Novo Teste Esclarece Modificações de RNA
O teste EpiPlex permite um estudo avançado das modificações de RNA e seu impacto na expressão gênica.
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Índice
As modificações de RNA são alterações feitas nas moléculas de RNA que têm um papel importante em como os genes são expressos nos organismos vivos. Uma das modificações mais comuns é chamada de N6-methyladenosine (M6A), que acontece no RNA mensageiro (mRNA)-o tipo de RNA que leva as instruções do DNA para fazer proteínas. Pesquisas mostram que o m6A está envolvido em várias doenças, incluindo câncer, problemas neurológicos e problemas cardíacos.
Outra mudança importante no RNA é a edição A-to-I, que envolve converter adenosina em inosina. Essa edição é feita por enzimas conhecidas como ADAR. A edição A-to-I ajuda a manter a diversidade nas sequências codificadoras e influencia muitos processos relacionados ao RNA, como splicing, estabilidade e expressão gênica.
Importância das Modificações de RNA
As modificações de RNA como m6A e a edição A-to-I são essenciais para regular a expressão gênica e garantir que as células funcionem corretamente. Anormalidades nessas modificações podem levar a doenças como câncer e distúrbios neurológicos. Então, entender como essas modificações funcionam e como interagem é crucial para desenvolver novos tratamentos.
Os pesquisadores fizeram progressos significativos no estudo das modificações de RNA. Eles desenvolveram vários métodos para detectar e analisar essas mudanças no nível do RNA. No entanto, muitas técnicas existentes enfrentam desafios, como a necessidade de grandes quantidades de RNA ou apenas detectar uma modificação por vez.
O Assay EpiPlex
Para enfrentar as limitações dos métodos existentes, os cientistas desenvolveram uma nova técnica chamada assay EpiPlex. Esse método permite a detecção simultânea de várias modificações de RNA, especificamente m6A e edição A-to-I, usando quantidades menores de RNA. O assay EpiPlex funciona usando esferas magnéticas especiais cobertas com proteínas que se ligam a modificações específicas de RNA. Essas esferas capturam o RNA e permitem uma análise mais aprofundada.
Como Funciona o Assay EpiPlex
O assay EpiPlex envolve várias etapas no seu fluxo de trabalho. Primeiro, o RNA é extraído das células e misturado com controles para garantir precisão. O RNA é então fragmentado em pedaços menores, que são capturados pelas esferas magnéticas específicas para as modificações m6A e A-to-I. Os adaptadores únicos anexados às esferas permitem a leitura da sequência de RNA e das modificações em detalhe.
Uma vez que o RNA é capturado, passa por um processo chamado transcrição reversa, onde é convertido em DNA complementar (cDNA). Esse cDNA pode ser amplificado, ou seja, mais cópias podem ser feitas para análise. Após essas etapas, as modificações de RNA podem ser detectadas e quantificadas.
Vantagens do Assay EpiPlex
O assay EpiPlex tem várias vantagens que o tornam atraente para pesquisadores que estudam modificações de RNA:
Baixa Necessidade de Amostra: Métodos tradicionais geralmente requerem grandes quantidades de RNA, limitando seu uso a linhagens celulares. O assay EpiPlex pode trabalhar com apenas 20 ng de RNA, tornando-o adequado para amostras de tecidos ou biópsias.
Detecção Multiplexada: O EpiPlex permite que os pesquisadores detectem várias modificações de RNA simultaneamente. Essa capacidade oferece uma visão mais abrangente do panorama do RNA e de como diferentes modificações podem interagir.
Medições Quantitativas: O assay fornece dados quantitativos, permitindo que os pesquisadores meçam com precisão a abundância de cada modificação. Esse recurso é importante para entender como mudanças nas modificações se relacionam com doenças.
Pipeline Amigável: O assay EpiPlex é projetado para ser simples, com um claro fluxo de análise. Essa facilidade de uso pode ajudar mais pesquisadores a adotar a técnica em seus estudos.
Testando o Assay EpiPlex
Pesquisadores usaram a plataforma EpiPlex para investigar como a inibição ou degradação de uma enzima específica, a METTL3, afeta os níveis de m6A nas células. A METTL3 é conhecida por desempenhar um papel crucial na adição de modificações m6A ao RNA. Ao tratar células com um inibidor de METTL3 ou usar linhagens celulares que degradam METTL3, os pesquisadores observaram mudanças nos níveis de m6A.
Os resultados mostraram que quando a METTL3 foi inibida ou degradada, o número de picos de m6A diminuiu significativamente. No entanto, alguns locais de m6A permaneceram modificados, sugerindo que pode haver alguma atividade residual de METTL3 ou que esses locais estão presentes em moléculas de RNA de maior duração.
Investigando a Edição A-to-I
Além das modificações m6A, os pesquisadores também analisaram a edição A-to-I do transcriptoma de RNA. O assay EpiPlex permitiu a detecção simultânea de ambas as modificações. Eles descobriram que, enquanto os níveis de m6A mudaram significativamente com a inibição da METTL3, os níveis globais de edição A-to-I permaneceram relativamente estáveis.
