蛍光タンパク質が筋肉機能に与える影響
調査でEYFPが筋肉のパフォーマンスや構造に悪影響を与えることが明らかになった。
― 1 分で読む
筋肉の機能は体の動きや全体的な健康にとって重要だよね。研究者たちは生きている動物と実験室の設定で筋肉がどう働くかを評価する効果的な方法を見つける必要があるんだ。筋肉のパフォーマンスをチェックする一般的な方法の一つは、電気刺激を使うことで、神経信号や直接的な電気インパルスで筋肉を活性化するんだ。この方法は信頼性が高いけど、いくつかの欠点もある。例えば、針を刺すことで組織が傷ついたり、神経とつながっていない筋肉にはうまく機能しないことがあるんだ。これって神経損傷や特定の筋肉疾患のある人によく起こるんだよ。
若いマウスの場合は、状況がもっと厄介なんだ。彼らの筋肉は小さくて繊細だから、針を何度も刺すことで傷つきやすいんだ。そのせいで、従来の刺激方法では筋肉の構造が傷ついたり、血流が減ったり、炎症が起こったりして、研究結果があまり関係なくなっちゃうことがあるんだ。
筋肉活性化の新技術
この問題を解決するために、科学者たちはオプトジェネティクスに目を向けているんだ。これは侵襲的な手法なしで光を使って筋肉を刺激する技術なんだ。この方法は脳の研究でよく知られていて、高精度なタイミングを提供するんだ。光感受性のタンパク質を使うことで、研究者は光を当てるだけで筋肉の収縮を引き起こせるんだ。Channelrhodopsin-2 (ChR2)という特定のタンパク質が、この光誘導の筋肉活動を可能にしているんだ。青い光にさらされると、このタンパク質は電荷を持った粒子が筋肉細胞に流れ込むのを許可するから、筋肉が神経に接続されていなくても収縮するんだ。
研究者たちは主にChR2を発現する遺伝子改変マウスを使ってこの現象を研究してきたんだ。これらのマウスでは、ChR2タンパク質が筋肉繊維に見られるけど、神経にはないんだ。この特異性が実験中の不要な副作用を減少させるのに役立つんだ。
蛍光タンパク質に関する懸念
ChR2を使うのは興奮するけど、研究者たちはこのタンパク質にしばしば付けられる蛍光タグ、たとえばEYFP(強化型黄色蛍光タンパク質)が悪影響を及ぼすことに気づいたんだ。これらの蛍光タグはタンパク質の追跡には役立つけど、筋肉細胞に害を及ぼす可能性があるんだ。以前の研究では、これらのタグが筋肉の通常の機能や構造を妨げる可能性があることが明らかになっているんだ。
こうした課題に直面して、研究者たちはEYFPが筋肉パフォーマンスにどう影響するかを探ろうとしたんだ。彼らはChR2とEYFPの両方を持つ筋肉とChR2のみを持つ筋肉を比較する実験をデザインしたんだ。蛍光タンパク質をCRISPR/Cas9という方法で取り除くことにしたんだ。
研究のデザイン
研究者たちは、ChR2-EYFP融合タンパク質を持つマウスとChR2のみのマウスを作ったんだ。彼らはこれらの異なるグループが筋肉刺激にどう反応するかを調べるために、いくつかのテストを行ったんだ。電気刺激と光刺激を使って筋肉の収縮能力を測定し、全体的な筋肉構造を評価したんだ。
さらに、これらの筋肉を刺激した後の遺伝子発現の変化にも注目して、筋肉パフォーマンスに影響を与える基礎的なメカニズムを理解しようとしたんだ。
筋肉の構造と機能に関する発見
2種類のマウスを比較したとき、科学者たちはChR2-EYFP融合タンパク質を持つ筋肉に明らかな問題があることを発見したんだ。ChR2-EYFPのマウスは通常の系統よりも筋肉が小さくて、これらのマウスの筋肉はより少ない力を生成したんだ。具体的には、筋肉の質量が低く、収縮能力(力の生成)も減少していたんだ。
研究者たちは詳しく見ていくと、ChR2-EYFPマウスの筋肉の繊維が小さいことを発見したんだ。これから、蛍光タンパク質の存在が筋肉の働きだけでなく、成長にも影響を与えていることがわかるね。
EYFPの影響を探る
研究は、EYFPの存在が筋肉繊維内でタンパク質が異常に集まることを引き起こし、通常の運営を妨げる可能性があることを明らかにしたんだ。これらのクラスターは筋肉細胞内の小さな袋、つまり空胞と関連していて、筋肉の構造を異常にしていたんだ。ChR2のみの筋肉ではこれは見られなかったから、EYFPが害を及ぼしている可能性があるんだ。
これらの変化をさらに理解するために、研究者たちは顕微鏡で筋肉細胞を調べたんだ。ChR2-EYFPマウスの筋肉繊維は他のグループに比べて異なる外観を示していることに気づいたんだ。
筋肉機能への影響
研究者たちは次に、刺激の下で筋肉がどれだけ収縮できるかをテストしたんだ。ChR2-EYFPマウスの筋肉は、電気刺激と光刺激の両方で、野生型やChR2のみのマウスと比べて一貫して少ない力を生成したんだ。
興味深いことに、収縮能力を見たとき、ChR2のみの筋肉はEYFPを持つ筋肉よりもはるかに良いパフォーマンスを発揮したんだ。これは、蛍光タグが筋肉の刺激に対する反応能力を制限していることを示しているんだ。
遺伝子発現の変化
問題を深く掘り下げるために、科学者たちは筋肉の遺伝子発現を分析したんだ。彼らは刺激の前後で異なるマウス系統の発現パターンがどう異なるかを見たかったんだ。ChR2-EYFPマウスの筋肉は特有の遺伝子発現プロファイルを持っていて、筋肉機能に関連する多くの重要な遺伝子がダウンレギュレーションされていることがわかったんだ。
このダウンレギュレーションは、素早い発揮に重要な速筋繊維に大きく影響を与えたんだ。一方で、遅筋繊維は同じレベルの障害を示さなかったことから、EYFPの影響は特に速筋機能にとって有害であることが示唆されるね。
炎症と筋肉反応
さらに、炎症関連の遺伝子がChR2-EYFP筋肉でより高いレベルで発現していることがわかったんだ。これから、蛍光タグの存在が炎症反応を促進する可能性があり、観察された筋肉機能不全に関連していることを示唆しているんだ。
光で刺激された筋肉では、ChR2のみのグループはChR2-EYFP筋肉と比べてはるかに強い転写反応を示した。これらの違いは、蛍光タグが筋肉の回復能力や刺激への適応能力を鈍らせるかもしれないことを強調しているんだ。
結論
