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# Biologia# Biologia molecular

Novo Método Ligado ao RNA Ilumina a Regulação Gênica

Pesquisadores desenvolvem uma abordagem inovadora pra estudar o metabolismo de RNA e os fatores relacionados.

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Método CRISPR Ligado aMétodo CRISPR Ligado aRNA Explicadometabolismo do RNA e regulação gênica.Nova técnica revela insights sobre o
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RNA, ou ácido ribonucleico, tem um papel super importante nas nossas células. Ele carrega informações genéticas, ajuda a construir proteínas e regula como os genes são expressos. O RNA passa por várias etapas na sua vida dentro da célula, incluindo splicing, edição, localização, Tradução e degradação. Essas etapas são executadas por complexos feitos de proteínas que se ligam ao RNA (RBPs), proteínas adaptadoras e fatores reguladores.

Existem mais de 2.000 genes humanos que criam proteínas envolvidas nesses complexos. As proteínas associadas ao RNA podem influenciar o metabolismo de várias moléculas de RNA. Mutations nessas proteínas estão ligadas a várias doenças humanas, como câncer e desordens neurodegenerativas. Portanto, entender como os RBPs e fatores relacionados impactam o metabolismo do RNA é essencial para entender a regulação gênica e os mecanismos subjacentes das doenças humanas.

Limitações na Compreensão do Metabolismo do RNA

Apesar de muita pesquisa sobre o metabolismo do RNA e a função dos RBPs, ainda não entendemos totalmente todos os fatores celulares que regulam processos específicos do RNA. Essa falta de entendimento acontece porque os RBPs podem tanto mudar quanto não ter efeito no metabolismo dos RNAS-alvo, dependendo de vários fatores, como a força de ligação e a localização. Muitos RBPs também podem interagir com vários complexos ribonucleoproteicos e participar de diferentes atividades metabólicas do RNA. Além disso, alguns fatores proteicos que não se ligam diretamente ao RNA ainda podem influenciar o metabolismo do RNA ao afetar como os RNAs e os RBPs interagem ou ao mudar os níveis e a atividade dos RBPs na célula.

Os estudos bioquímicos atuais sobre interações RBP-RNA não fornecem uma visão completa de todos os reguladores funcionais dos eventos metabólicos do RNA nas células.

A Busca por Fatores de Regulação do RNA

Triagens genéticas podem ajudar a identificar fatores celulares que regulam o metabolismo do RNA, mas esses métodos têm limitações. Por exemplo, triagens CRISPR que examinam efeitos indiretos, como o crescimento celular, podem ser difíceis de desenhar e interpretar devido a potenciais erros e mecanismos genéticos de compensação. Usar CRISPR seguido de sequenciamento de RNA pode oferecer insights sobre as características do RNA, mas essas abordagens de sequenciamento têm limitações em flexibilidade, são tendenciosas em relação a RNAs mais abundantes e podem ser caras e trabalhosas.

Até agora, não foi viável dissecar as funções focadas no RNA das proteínas humanas em larga escala enquanto se monitora diretamente vários processos metabólicos do RNA.

Introduzindo Triagem CRISPR Ligada ao RNA

Para enfrentar esses desafios, os pesquisadores desenvolveram uma nova abordagem. Combinando métodos baseados em CRISPR com RNA com código de barras, esse método visa fornecer uma maneira mais generalizada de estudar o controle de diferentes eventos no metabolismo do RNA.

Estudos anteriores usaram com sucesso técnicas semelhantes de codificação em células humanas e leveduras, ligando modificações genéticas a resultados de transcrição. No entanto, os métodos tradicionais enfrentaram problemas com a precisão dos dados devido à integração aleatória de material genético. Para contornar esses desafios, os pesquisadores estabeleceram um método que permite a integração precisa de componentes em um local genômico definido nas células humanas.

Design e Validação de um Método Inovador Ligado ao RNA

A pesquisa envolveu a criação de uma linha celular com um local específico para integração genética. A equipe fez essa linha celular usando uma técnica que permitiu inserir um sistema CRISPR indutível e um local adicional para mais manipulação genética. Isso garantiu uma expressão estável e uniforme dos genes integrados.

Depois de estabelecer o sistema, eles testaram sua eficácia usando um repórter fluorescente. Eles confirmaram que ele expressava consistentemente após a modificação, e conseguiram ligar e desligar o sistema conforme necessário.