Essa descoberta sugere que os dois processos são regulados de forma independente, mesmo que possam ocorrer na mesma molécula de RNA. A independência dessas mudanças é essencial para entender como diferentes modificações de RNA influenciam a expressão gênica.
EIF4A3 e Seu Papel
EIF4A3 é uma proteína que faz parte do complexo de junção de exons (EJC), que desempenha um papel no metabolismo do RNA e protege o RNA de modificações indesejadas. Pesquisas mostraram que quando o EIF4A3 é reduzido ou inibido, há um aumento nos níveis de m6A, particularmente perto dos locais de splicing. Isso indica que o EIF4A3 ajuda a evitar que m6A seja adicionado a certas regiões do mRNA.
Através de experimentos usando o assay EpiPlex, os cientistas descobriram que inibir o EIF4A3 levou a um aumento significativo nas modificações m6A nos exons, enquanto os níveis na região não traduzida 3' (UTR) permaneciam praticamente inalterados. Isso confirma que o EIF4A3 e sua atividade helicase são cruciais para regular a deposição de m6A.
Edição A-to-I e EIF4A3
Os pesquisadores também queriam entender se o EIF4A3 afeta a edição A-to-I mediada pelas enzimas ADAR. Em seus estudos, descobriram que nem a redução nem a inibição do EIF4A3 impactaram significativamente a edição A-to-I. Isso sugere que o processo de edição A-to-I é distinto e opera de forma independente da deposição de m6A.
Validando Sinais de Inosina
Para validar ainda mais a precisão da detecção de edição A-to-I, os pesquisadores usaram células HEK293T com knockout da enzima ADAR1, que é responsável pela edição A-to-I. Eles observaram uma redução significativa nos picos de inosina, confirmando que a maior parte da edição A-to-I depende da presença do ADAR1.
Mesmo com a perda total da edição A-to-I em células knockout de ADAR, os níveis e a distribuição de m6A continuaram a ser inalterados. Isso reforça a independência dos processos de m6A e edição A-to-I, enfatizando ainda mais a complexidade das modificações de RNA.
Conclusão
O desenvolvimento do assay EpiPlex marca um avanço significativo no estudo das modificações de RNA. Ao permitir a detecção multiplexada e a análise quantitativa de m6A e edição A-to-I, os pesquisadores podem obter uma compreensão mais clara do papel que essas modificações desempenham na expressão gênica e nas doenças.
Através de seus estudos, eles demonstraram os papéis reguladores separados que diferentes proteínas, como METTL3 e EIF4A3, desempenham na adição dessas modificações. A capacidade de analisar modificações de RNA de forma mais eficiente abre novas avenidas para pesquisas e potenciais intervenções terapêuticas para doenças associadas à expressão gênica anormal.
Conforme a compreensão das modificações de RNA cresce, ferramentas como o assay EpiPlex serão fundamentais para desvendar as complexidades da regulação gênica e podem levar a importantes avanços no campo da biologia molecular e medicina.
Título: Mapping multiple RNA modifications simultaneously by proximity barcode sequencing
Resumo: RNA is subject to a multitude of different chemical modifications that collectively represent the epitranscriptome. Individual RNA modifications including N6-methyladenosine (m6A) on mRNA play essential roles in the posttranscriptional control of gene expression. Recent technological advances have enabled the transcriptome-wide mapping of certain RNA modifications, to reveal their broad relevance and characteristic distribution patterns. However, convenient methods that enable the simultaneous mapping of multiple different RNA marks within the same sample are generally lacking. Here we present EpiPlex RNA modification profiling, a bead-based proximity barcoding assay with sequencing readout that expands the scope of molecular recognition-based RNA modification detection to multiple targets, while providing relative quantification and enabling low RNA input. Measuring signal intensity against spike-in controls provides relative quantification, indicative of the RNA mod abundance at each locus. We report on changes in the modification status of HEK293T cells upon treatment with pharmacological inhibitors separately targeting METTL3, the dominant m6A writer enzyme, and the EIF4A3 component of the exon junction complex (EJC). The treatments resulted in decreased or increased m6A levels, respectively, without effect on inosine levels. Inhibiting the helicase activity of EIF4A3 and EIF4A3 knockdown both cause a significant increase of m6A sites near exon junctions, consistent with the previously reported role of EIF4A3 in shaping the m6A landscape. Thus, EpiPlex offers a reliable and convenient method for simultaneous mapping of multiple RNA modifications to facilitate epitranscriptome studies.
Autores: Gudrun Stengel, E. Sendinc, H. Yu, Y. H. Hwang Fu, J. Santos, Z. Johnson, J. R. Kirstein, J. Niu, M. B. Chabot, V. A. Cantu, Z. Dzakula, Q. Lam, A. Anmangandla, T. S. Burcham, E. M. Davis, Z. D. Miles, A. D. Price, B. W. Purse, R. I. Gregory
Última atualização: 2024-10-10 00:00:00
Idioma: English
Fonte URL: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.10.09.617509
Fonte PDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.10.09.617509.full.pdf
Licença: https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/
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