この研究は、EYFPのような蛍光タグの使用が筋肉の機能や構造に悪影響を及ぼす可能性があることに関する重要な洞察を提供しているんだ。発見は、特に筋肉機能を研究する際に遺伝子モデルで蛍光タンパク質の使用を慎重に考慮する重要性を強調しているんだ。
ChR2とChR2-EYFPが筋肉生理に与える影響を比較することで、研究者たちはより効果的なオプトジェネティクスモデルの開発に向けて進むことができるんだ。これらの進展は筋肉生物学の理解を深める可能性があり、筋肉関連疾患の治療にも役立つかもしれない。
これらの発見の影響を完全に理解するためにはさらなる研究が必要だね。蛍光タンパク質の除去が筋肉パフォーマンスにどう影響するかを分析することで、筋肉療法やオプトジェネティクスの応用を向上させるのに役立つだろう。
全体として、この研究は筋肉生物学における複雑な相互作用に光を当てて、筋肉機能を研究するための革新的なアプローチが必要であることを強調しているんだ。
タイトル: Overexpression of enhanced yellow fluorescent protein fused with Channelrhodopsin-2 causes contractile dysfunction in skeletal muscle
概要: Skeletal muscle activation using optogenetics has emerged as a promising technique for inducing noninvasive muscle contraction and assessing muscle function both in vivo and in vitro. Transgenic mice overexpressing the optogenetic fusion protein, Channelphodopsin2-EYFP (ChR2-EYFP) in skeletal muscle are widely used; however, overexpression of fluorescent proteins can negatively impact the functionality of activable tissues. In this study, we characterized the contractile properties of ChR2-EYFP skeletal muscle and introduced the ChR2-only mouse model that expresses light-responsive ChR2 without the fluorescent EYFP in their skeletal muscles. We found a significant reduction in the contractile ability of ChR2-EYFP muscles compared to ChR2-only and WT mice, observed under both electrical and optogenetic stimulation paradigms. Bulk RNAseq identified downregulation of genes associated with transmembrane transport and metabolism in ChR2-EYFP muscle, while the ChR2-only muscle did not demonstrate any notable deviations from WT muscle. The RNAseq results were further corroborated by a reduced protein-level expression of ion-channel-related HCN2 in ChR2-EYFP muscles and gluconeogenesis-modulating FBP2 in both ChR2-EYFP and ChR2-only muscles. Overall, this study reveals an intrinsic skeletal dysfunction in the widely used ChR2-EYFP mice model and underscores the importance of considering alternative optogenetic models, such as the ChR2-only, for future research in skeletal muscle optogenetics.
著者: Megan Leigh Killian, S. N. E. Lamia, C. S. Davis, P. C. D. Macpherson, B. Willingham, Y. Zhang, C. Liu, L. Iannucci, E. Ganji, D. Harden, I. Bhattacharya, A. C. Abraham, S. V. Brooks, B. Glancy
最終更新: 2024-07-18 00:00:00
言語: English
ソースURL: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.06.06.597782
ソースPDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.06.06.597782.full.pdf
ライセンス: https://creativecommons.org/licenses/by-nc/4.0/
変更点: この要約はAIの助けを借りて作成されており、不正確な場合があります。正確な情報については、ここにリンクされている元のソース文書を参照してください。
オープンアクセスの相互運用性を利用させていただいた biorxiv に感謝します。