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テロメアの長さとクロマチンのダイナミクスを理解する

研究では、テロメアの長さ測定とクロマチンのアクセス性が細胞機能に関連していることがわかっている。

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我々の遺伝物質、つまりゲノムの整合性を維持することは、細胞の正常な機能にとってめっちゃ重要だよ。このプロセスでミスが起こると、大事な遺伝子が失われたり、がんみたいな病気に繋がることもあるんだ。染色体の重要な部分の一つがテロメアで、これは染色体の端にある保護キャップみたいなもん。テロメアは特別な注意が必要で、通常の細胞分裂の時、細胞が分裂するたびに50から100塩基対のDNAがちょっとずつ失われちゃう。だから、生物、特に人間やマウスはテロメアを伸ばすためのいろんなメカニズムを進化させてきたんだ。人間とマウスのテロメアは主に6塩基対の繰り返し配列、TTAGGGから成り立っていて、Shelterinって呼ばれるタンパク質複合体によって守られている。

短いテロメアは肝臓線維症からいろんなタイプのがんに至るまで、13以上の病気に関連していることがわかってる。だから、研究者たちはテロメアの長さを測ることにめっちゃ興味を持ってるんだ。テロメアの長さを測るための技術はいくつかあって、定量PCR(qPCR)、サザンブロッティング、蛍光in situハイブリダイゼーション(FISH)、ロングリードシーケンシングなどがあるけど、単一細胞レベルでのテロメア長の測定や興味ある他の特徴との連携にはギャップがあったりする。例えば、がん細胞は通常の細胞よりも短いテロメアや長いテロメアを持ってることがあるんだ。「バulk」法で多くの細胞を一緒に見る方法では、こういった個々の違いを見落としがち。それに、テロメアの長さは細胞のタイプによって変わる可能性があるから、研究してる細胞の特定のタイプを知っておくのが意味のある解釈にはめっちゃ大事なんだ。だから、がんサンプルでテロメアの長さを一緒に測るのは信頼できる指標とは考えられてないんだよ。

単一細胞RNAシーケンシング

単一細胞RNAシーケンシング(scRNA-seq)って技術は、組織内の個々の細胞の違いを理解するための今のところベストな方法なんだ。こいつの能力にもかかわらず、この方法を使ってテロメアの長さを測る試みはあんまり進んでない。今までで一番大きな研究でも、たった242個の細胞でテロメアの長さを測っただけで、多分それは時間がかかるうえに高コストなマルチウェルプレート形式で行われたからなんだ。最近のRNAシーケンシングの進歩により、何十万から何百万の細胞を分析することが可能になって、新しい単一細胞アプローチが必要とされるようになったんだよ。

クロマチンを分析するための一つの確立された方法がATAC-seqで、これは「Assay for Transposase-Accessible Chromatin using sequencing」の略なんだ。この方法は、遺伝子がオープンで生物学的プロセスにアクセスできる領域を特定するんだ。ATAC-seqは、こういったオープンな領域を切ってタグ付けする酵素を使って、研究者がそれをシーケンスできるようにしている。異なる領域のアクセスのしやすさを測定して、転写因子の活性、つまり遺伝子をオン・オフにするのを助けるタンパク質についても、このアクセス可能な領域にどれだけいるかを見て評価できるんだ。このプロセスを通じて、科学者たちは異なる細胞タイプやその運命に影響を与える可能性のある調節因子を特定することができるんだ。

ATAC-seqデータから貴重な洞察を得る試みの中で、研究者たちはテロメアに似た配列を見つけたんだ。彼らは、これらのテロメア様配列がテロメアの長さに関する情報を提供するかもしれないと考えた。長いテロメアの方がATAC-seq実験で多くのリードを得られる可能性があるからね。このアイデアをテストするために、公開データと新しいデータを分析したんだ。