Testando Novas Técnicas em Genes Humanos

Para descobrir reguladores do metabolismo do RNA, os pesquisadores se concentraram em genes-alvo associados a RNAs ou RBPs, selecionando uma variedade de RNAs guia para maximizar a eficiência das desativações gênicas. Eles organizaram esses RNAs guia junto com códigos de barras aleatórios em uma biblioteca genética. A biblioteca final teve como alvo mais de 2.000 genes, com múltiplos RNAs guia para cada gene para garantir cobertura adequada.

Ao implantar essa biblioteca em sua linha celular engenheirada, os pesquisadores contaram os códigos de barras associados a cada RNA guia tanto na DNA genômica quanto no mRNA. Essa contagem permitiu que eles rastreassem como as alterações gênicas afetavam os níveis de RNA.

Observando os Efeitos da Desativação Gênica

Enquanto monitoravam os efeitos das desativações gênicas, os primeiros dias pós-modificação mostraram contagens de códigos de barras estáveis. No entanto, mudanças significativas foram notadas em dias posteriores, indicando impactos claros nos níveis de RNA e na saúde celular. Especificamente, genes essenciais para a sobrevivência exibiram uma depleção notável tanto nos níveis genômicos quanto nos de mRNA, sugerindo uma forte correlação entre eficiência de desativação e saúde celular.

Os dados mostraram que a estratégia ligada ao RNA capturou com precisão a influência das modificações genéticas analisando apenas os códigos de barras associados.

Explorando a Regulação da Tradução de mRNA

A pesquisa inicialmente aplicou o novo método para examinar a tradução de mRNA, um processo não facilmente estudado através das técnicas de triagem existentes. Os métodos tradicionais envolvem separar mRNAs com base na sua interação com ribossomos. Ao combinar essas técnicas clássicas com o novo método CRISPR ligado ao RNA, os pesquisadores visavam identificar fatores que influenciam a tradução de mRNA.

Eles usaram um mRNA bem estudado para validar sua abordagem, garantindo que suas medições fossem precisas. Em seguida, adaptaram seu sistema para analisar vários fatores que influenciam a ocupação de ribossomos por mRNA.

Caracterizando o Impacto das Perturbações Gênicas

Enquanto analisavam os resultados, os pesquisadores documentaram várias desativações gênicas levando a uma diminuição na ocupação de ribossomos. Os dados gerais indicaram que muitas desativações gênicas, particularmente aquelas que afetavam proteínas ribossômicas e fatores de iniciação da tradução, reduziram consistentemente o quão bem os mRNAs estavam sendo traduzidos. Essa tendência destacou a importância desses fatores na regulação da eficiência da tradução do mRNA.

Identificando Genes Chaves na Tradução de mRNA

Entre as descobertas, genes relacionados à função ribossômica e fatores de iniciação da tradução emergiram como jogadores cruciais. Ficou claro que a atividade desses genes estava diretamente ligada ao quão bem os mRNAs se ligavam aos ribossomos. A ausência de genes específicos levou a uma menor eficiência de tradução geral, enfatizando seus papéis nesse processo celular vital.

Certos fatores de iniciação da tradução também foram identificados como contribuindo para mudanças na tradução do mRNA, embora com mais variabilidade, indicando uma interação complexa entre várias proteínas na maquinaria de tradução.

Investigando o Splicing Alternativo

Os pesquisadores então ampliaram seu foco para o splicing alternativo, um processo que modifica como os mRNAs são processados. Abordagens tradicionais para estudar o splicing são complicadas e podem gerar resultados não confiáveis. Ao aproveitar os benefícios do método CRISPR ligado ao RNA, a equipe visava identificar fatores que influenciam diferentes resultados de splicing medindo como perturbações afetavam as proporções de diferentes variantes de splice.

Eles projetaram experimentos específicos para avaliar diferentes formas de splicing, o que lhes permitiu rastrear mudanças em várias desativações gênicas de forma eficaz.

Observando Resultados de Splicing Distintos

Enquanto a equipe analisava os dados, encontrou tanto acertos comuns quanto únicos em genes através de várias condições de splicing. Alguns genes associados a processos de splicing essenciais e outros ligados à tradução e ao metabolismo do RNA emergiram como significativamente afetando os fenótipos de splicing.

Os resultados mostraram relações claras entre splicing e outros mecanismos celulares, iluminando como diferentes proteínas podem trabalhar juntas ou independentemente para influenciar o processamento de mRNA.

