchmal übersehen sie wichtige Details. Das kann dazu führen, dass Patienten nicht die richtigen Behandlungen bekommen oder nicht an klinischen Studien teilnehmen können.
Die Rolle von Next-Generation Sequencing
NGS-Technologien, wie Whole Genome Sequencing (WGS) und Whole Exome Sequencing (WES), haben die Diagnostik genetischer Krankheiten zugänglicher gemacht. Diese Methoden können den DNA-Code einer Person lesen und Mutationen finden, die zu Krankheiten führen könnten. Aber beide haben ihre Nachteile. WES ignoriert zum Beispiel viele wichtige nicht-kodierende Regionen der DNA, was die Funktionsweise von Genen beeinflussen kann. Auf der anderen Seite kann WGS ziemlich teuer und zeitaufwendig sein, was es für routinemässige Diagnosen weniger verfügbar macht.
Wenn Mutationen gefunden werden, ist es trotzdem wichtig zu checken, wie diese Veränderungen die mRNA-Spiegel beeinflussen, denn das kann uns sagen, ob eine Mutation tatsächlich schädlich ist. Leider sind die aktuellen Techniken dafür, wie Minigene-Tests, oft kompliziert und zeitintensiv. Manche Mutationen, die harmlos scheinen, können trotzdem die mRNA-Verarbeitung stören, ein bisschen wie ein kleiner Stein im Schuh, der deinen ganzen Gang durcheinanderbringt.
Der Bedarf an besseren Techniken
Es gibt einen echten Bedarf an einfacheren und effektiveren Möglichkeiten, Mutationen zu identifizieren und zu untersuchen, die beeinflussen, wie mRNA gelesen und verarbeitet wird. Der beste Weg, die Transkripte von Genen zu überprüfen, ist die Verwendung von Gewebeproben von Patienten, aber das kann schwierig sein. Manche Gewebe, wie die Netzhaut – die relevant für Krankheiten mit Sehproblemen sein kann – sind nicht leicht zu sammeln, weil es invasiv und riskant sein kann.
Um dieses Problem anzugehen, haben Wissenschaftler einen neuen Ansatz namens CATALYTEC entwickelt. Diese Methode verwendet eine Technologie namens CRISPR, um Gene in menschlichen Zellen zu aktivieren, die schnell isoliert wurden. CATALYTEC ermöglicht es, spezifische Gene, die mit erblichen Netzhauterkrankungen (IRDs) zusammenhängen, ohne riskante Verfahren zu untersuchen.
Warum sich auf bestimmte Gene konzentrieren?
Die Wissenschaftler haben beschlossen, ihre ersten Anstrengungen auf spezifische Gene zu richten, die bekannt dafür sind, an häufigen Netzhauterkrankungen beteiligt zu sein, wie ABCA4, RPE65, MYO7A und USH2A. Warum gerade diese Gene?
- Häufige Mutationen: Diese Gene tragen oft Mutationen, die zu Krankheiten wie Stargardt-Krankheit und Lebers kongenitaler Amaurose führen können.
- Grosse Genstrukturen: Drei der vier Gene haben grosse Strukturen, was es schwieriger macht, Mutationen zu erkennen, besonders in nicht-kodierenden Bereichen.
- Therapeutisches Potenzial: RPE65 ist besonders wichtig, weil es an einer Krankheit beteiligt ist, die mit einer genehmigten Gentherapie behandelt werden kann.
Zur Sache kommen
Um CATALYTEC zu testen, haben die Wissenschaftler zuerst mit der Methode in einer Art von Zelle namens HEK293T experimentiert. Sie verwendeten eine modifizierte Version des CRISPR-Systems, die die Aktivität gezielter Gene effektiv steigern konnte. Durch die Kombination verschiedener Komponenten und Guides, die die CRISPR-Maschinerie zu den richtigen Stellen führten, konnten sie diese Gene ohne viel Aufwand aktivieren.
Nach einigem Ausprobieren gelang es ihnen, alle angestrebten Gene gleichzeitig zu aktivieren, ohne die Effizienz zu verlieren. Das bedeutete, dass sie genetische Ursachen von Krankheiten auf eine einfachere Weise analysieren konnten.