テロメア長の測定に関する発見

発見されたのは、単一細胞ATAC-seqはテロメアの長さを測定するのにはあんまり効果的じゃないってこと。主な理由は、テロメア自身がATAC-seqで使うタグメンテーションプロセスから守られているように見えるからなんだ。代わりに、テロメア様リードの存在は、一般的なクロマチンの凝縮を示してることが多いんだ。この時、サブテロメア領域がクロマチンが凝縮することでよりアクセス可能になるんだ。細胞周期のステージはRNA-seqを通じて評価できるけど、ATAC-seqは細胞分裂や有糸分裂への入り口と出口を直接観察できるんだ。さらに、染色体のもう一つの重要な部分であるセントロメアを分析することで、細胞周期の初期と後期のG1フェーズを区別するのにも役立つかもしれない。

クロマチンの凝縮を分析するために、Telomemoreっていうツールが作られたんだ。このツールは、トランスポーゼー挿入の新しいロングリードアトラスを使って検証され、短いリードの起源を推定するために設計された機械学習モデルと組み合わせて使われたんだ。Telomemoreが報告するメトリクスが単一細胞データセットの解釈をどう向上させるかを示す様々な例もあるよ。これには、細胞周期を調節する転写因子の分析や、特定の因子であるCDKN1Cが特定の単球を細胞周期のG1フェーズに留めるように見える研究が含まれてる。それに、新しい単一細胞のヒト扁桃腺B細胞のアトラスも生成されて、B細胞が抗体を調整するプロセスである体細胞超変異がクロマチンの凝縮に関連してどう位置づけられるかが示されたりしてる。

研究方法

単一細胞分析のために現在のデータセットを見て、適切なデータセットが公的なデータベースから集められた。これらのデータセットはシーケンスリードが利用可能か確認するために検査された。もし細胞バーコードが欠けている事例があったら、完全なデータを取り戻す努力がなされた。テロメアの長さを探るために、様々なデータセットが分析されたんだ。

扁桃腺B細胞のアトラスを生成するために、サンプルを集めるための倫理的承認を得た。扁桃腺細胞懸濁液を準備し、赤血球を除去した後、細胞がさらなる分析のために保存された。これらのサンプルからB細胞が分離され、バッチ効果を最小限に抑えるためにプールされた。そして、これらのB細胞はATAC-seqのために処理され、核はシーケンシングの準備のために特定の酵素で処理されたんだ。

同様に、ヒト結腸線維芽細胞も研究され、彼らのマルチオムライブラリを生成するための原則に従って行われた。細胞培養のための関連条件が維持され、データの一貫性を確保するために特定のパッセージの細胞だけが分析に含まれたんだ。

テロメアのアクセス可能性と細胞周期分析

研究の結果、テロメア様リードが広範なクロマチン凝縮イベントについての情報を提供できることが示された、特に細胞周期の間に。既存のデータセットを詳しく調べた結果、テロメア様リードの豊富さが異なる細胞周期のステージと関連していることがわかった。例えば、細胞がDNAを複製するS期の間には、アクセス可能性が低下し、一方でG1期や有糸分裂の間はより高いアクセス可能性が観察された。これが示唆するのは、細胞が分裂の準備をする際に、彼らのクロマチンの構造が変化するってことなんだ。

さらに、テロメア様リードとクロマチンのアクセス可能性の相関は様々な細胞タイプにおいて重要性があることがわかった。テロメア様リードはテロメアの長さだけでなく、クロマチンの全体的な状態を反映するかもしれない。この理解は、この状態に影響を与える特定の転写因子の役割を強調していて、どうやってそれが異なる細胞タイプ間で変わるかを示してるんだ。

特定の細胞タイプにおけるテロメアのアクセス可能性

免疫細胞、特に単球のさらなる分析が行われて、テロメアのアクセス可能性が細胞周期の状態の違いを理解するための予測マーカーとしてどのように役立つかを調べられた。異なるサブセットの単球が調べられ、テロメアのアクセス可能性の違いが示されて、これらの特徴が細胞タイプや機能状態を、クロマチンの構成に基づいてさらに分類するのに役立つかもしれないんだ。

