Usando Luz pra Controlar a Atividade Genética em Leveduras
Pesquisas sobre o EL222 mostram como a luz influencia a regulação gênica e o comportamento das leveduras.
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Índice
- O Que São Proteínas Fotosensitivas?
- Estrutura do EL222
- Como o EL222 é Usado na Ciência
- Trabalhando com Fermento
- Fosfato e Controle Genético
- O Que os Cientistas Fizeram
- Usando CRISPR para Edição Genética
- Medindo a Atividade Genética
- O Papel de Proteínas Adicionais
- Resultados dos Experimentos
- Observações sobre Repressão Gênica
- Conclusão
- Fonte original
- Ligações de referência
A luz é uma parte importante do nosso mundo. Ela influencia como os seres vivos se comportam e crescem. Diferentes organismos usam a luz de várias maneiras para ajudar em coisas como crescer, se mover ou até fazer comida. Um grupo especial de proteínas chamado proteínas fotosensitivas captura a luz. Essas proteínas podem mudar quando absorvem luz, levando a mudanças na forma como os organismos reagem.
O Que São Proteínas Fotosensitivas?
As proteínas fotosensitivas são como pequenos interruptores que ligam quando veem luz. Elas absorvem a luz e passam por uma série de mudanças internas. Essa mudança pode ativar outras ações dentro do organismo. Por exemplo, uma proteína específica chamada EL222 pode detectar luz azul. Quando isso acontece, ela muda de forma e ajuda o organismo a ativar genes que podem ser necessários naquele momento.
Estrutura do EL222
O EL222 é feito de duas partes principais. Uma parte detecta a luz, enquanto a outra faz o trabalho, como ligar um interruptor em um quarto. A primeira parte é chamada de domínio sensorial, que reage à luz, enquanto a segunda parte é o domínio efetor, que ajuda a se ligar ao DNA, as instruções para construir proteínas.
No escuro, o EL222 não consegue se ligar ao DNA porque tem uma forma que impede isso. Quando a luz azul brilha sobre ele, o EL222 muda de forma e pode se ligar ao DNA, permitindo que ative genes específicos. Esse processo é reversível, ou seja, pode ligar e desligar quando a luz está disponível ou não.
Como o EL222 é Usado na Ciência
Os cientistas aprenderam a usar o EL222 em labs para controlar genes em células vivas. Ao iluminar células que têm EL222, os pesquisadores podem ligar ou desligar genes. A luz atua como um gatilho, permitindo que eles estudem como os genes funcionam sem mudar mais nada na célula. Esse método se chama optogenética.
Em alguns experimentos, os cientistas modificaram o EL222 adicionando novas partes a ele. Criaram uma versão chamada VP-EL222, que pode se mover para o núcleo das células, onde o DNA está localizado, e ativar os genes quando a luz está presente. Essa versão modificada tem sido amplamente utilizada em pesquisas.
Trabalhando com Fermento
Um organismo popular para esses experimentos é o fermento. O fermento é fácil de cultivar em um lab e pode ser usado para entender muitos processos biológicos básicos. Os cientistas usaram o VP-EL222 no fermento para estudar como certos genes são controlados em diferentes condições, como a presença de nutrientes.
Por exemplo, quando o fermento tem fosfato suficiente, certos genes são desligados. Mas quando o fosfato está baixo, esses genes são ativados. Usando luz e o VP-EL222, os pesquisadores conseguem ligar esses genes para estudar como o fermento reage a diferentes níveis de fosfato.
Fosfato e Controle Genético
O gene PHO5 no fermento é responsável por quebrar o fosfato. Quando o fosfato está em abundância, o gene está desligado porque o fermento não precisa produzir mais da enzima que o quebra. No entanto, quando os níveis de fosfato caem, o fermento precisa ligar o gene PHO5 para absorver o que precisa.
A maneira como o fermento ativa esse gene envolve várias etapas. Primeiro, uma proteína chamada Pho4 deve entrar no núcleo e se ligar a locais específicos no gene PHO5. Quando o fosfato está baixo, a Pho4 é ativada e traz ajudantes para reativar o gene. Esse processo é complexo e envolve mudanças na estrutura do DNA e das proteínas dentro da célula.
O Que os Cientistas Fizeram
Os pesquisadores pegaram o sistema VP-EL222 e adicionaram ao fermento. Ao brilhar luz azul no fermento, eles puderam ativar o gene PHO5 mesmo quando o fosfato estava disponível. Eles também olharam para outro gene, PHO84, que também responde ao fosfato. Entender esses processos ajuda os cientistas a aprender como as células reagem ao seu ambiente.
Nos experimentos, os cientistas combinaram o VP-EL222 com diferentes proteínas para ver se conseguiam melhorar sua capacidade de controlar esses genes. Eles criaram diferentes versões do EL222, algumas das quais incluíam proteínas maiores. Isso ajudaria a determinar quanto "carga" adicional o EL222 poderia carregar sem perder sua capacidade de funcionar efetivamente.
CRISPR para Edição Genética
UsandoPara tornar os experimentos mais eficazes, os cientistas usaram uma ferramenta chamada CRISPR. Essa tecnologia permite que eles editem genes diretamente no DNA do fermento. Eles inseriram o local de ligação para o VP-EL222 perto dos genes PHO5 e PHO84, para que, quando a luz fosse aplicada, eles pudessem facilmente ativar esses genes.
Durante o processo, descobriram que adicionar o VP-EL222 não mudou como os genes PHO5 e PHO84 normalmente se comportavam. Eles continuaram a expressar os genes conforme necessário, dependendo dos níveis de fosfato presentes. Isso significa que usar o EL222 não interferiu na forma como o fermento naturalmente responde ao fosfato.
