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新しい染料がタンパク質タグ付け技術を進化させる

研究者たちは、細胞表面での正確なタンパク質ラベリングのためにスルホン化染料を開発した。

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革新的なタンパク質タグ付け革新的なタンパク質タグ付け方法可視化を強化する。スルホン化染料は細胞表面でのタンパク質の
目次

生物学の世界では、科学者たちは細胞内でのタンパク質の働きを調べるために、それらを追跡する必要があるんだ。これをするための一つの方法は、タンパク質に結合できる特別なタグを使うこと。これらのタグを使うことで、研究者たちは蛍光染料みたいなものを取り付けることができ、顕微鏡で光るんだ。タグを使うことで、科学者たちはタンパク質の位置や、生きている細胞内での動きを観察できるんだ。

セルフラベリングタンパク質タグの概要

SNAPやHaloTagみたいなセルフラベリングタンパク質タグは、よく使われてる。これらのタグは、細胞の自然なプロセスを妨げずに特定のタンパク質にラベルを付けるのに役立つんだ。タグ付きのタンパク質が細胞に導入されると、タグに結合する染料を追加することでラベルを付けられる。これによって、科学者たちはタンパク質を可視化して、その挙動をリアルタイムで研究できるようになる。

ラベリングの課題

これらのタグの大きな課題は、標準的な方法では細胞の表面のタンパク質だけでなく、細胞内のタンパク質、例えばエンドソームや小胞体の中のものまでラベリングしてしまうこと。このせいで、細胞表面でのタンパク質の特定の機能を理解するのが難しくなるんだ。

これを克服するために、研究者たちは細胞に入らない特別な染料を使うことができる。この染料は細胞不透過性染料と呼ばれてる。こうした染料が機能する一般的な方法は、それに負の電荷を加えることで、細胞の外側にいるタンパク質だけをラベリングすることを確実にするんだ。

染料の一般的な戦略

従来、科学者たちは自分たちの染料を変更して、細胞に入る能力を減らそうとしてた。例えば、染料の構造にカルボキシレート基という酸性の化学基を追加することが含まれる。でも、全ての効果的な染料がこの方法で修正できるわけじゃなくて、特定の実験への使用が制限されちゃうんだ。

最近、遅い段階で染料に負の電荷を追加する新しいアプローチが開発された。これは、染料をHaloTagリガンドに化学的に結びつけて、負の電荷の一種であるスルホン酸基を付ける方法。これにより、研究者たちは細胞に入れないままで有用な性質を保持した染料を作れるようになった。

染料修正の新しい戦略

研究者たちは、こうした修正された染料を作るために実験を行った。まずは、分子モデリングを使って、新しいスルホン酸基がHaloTagとの結合に干渉しないか確認したんだ。それを確認した後、彼らは新しい染料-リガンドの組み合わせを合成するために一連の化学反応を進めた。

結果として、新しい染料はタンパク質と結合したときに光る能力を維持しつつ、細胞に入るのを避けることができることが分かった。研究者たちはこれらの染料をさまざまな細胞株でテストして、スルホン化されたバージョンが細胞表面のタンパク質だけを効果的にラベリングすることを確認した。

生細胞イメージング技術

これらの新しい染料の効果を視覚化するために、研究者たちは生細胞イメージング実験を行った。彼らはHaloTagでタグ付けされたタンパク質をヒト腎臓細胞に導入し、いろんな染料を使ってラベリングした。異なる染料のバリエーションの結果を比較することで、細胞表面と細胞内部のどちらに染料が局在するかを見ることができたんだ。

実験では、従来の染料と新しいスルホン酸化染料との明確な違いが見られた。新しい染料は、表面のタンパク質のみをラベリングして、リアルタイムでこれらのタンパク質の位置をより明確に理解できるようにしてくれた。

ニューロンの研究

研究者たちは、これらの染料が脳内の細胞であるニューロンを研究するためにどう使えるかを探った。彼らは記憶や学習に重要な特定のニューロン、海馬ニューロンを使った。新しいスルホン酸染料でグルタミン酸受容体(脳内で信号を伝えるのに関与するタンパク質の一種)をタグ付けすることで、これらの受容体がニューロン内でどのように分布しているかを見ようとしたんだ。

