Estudando a Atividade do Promotor em Curvibacter
Pesquisas revelam informações valiosas sobre a regulação gênica em Curvibacter sp. AEP1-3.
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Índice
- Desafios em Estudar Curvibacter
- Usando Promotores pra Controlar Expressão Gênica
- Criando uma Biblioteca de Promotores
- Buscando Sequências de Promotores na Curvibacter
- Testando as Sequências de Promotores
- Analisando a Atividade dos Promotores
- Entendendo Motivos de Fatores de Transcrição
- Experimentos e Resultados
- Comparação com Dados de Sequenciamento de RNA
- Conclusão e Direções Futuras
- Fonte original
- Ligações de referência
Curvibacter sp. AEP1-3 é um tipo de bactéria em forma de bastão e faz parte de um grupo chamado ss-proteobactérias. Essa bactéria é bem conhecida pela sua relação próxima com a Hydra vulgaris, uma criatura de água doce que parece um tubo com tentáculos. Junto com outras bactérias que vivem na Hydra, a Curvibacter forma uma comunidade complicadinha onde a bactéria e a Hydra interagem de perto.
Nessa relação, a Hydra dá uma casa pra bactéria, enquanto a bactéria ajuda a Hydra a se mover, se reproduzir sem acasalamento, e a protege de fungos prejudiciais. Estudar essa parceria oferece uma chance valiosa pros cientistas aprenderem sobre interações entre diferentes formas de vida e como elas se comunicam. Uma maneira que a Curvibacter interage com a Hydra é através de um sinal químico chamado N-acetil homoserina lactona.
Desafios em Estudar Curvibacter
Apesar de ser uma relação interessante entre a Curvibacter e a Hydra, existem desafios em estudar a Curvibacter. Um grande problema é que não é fácil mudar seus genes ou manipular suas células, o que limita o quanto podemos aprender sobre ela. Os métodos usados pra fazer mudanças genéticas, como a recombinação homóloga, são muitas vezes difíceis e não dão certo com frequência.
Existem maneiras de introduzir novo material genético na Curvibacter usando uma ferramenta especial chamada vetor RSF1010, mas apenas um número pequeno de interruptores de genes, conhecidos como promotores, pode ser usado, e nenhum foi totalmente estudado. Pra facilitar o uso da Curvibacter em pesquisas, queríamos reunir uma coleção de promotores funcionais.
Usando Promotores pra Controlar Expressão Gênica
Promotores são partes do DNA que controlam quando e quanta expressão de um gene acontece. A gente deu uma olhada em um banco de dados de promotores sintéticos que foram bem estudados no laboratório, especialmente em bactérias como E. coli. Esses promotores sintéticos podem variar em força e proporcionar uma expressão gênica estável, mas eles costumam agir da mesma maneira ao longo do tempo, o que significa que não mudam muito durante as fases de crescimento bacteriano. Às vezes, quando as bactérias param de crescer e entram em uma fase de repouso, a quantidade de atividade gênica pode aumentar inesperadamente por causa de como os plasmídeos funcionam.
Pra nossa pesquisa na Curvibacter, precisávamos encontrar promotores que mantivessem um nível estável de expressão gênica, independentemente da fase de crescimento.
Criando uma Biblioteca de Promotores
Um jeito de descobrir promotores úteis é criar um grande conjunto de sequências diversas e testá-las todas de uma vez. Isso é feito usando equipamentos avançados que podem produzir muitas sequências de DNA simultaneamente. Ao coletar e limpar essas sequências em um único passo, podemos facilmente criar uma biblioteca de plasmídeos, cada um carregando uma sequência diferente, e incluir um gene reportador como a Proteína Verde Fluorescente (GFP) pra ver quais promotores funcionam melhor.
Uma outra estratégia é gerar bibliotecas altamente seletivas. Isso significa que focamos apenas nas sequências que têm mais chance de serem bem-sucedidas, o que simplifica o processo de escolha dos melhores candidatos. Podemos usar algoritmos de computador pra ajudar a selecionar essas sequências, treinando-os com sequências de promotores conhecidas de bancos de dados de referência ou usando sequências do genoma da Curvibacter.