Medindo a Atividade Genética
Para ver como os genes estavam sendo ativados, os pesquisadores mediram os níveis de RNA produzidos por esses genes. O RNA é a molécula que diz à célula como fazer proteínas. Ao quantificar o RNA, eles puderam determinar se os genes estavam sendo expressos corretamente em resposta à luz.
Os cientistas descobriram que, quando o fermento foi iluminado com luz azul, o gene PHO5 produziu uma quantidade significativa de RNA em comparação com quando estava no escuro. O nível variou dependendo da disponibilidade de fosfato. Em condições de alto fosfato, observaram menos produção de RNA no geral, enquanto condições de baixo fosfato permitiram mais atividade gênica.
O Papel de Proteínas Adicionais
Além do VP-EL222, os pesquisadores também testaram outras proteínas que podiam se conectar ao EL222 para manipular ainda mais a expressão gênica. Eles criaram fusões do EL222 com diferentes proteínas, incluindo ativadores e repressores transcricionais. Ativadores ajudam a ligar genes, e repressores ajudam a desligá-los.
Alguns dos experimentos envolveram proteínas que já fazem parte do sistema do fermento. Ao anexá-las ao EL222, os cientistas tentaram criar um sistema que fosse mais eficiente e refletisse a biologia natural do fermento. Eles descobriram que, enquanto algumas combinações funcionaram bem, outras não funcionaram como desejado, destacando a complexidade de trabalhar com esses sistemas.
Resultados dos Experimentos
Depois de inúmeros testes, os pesquisadores concluíram que diferentes combinações de EL222 e seus parceiros mostraram eficácia variada no controle da expressão gênica. O VP-EL222 sozinho poderia ativar efetivamente o gene PHO5 em condições de baixo fosfato, mas teve mais dificuldades em cenários de alto fosfato.
Em contrapartida, anexar uma proteína nativa do fermento como a Pho4 ao EL222 permitiu um controle muito mais claro sobre o gene PHO5. Isso significa que usar proteínas nativas pode, às vezes, trazer melhores resultados do que usar sintéticas.
Os resultados também mostraram que a posição dos locais de ligação em relação ao próprio gene desempenha um papel crítico na eficiência do sistema. Quanto mais perto o local de ligação estiver do gene, mais eficaz será a ativação induzida pela luz.
Observações sobre Repressão Gênica
Além de ativar genes, os pesquisadores testaram se conseguiam reprimir com sucesso a atividade gênica usando o EL222. Eles criaram uma fusão do EL222 com uma proteína corepressora, Ume6, que normalmente está envolvida em desligar genes durante condições específicas.
Usando essa nova construção, descobriram que podiam reduzir a expressão do gene PHO5 mesmo em condições de baixo fosfato. Essa capacidade de reprimir a expressão gênica adiciona mais uma camada de como os pesquisadores imaginam controlar a atividade gênica no fermento e, potencialmente, em outros organismos.
Conclusão
O trabalho feito com o EL222 e a manipulação da luz oferece insights valiosos sobre como a expressão gênica pode ser controlada em organismos vivos. Usando a luz como um gatilho, os cientistas podem estudar processos biológicos complexos de uma maneira controlada.
O refinamento contínuo dessas técnicas ajuda os pesquisadores a descobrir princípios biológicos fundamentais que regem como as células reagem ao seu ambiente. Essa compreensão tem potencial para aplicações mais amplas em biotecnologia, biologia sintética e medicina, já que o controle gênico direcionado pode levar a inovações em como projetamos organismos para tarefas específicas.
Estudos como esses mostram a relação entrelaçada de proteínas, DNA, luz e o ambiente, e como juntos eles formam a base da dança intrincada da vida.
Título: Optogenetic control of phosphate-responsive genes using single component fusion proteins in Saccharomyces cerevisiae
Resumo: Blue light illumination can be detected by Light-Oxygen-Voltage (LOV) photosensing proteins and translated into a range of biochemical responses, facilitating the generation of novel optogenetic tools to control cellular function. Here, we develop new variants of our previously described VP-EL222 light-dependent transcription factor and apply them to study the phosphate-responsive signaling (PHO) pathway in the budding yeast Saccharomyces cerevisiae, exemplifying the utilities of these new tools. Focusing first on the VP-EL222 protein itself, we quantified the tunability of gene expression as a function of light intensity and duration, and demonstrated that this system can tolerate the addition of substantially larger effector domains without impacting function. We further demonstrated the utility of several EL222-driven transcriptional controllers in both plasmid and genomic settings, using the PHO5 and PHO84 promoters in their native chromosomal contexts as examples. These studies highlight the utility of light-controlled gene activation using EL222 tethered to either artificial transcription domains or yeast activator proteins (Pho4). Similarly, we demonstrate the ability to optogenetically repress gene expression with EL222 fused to the yeast Ume6 protein. We finally investigated the effects of moving EL222 recruitment sites to different locations within the PHO5 and PHO84 promoters, as well as determining how this artificial light-controlled regulation could be integrated with the native controls dependent on inorganic phosphate (Pi) availability. Taken together, our work expands the applicability of these versatile optogenetic tools in the types of functionalities they can deliver and biological questions that can be probed.
Autores: Kevin H Gardner, M. M. Cleere
Última atualização: 2024-10-29 00:00:00
Idioma: English
Fonte URL: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.08.02.605841
Fonte PDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.08.02.605841.full.pdf
Licença: https://creativecommons.org/licenses/by-nc/4.0/
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