受容体にタグを付けた後、研究者たちは高度なイメージング技術を使ってそれらを可視化した。受容体はニューロンの表面と細胞内部の両方に存在することが確認できた。この情報は、これらの受容体がニューロン間の信号伝達やコミュニケーションでどのように機能するかを理解するのに重要なんだ。

スーパー解像度イメージングによる技術の改善

タンパク質のより明確な画像を得るために、研究者たちはスーパー解像度イメージングという技術を使った。この方法は、従来の顕微鏡では明らかにできない細かい詳細を見ることを可能にする。新しいスルホン酸染料をスーパー解像度技術と組み合わせて使ったことで、研究者たちはタンパク質をはるかに高い解像度で見ることができたんだ。

結果は素晴らしかった。彼らは、シナプス信号伝達に関与する他のタンパク質(バソーンやシャンク)に対するグルタミン酸受容体の特定の分布を可視化できた。このおかげで、ニューロンのつながりの中でこれらの受容体がどのように相互作用するかをよりよく理解できるようになった。

結論

要するに、これらの新しいスルホン酸染料の開発は、タンパク質のラベリングとタグ付けの分野で大きな進展を示している。細胞に入らない染料を作ることで、研究者たちは細胞表面のタンパク質の位置や活動をより正確に研究できるようになった。この研究の影響は生物学の多くの領域に広がっていて、特に脳のような複雑なシステムでのタンパク質の働きを理解するのに役立つんだ。

この簡略化されたタンパク質タグ付けのアプローチは、さまざまな細胞コンテキストでのタンパク質をより正確に調査する手助けになるかもしれない。これらの技術がさらに改良され続けることで、細胞メカニズムの新しい理解を解き明かす可能性があり、さまざまな病気の治療法の開発に役立つかもしれない。

オリジナルソース

タイトル: A one-step protocol to generate impermeable fluorescent HaloTag substrates for in situ live cell application and super-resolution imaging

概要: Communication between cells is largely orchestrated by proteins on the cell surface, which allow information transfer across the cell membrane. Super-resolution and single-molecule visualization of these proteins can be achieved by genetically grafting HTP (HaloTag Protein) into the protein of interest followed by brief incubation of cells with a dye-HTL (dye-linked HaloTag Ligand). This approach allows for use of cutting-edge fluorophores optimized for specific optical techniques or a cell-impermeable dye-HTL to selectively label surface proteins without labeling intracellular copies. However, these two goals often conflict, as many high-performing dyes exhibit membrane permeability. Traditional methods to eliminate cell permeability face synthetic bottlenecks and risk altering photophysical properties. Here we report that dye-HTL reagents can be made cell-impermeable by inserting a charged sulfonate directly into the HTL, leaving the dye moiety unperturbed. This simple, one-step method requires no purification and is compatible with both the original HTL and second-generation HTL.2, the latter offering accelerated labeling. We validate such compounds, termed dye-SHTL ( dye shuttle) conjugates, in live cells via widefield microscopy, demonstrating exclusive membrane staining of extracellular HTP fusion proteins. In transduced primary hippocampal neurons, we label mGluR2, a neuromodulatory G protein-coupled receptor (GPCR), with dyes optimized for stimulated emission by depletion (STED) super-resolution microscopy, allowing unprecedented accuracy in distinguishing surface and receptors from those in internal compartments of the presynaptic terminal, important in neural communication. This approach offers broad utility for surface-specific protein labelling.

著者: Johannes Broichhagen, K. Rossmann, S. Sun, C. H. Olesen, M. Kowald, E. Tapp, U. Pabst, M. Bieck, R. Birke, B. C. Shields, P. Jeong, J. Hong, M. R. Tadross, J. Levitz, M. Lehmann, N. Lipstein

最終更新: 2024-09-23 00:00:00

言語: English

ソースURL: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.09.20.614087

ソースPDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.09.20.614087.full.pdf

ライセンス: https://creativecommons.org/licenses/by-nc/4.0/

変更点: この要約はAIの助けを借りて作成されており、不正確な場合があります。正確な情報については、ここにリンクされている元のソース文書を参照してください。

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