Die Herausforderung der Transfektion von Primärzellen
Als nächstes stand die Frage an, wie man diese Technologie auf echte Patienten- Zellen, wie PBMCs (eine Art von Blutzellen) und Hautfibroblasten, anwenden kann. Sie haben verschiedene Möglichkeiten ausprobiert, ihr CRISPR-System in diese Zellen einzubringen. Viele der gängigen Methoden, wie die Verwendung von Calciumphosphat oder Lipiden, haben nicht gut funktioniert. Meistens reagierten die Zellen kaum auf die Einführung.
Lentiviralvektoren, die nicht teilungsfähige Zellen infizieren können, schienen vielversprechend, lieferten aber nicht die gewünschten Ergebnisse. Selbst mit jeder Menge Optimierung wurden nur schwache Genaktivierungen beobachtet. Also haben die Wissenschaftler ihre Aufmerksamkeit auf andere Methoden gerichtet, weil sie einen zuverlässigen Weg brauchten, um CATALYTEC in echten Testsituationen anzuwenden.
Den richtigen Punkt finden
Schliesslich konzentrierten sie sich auf ein Verfahren namens Nukleofektion, das ihre CRISPR-Komponenten effektiv einbrachte. Diese Methode funktionierte super und führte zu signifikanten Steigerungen der Genaktivität für ABCA4 und RPE65. Sie konnten das gesamte Spektrum der Transkripte dieser Gene nachweisen, was die Fähigkeit der Methode demonstrierte.
Interessanterweise stellten sie fest, dass MYO7A, eines der Gene, die sie untersuchten, bereits in Primärzellen exprimiert wurde, was die Sache noch einfacher machte. Aber sie bemerkten auch einige Herausforderungen mit USH2A, wo sie nur Teile des Gens sehen konnten, die exprimiert wurden.
In die Praxis testen: Ein Blick in Patientenzellen
Die Forscher hörten nicht nur bei den gesunden Zellen auf. Sie wandten das CATALYTEC-Protokoll auf mehrere Patienten an, bei denen Netzhauterkrankungen bestätigt wurden. Jeder Patient hatte unterschiedliche Krankheitsgeschichten, und obwohl die meisten vorher genetische Tests durchlaufen hatten, hatten nur ein paar klare Diagnosen.
Nachdem sie ihre Analysen an Proben dieser Patienten durchgeführt hatten, bestätigten sie einige Mutationen in Genen, die mit ihren Netzhauterkrankungen verbunden waren. Zum Beispiel hatte ein Patient eine spezifische Mutation in RPE65, die ein merkwürdiges Spleissverhalten in seiner RNA verursachte. Das ist so, als würde man einen Kuchen backen, aber mitten im Prozess merken, dass man eine Zutat vergessen hat – etwas Lebenswichtiges fehlt.
Bei einem anderen Patienten mit einer ABCA4-Mutation beobachteten sie ebenfalls eine Spleissanomalie. Die Forscher konnten klar sehen, wie diese Mutationen die Genübersetzung beeinflussten und bestätigten so den Nutzen von CATALYTEC für die Diagnostik echter Krankheiten bei Patienten.
Die Ergebnisse zusammenfassen
Einige beeindruckende Ergebnisse kamen aus der Anwendung von CATALYTEC. Diese Methode identifizierte nicht nur Mutationen, sondern zeigte auch, dass die bestehenden Gene aktiv genug waren, um verschiedene Transkripte zu analysieren. Durch die Kombination moderner Methoden wie Short-Read- und Long-Read-RNA-Sequenzierung konnten sie ein klareres Bild davon bekommen, wie Gene in den Zellen der Patienten reagierten.
Sie stellten fest, dass die Spleissmuster, die sie in Blutzellen beobachteten, überraschend ähnlich zu denen in Netzhautzellen waren. Das ist wichtig, da es darauf hindeutet, dass Blutproben als Proxy dienen könnten, um Netzhauterkrankungen direkt zu studieren – sozusagen die Ergebnisse eines Fussballspiels zu sehen, ohne selbst auf dem Feld zu stehen!