O objetivo do nosso estudo é encontrar e entender novos sistemas de expressão pra serem usados na Curvibacter, focando em promotores que oferecem uma expressão estável em várias condições de crescimento líquido.
Buscando Sequências de Promotores na Curvibacter
Pra encontrar sequências de promotores adequadas da Curvibacter, começamos recuperando seus dados genômicos. Processamos essas informações genômicas usando ferramentas de programação pra extrair dados sobre os vários genes presentes no genoma da Curvibacter. Coletamos dados sobre onde cada gene começa e termina e organizamos essas informações pra fácil acesso.
Depois de determinar as localizações dos genes, filtramos qualquer sequência que não se encaixasse nos nossos critérios de tamanho ou estava associada a genes que não estavam ativos em nossos experimentos. Isso nos deixou com uma lista de sequências potenciais de promotores candidatos. Eventualmente, selecionamos 722 candidatos para mais testes.
Testando as Sequências de Promotores
Dos nossos candidatos, tivemos que diminuir pra testes práticos. Devido a limitações no número de sequências que podíamos sintetizar, focamos nas sequências mais curtas e promissoras. Aplicamos várias técnicas de filtragem pra garantir que selecionamos sequências que poderiam levar a uma expressão forte na Curvibacter.
Uma vez que tivemos nossas sequências prontas, elas foram inseridas em um vetor que continha um gene reportador. O objetivo era ver quais promotores poderiam efetivamente impulsionar a expressão do gene reportador, permitindo que medíssemos sua atividade.
Pra identificar candidatos positivos, usamos um método chamado Citometria de fluxo. Essa técnica permite analisar grandes números de células e determinar quais carregavam o gene reportador com sucesso.
Analisando a Atividade dos Promotores
Depois de classificar os promotores candidatos usando citometria de fluxo, medimos sua atividade usando um método que avalia quanto de fluorescência é produzida pelas proteínas reportadoras. Isso nos dá uma ideia de quão fortes são os diferentes promotores em várias fases de crescimento.
A gente descobriu que os promotores candidatos mostraram vários níveis de expressão e comportamentos durante o processo de crescimento. Alguns promoveram uma atividade mais forte durante a fase estacionária, quando as bactérias param de crescer, enquanto outros tiveram níveis de expressão semelhantes em ambas as fases de crescimento.
Em geral, nossos resultados mostraram que muitos candidatos aumentaram sua atividade ao transitar pra fase estacionária, mas também identificamos alguns que mostraram uma atividade maior durante a fase de crescimento exponencial.
Entendendo Motivos de Fatores de Transcrição
Enquanto analisávamos as sequências dos promotores, procuramos por padrões específicos, conhecidos como motivos de ligação de fatores de transcrição. Esses motivos são importantes porque ajudam os pesquisadores a entender como os genes são regulados. Ao estudar os motivos presentes em nossos promotores candidatos, encontramos vários que correspondiam a motivos conhecidos de outras bactérias.
Promotores com fatores de transcrição específicos podem afetar significativamente como os genes são expressos com base em pistas ambientais ou na fase de crescimento das bactérias. Entender esses fatores vai ajudar a prever como os promotores candidatos podem se comportar em várias situações.
Experimentos e Resultados
Realizamos uma série de experimentos pra avaliar a eficácia dos promotores selecionados. Medindo a fluorescência produzida pelos genes reportadores, comparamos o desempenho de diferentes sequências.
No geral, identificamos 25 candidatos únicos que mostraram níveis notáveis de atividade. Esses promotores candidatos foram classificados com base em seus níveis de expressão durante diferentes fases de crescimento.
Através da nossa análise, encontramos que alguns promotores mantiveram uma atividade consistente, enquanto outros mostraram uma variabilidade significativa dependendo se as bactérias estavam em fases de crescimento exponencial ou estacionário. Isso cria opções valiosas pros cientistas que estudam a Curvibacter, já que eles podem escolher promotores com base em suas necessidades específicas de experimento.