Compreendendo o Controle de Qualidade do mRNA

Os pesquisadores também examinaram a relação entre o metabolismo do RNA e as vias de controle de qualidade do mRNA, focando particularmente em um processo conhecido como degradação mediada por nonsense (NMD). Eles ajustaram sua estratégia para estudar como certas perturbações afetavam a estabilidade de mRNAs que possuem códons de terminação prematuros.

Essa análise revelou vários acertos gênicos que influenciaram as taxas de degradação desses mRNAs defeituosos, destacando fatores importantes envolvidos na manutenção da qualidade do RNA.

Insights de Modificadores Químicos e Genéticos

Além de identificar genes cruciais, os pesquisadores usaram perturbações químicas para dissecar ainda mais as vias regulatórias que afetam o metabolismo do RNA. Ao tratar seus modelos celulares com compostos específicos, puderam identificar como esses tratamentos interagiam com os impactos fisiológicos de várias desativações gênicas.

De forma semelhante, eles projetaram triagens de modificadores genéticos para melhorar sua compreensão de diferentes vias, confirmando que alguns genes atuavam através de redes de sinalização estabelecidas para regular a degradação do mRNA.

Investigando Respostas a Tratamentos com Medicamentos

Por fim, a equipe explorou como as células respondem ao medicamento quimioterápico homoharringtonine, conhecido por inibir a síntese de proteínas. Eles aproveitaram seu método de triagem CRISPR ligado ao RNA para se aprofundar nas reações celulares a esse medicamento, identificando genes cruciais para manter os níveis de mRNA durante o estresse translacional.

Através dessa investigação, eles descobriram fatores específicos que ajudam as células a lidar com os efeitos do tratamento medicamentoso, revelando alvos terapêuticos potenciais para melhorar os tratamentos do câncer.

Conclusão

Em resumo, a introdução desse método de triagem CRISPR ligado ao RNA representa um avanço significativo na compreensão do metabolismo do RNA, tradução, splicing e controle de qualidade. As descobertas feitas usando essa técnica inovadora ilustram as redes complexas e interações dentro das células que governam os processos do RNA.

Ao analisar milhares de perturbações gênicas, os pesquisadores podem entender as relações intrincadas entre o metabolismo do RNA e as funções celulares. À medida que essa metodologia continua a evoluir, ela promete oferecer insights mais profundos sobre a biologia do RNA e suas implicações para a saúde humana.

Essa nova abordagem não apenas destaca os papéis essenciais de proteínas específicas na regulação do RNA, mas também estabelece a base para estudos futuros que visam processos de RNA em vários contextos biológicos e doenças. As aplicações potenciais desse método no estudo de diversas doenças humanas, incluindo câncer e distúrbios metabólicos, são vastas, oferecendo caminhos empolgantes para futuras explorações.

Fonte original

Título: Decoding RNA Metabolism by RNA-linked CRISPR Screening in Human Cells

Resumo: RNAs undergo a complex choreography of metabolic processes in human cells that are regulated by thousands of RNA-associated proteins. While the effects of individual RNA-associated proteins on RNA metabolism have been extensively characterized, the full complement of regulators for most RNA metabolic events remain unknown. Here we present a massively parallel RNA-linked CRISPR (ReLiC) screening approach to measure the responses of diverse RNA metabolic events to knockout of 2,092 human genes encoding all known RNA-associated proteins. ReLiC screens highlight modular interactions between gene networks regulating splicing, translation, and decay of mRNAs. When combined with biochemical fractionation of polysomes, ReLiC reveals striking pathway-specific coupling between growth fitness and mRNA translation. Perturbing different components of the translation and proteostasis machineries have distinct effects on ribosome occupancy, while perturbing mRNA transcription leaves ribosome occupancy largely intact. Isoform-selective ReLiC screens capture differential regulation of intron retention and exon skipping by SF3b complex subunits. Chemogenomic screens using ReLiC decipher translational regulators upstream of mRNA decay and uncover a role for the ribosome collision sensor GCN1 during treatment with the anti-leukemic drug homoharringtonine. Our work demonstrates ReLiC as a versatile platform for discovering and dissecting regulatory principles of human RNA metabolism.

Autores: Arvind Rasi Subramaniam, P. J. Nugent, H. Park, C. L. Wladyka, K. Y. Chen, C. Bynum, G. Quarterman, A. C. Hsieh

Última atualização: 2024-07-26 00:00:00

Idioma: English

Fonte URL: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.07.25.605204

Fonte PDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.07.25.605204.full.pdf

Licença: https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/

Alterações: Este resumo foi elaborado com a assistência da AI e pode conter imprecisões. Para obter informações exactas, consulte os documentos originais ligados aqui.

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