Die Zukunft: Was kommt als Nächstes für CATALYTEC?
Die Wissenschaftler sehen CATALYTEC als vielseitige Methode, die leicht auf andere genetische Störungen übertragen werden kann, wo die Probenentnahme ein Hindernis darstellen kann. Sie denken auch, dass die Verwendung einfacherer Methoden zur Zellgewinnung, wie Wangenschleimhautzellen, zu noch leichteren Anwendungen in der Diagnostik führen könnte.
Die Idee ist, auf diesem Ansatz aufzubauen, genetische Tests einfacher, zugänglicher und weniger invasiv zu gestalten. Zukünftige Studien könnten die Arten von aktivierten Genen erweitern, was zu noch breiteren Anwendungen führen könnte.
Fazit: Ein Schritt zu besseren Diagnosen
Zusammenfassend zeigt CATALYTEC das Potenzial der CRISPR-Technologie zur Verbesserung genetischer Diagnosen. Indem es Wissenschaftlern ermöglicht, Gene in Patienten-Zellen ohne invasive Verfahren zu aktivieren, öffnet es die Tür zu einem besseren Verständnis und der Diagnose einer Vielzahl genetischer Störungen. Während die Wissenschaftler daran arbeiten, diese Methode zu verfeinern, könnte sich die Landschaft, wie wir genetische Krankheiten erkennen und behandeln, ändern und das Leben für Patienten erleichtern.
Wer hätte gedacht, dass ein bisschen CRISPR zu einem riesigen Game-Changer werden könnte? In Zukunft gibt es noch viele aufregende Möglichkeiten am Horizont in der Welt der genetischen Diagnostik.
Titel: CRISPRa-mediated activation of genes associated with inherited retinal dystrophies in acutely isolated human cells for diagnostic purposes
Zusammenfassung: Many patients suffering from inherited diseases do not receive a genetic diagnosis and are therefore excluded as candidates for treatments, such as gene therapies. Analyzing disease-related gene transcripts from patient cells would improve detection of mutations that have been missed or misinterpreted in terms of pathogenicity during routine genome sequencing. However, the analysis of transcripts is complicated by the fact that a biopsy of the affected tissue is often not appropriate, and many disease-associated genes are not expressed in tissues or cells that can be easily obtained from patients. Here, using CRISPR/Cas-mediated transcriptional activation (CRISPRa) we developed a robust and efficient approach to activate genes in skin-derived fibroblasts and in freshly isolated peripheral blood mononuclear cells (PBMCs) from healthy individuals. This approach was successfully applied to blood samples from patients with inherited retinal dystrophies (IRD). We were able to efficiently activate several IRD-linked genes and detect the corresponding transcripts using different diagnostically relevant methods such as RT-qPCR, RT-PCR and long- and short-read RNA sequencing. The detection and analysis of known and unknown mRNA isoforms demonstrates the potential of CRISPRa-mediated transcriptional activation in PBMCs. These results will contribute to ceasing the critical gap in the genetic diagnosis of patients with IRD or other inherited diseases. Graphical abstract O_FIG O_LINKSMALLFIG WIDTH=200 HEIGHT=140 SRC="FIGDIR/small/625601v1_ufig1.gif" ALT="Figure 1"> View larger version (47K): org.highwire.dtl.DTLVardef@60e2b8org.highwire.dtl.DTLVardef@c4c742org.highwire.dtl.DTLVardef@f5c28dorg.highwire.dtl.DTLVardef@b7cf11_HPS_FORMAT_FIGEXP M_FIG C_FIG
Autoren: Valentin J. Weber, Alice Reschigna, Maximilian-J. Gerhardt, Klara S. Hinrichsmeyer, Dina Y. Otify, Thomas Heigl, Frank Blaser, Isabelle Meneau, Martin Biel, Stylianos Michalakis, Elvir Becirovic
Letzte Aktualisierung: Dec 1, 2024
Sprache: English
Quell-URL: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.11.29.625601
Quell-PDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.11.29.625601.full.pdf
Lizenz: https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/
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