B細胞を調査した際、特に体細胞超変異の間に、テロメアのアクセス可能性とクロマチンの凝縮の相関が、細胞が変異を避けるために遺伝物質をどう管理しているかに関する洞察を提供することがわかった。細胞周期に関連する特定の転写因子の影響が観察されて、これらのタンパク質がB細胞の機能を規制するプロセスに関与している可能性が示唆された。

今後の研究への影響

この研究の結果は、テロメアの長さとクロマチンのアクセス可能性が如何に相互に関連しているかの複雑さを強調しているんだ。テロメア様リードはテロメアの長さを直接測るわけじゃないけど、細胞内のクロマチンのダイナミクスについての重要な文脈を提供している。Telomemoreみたいなツールの開発は、様々な細胞タイプでのクロマチン状態をより効果的に分析するための新しい道を開いているよ。

研究データの共有の透明性が必要だってことがますます認識されてきてる。生のシーケンシングデータへのオープンアクセスは、研究を複製したり、さらなる研究を促進するために重要だよ。これは、データが未来の研究に使えるだけじゃなく、アクセスしやすいことが求められるFAIR原則の呼びかけと一致してるんだ。

最後に、この研究はテロメアのダイナミクス、クロマチンの状態、細胞の機能の統合が、ゲノムの整合性や細胞の挙動を理解する上でどれだけ大事かを強調してる。方法を洗練させたり、これらのつながりを探ったりすることで、研究者たちはテロメアやクロマチンの生物学的意義についての深い洞察を得ることができて、最終的には病気や細胞プロセスに関する理解の進展に貢献できるはずだよ。

オリジナルソース

タイトル: Telomemore enables single-cell analysis of cell cycle and chromatin condensation

概要: Graphical abstract O_FIG O_LINKSMALLFIG WIDTH=200 HEIGHT=140 SRC="FIGDIR/small/533267v2_ufig1.gif" ALT="Figure 1"> View larger version (24K): [email protected]@18b31d7org.highwire.dtl.DTLVardef@1753decorg.highwire.dtl.DTLVardef@346c5f_HPS_FORMAT_FIGEXP M_FIG C_FIG ABSTRACTSingle-cell RNA-seq methods can be used to delineate cell types and states at unprecedented resolution but do little to explain why certain genes are expressed. Single-cell ATAC-seq and multiome (ATAC+RNA) have emerged to give a complementary view of the cell state. It is however unclear what additional information can be extracted from ATAC-seq data besides transcription factor binding sites. Here we show that ATAC-seq telomere-like reads, mostly originating from the subtelomere, cannot be used to infer telomere length, but can be used as a biomarker for chromatin condensation. Using long-read sequencing, we further show that modern hyperactive Tn5 does not duplicate 9bp of its target sequence, contrary to common belief. We provide a new tool, Telomemore, which can quantify non-aligning subtelomeric reads. By analyzing several public datasets, and generating new multiome fibroblast and B cell atlases, we show how this new readout can aid single-cell data interpretation. We show how drivers of condensation processes can be inferred, and how it complements common RNA-seq-based cell cycle inference, which fails for monocytes. Telomemore-based analysis of the condensation state is thus a valuable complement to the single-cell analysis toolbox.

著者: Johan Henriksson, I. Yakovenko, I. S. Mihai, M. Selinger, W. Rosenbaum, A. Dernstedt, R. Groning, J. Trygg, L. Carroll, M. Forsell

最終更新: 2024-07-12 00:00:00

言語: English

ソースURL: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2023.03.19.533267

ソースPDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2023.03.19.533267.full.pdf

ライセンス: https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/

変更点: この要約はAIの助けを借りて作成されており、不正確な場合があります。正確な情報については、ここにリンクされている元のソース文書を参照してください。

オープンアクセスの相互運用性を利用させていただいた biorxiv に感謝します。

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