Comparação com Dados de Sequenciamento de RNA
Pra entender melhor como nossos candidatos de promotores se saíram, comparamos as medições de atividade com dados de sequenciamento de RNA da Curvibacter. Esses dados dão uma visão sobre a atividade gênica no nível de RNA, permitindo que a gente avalie a correlação entre a abundância de RNA e a expressão real de proteínas a partir de nossos construtos reportadores.
Curiosamente, descobrimos que não havia uma correlação forte entre os níveis de RNA e a atividade dos promotores. Isso sugere que simplesmente confiar em dados de sequenciamento de RNA pra prever a usabilidade dos promotores não é suficiente.
Nossos achados mostram que, enquanto o RNAseq pode fornecer informações úteis, usar métodos de medição de fluorescência pra avaliar diretamente o desempenho dos promotores in vivo é crítico pra prever com precisão os níveis de expressão.
Conclusão e Direções Futuras
Em conclusão, nosso trabalho descreve uma abordagem prática pra descobrir e caracterizar novos sistemas de expressão na Curvibacter sp. AEP1-3. Identificamos com sucesso um conjunto de sequências de promotores com dinâmicas de expressão variadas que podem ser utilizadas pra diferentes aplicações experimentais.
À medida que a Curvibacter continua sendo um modelo intrigante pra estudar simbiose, esperamos que nossas descobertas abram caminho pra mais pesquisas e aplicações biotecnológicas. Os métodos que desenvolvemos pra encontrar e testar promotores podem ser adaptados pra outras espécies bacterianas no futuro, expandindo o arsenal disponível pra engenharia genética e biologia sintética.
Com esforços contínuos em estudar esses novos sistemas de expressão, vamos ganhar uma visão mais profunda de como bactérias como a Curvibacter funcionam em seus ambientes naturais, suas interações com hospedeiros, e, por fim, como podemos aproveitar suas habilidades pra fins científicos e práticos.
Título: Oligonucleotide Library Assisted Sequence Mining Reveals Promoter Sequences With Distinct Temporal Expression Dynamics For Applications In Curvibacter SP. AEP1-3
Resumo: AO_SCPLOWBSTRACTC_SCPLOWThe {beta}-proteobacterial species Curvibacter sp. AEP1-3 is a model organism for the study of symbiotic interactions as it is the most abundant bacterial colonizer of the basal metazoan Hydra vulgaris. Yet, genetic tools for Curvibacter are still in an infancy: few promoters have been characterized for Curvibacter. Here we employ an oligonucleotide based strategy to find potential expression systems derived from the genome of Curvibacter. Potential promoters were systematically mined from the genome in silico. The sequences were cloned as a mixed library into a mCherry reporter gene expression vector and single positive candidates were selected through Flow Cytometry based sorting to be further analyzed through bulk measurements. From 500 candidate sequences, 25 were identified as active promoters of varying expression strength levels. Bulk measurements revealed unique activity profiles for these sequences across growth phases. The expression levels of these promoters ranged over two orders of magnitudes and showed distinct temporal expression dynamics over the growth phases: while 3 sequences showed higher expression levels in the exponential phase than in the stationary phase, we found 12 sequences saturating expression during stationary phase and 10 that showed little discrimination between growth phases. From our library, promoters the genes encoding for DnaK, RpsL and an AHL synthase stood out as the most interesting candidates as their expression profiles fit a variety of applications. Examining the expression levels of successful candidates in relation to RNAseq read counts revealed only weak correlation between the two datasets. This underscores the importance of employing comprehensive high-throughput strategies when establishing expression systems for newly introduced model organisms.
Autores: Ilka Maria Axmann, M. Mager, L. Becker, N. Schulten, S. Fraune
Última atualização: 2024-03-25 00:00:00
Idioma: English
Fonte URL: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.03.24.586450
Fonte PDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.03.24.586450.full.pdf
Licença: https://creativecommons.org/licenses/by-nc/4.0/
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