Simple Science

Scienza all'avanguardia spiegata semplicemente

# La biologia# Biologia cellulare

Avanzamenti nella Microscopia a Fluorescenza: Ridurre la Fototossicità

Nuove tecniche migliorano l'imaging delle cellule vive riducendo al minimo i danni.

― 5 leggere min


Innovazioni nell'ImagingInnovazioni nell'Imagingdi Cellule Vivei danni durante l'imaging cellulare.Nuovi coloranti della rodamina riducono
Indice

La microscopia a fluorescenza è uno strumento potente per vedere strutture minuscole nelle cellule. Col tempo, questa tecnica è migliorata, passando da immagini 3D di campioni fissi (non viventi) a registrare processi dinamici in cellule e animali vivi. Questi nuovi metodi riescono a catturare immagini e video dettagliati di cellule vive, aiutando gli scienziati a capire come funzionano le cellule in tempo reale. Tuttavia, questi miglioramenti presentano anche alcune sfide.

La sfida della Fototossicità

Uno dei problemi principali nello studio delle cellule vive è la fototossicità. Quando gli scienziati illuminano le cellule con luci intense per catturare immagini, le cellule possono subire danni. Questo succede perché i marcatori fluorescenti, le sostanze usate per rendere visibili le parti delle cellule, possono danneggiare le cellule se esposte a troppa luce. La fototossicità può far sì che le cellule smettano di funzionare, cambino forma, smettano di crescere o addirittura muoiano.

Comprendere le Specie reattive dell'ossigeno (ROS)

Il danno causato dalla fototossicità deriva principalmente dalle specie reattive dell'ossigeno, note anche come ROS. Queste sono molecole dannose che si formano quando un marcatore fluorescente assorbe luce e reagisce con l'ossigeno nell'ambiente. Un tipo specifico di ROS particolarmente preoccupante è l'ossigeno singoletto. Può interagire con parti importanti delle cellule, come proteine e DNA, portando a vari problemi.

La necessità di misure protettive

Man mano che gli scienziati lavorano per migliorare le tecniche di microscopia a fluorescenza, cresce la necessità di trovare modi per ridurre la fototossicità. Vogliono assicurarsi che i dati raccolti dalle cellule vive rimangano accurati e riflettano le vere condizioni all'interno delle cellule. Per raggiungere questo obiettivo, i ricercatori hanno iniziato a usare agenti protettivi chiamati quenchers a stato tripletto (TSQ) per minimizzare gli effetti dannosi della luce sulle cellule.

Quenchers a stato tripletto (TSQ)

I TSQ sono utili per ridurre gli effetti negativi della luce sui marcatori fluorescenti. Sono stati usati in microscopia per un po' di tempo e le strategie recenti hanno coinvolto il collegamento diretto dei TSQ ai coloranti fluorescenti. Questo metodo può aumentare la stabilità dei coloranti e ridurre il rischio di fototossicità.

Il focus sui coloranti rodamina

I coloranti rodamina sono diventati popolari nell'imaging delle cellule vive perché hanno ottime proprietà per catturare immagini nitide. Sono brillanti e possono essere usati in vari modi. Alcuni scienziati hanno lavorato per migliorare ulteriormente questi coloranti collegandoli ai TSQ, come la mercaptoetilamina (MEA) o il ciclooctatetraene (COT). Questa combinazione punta a ridurre gli effetti dannosi della luce sulle cellule.

Risultati sperimentali

Negli esperimenti, i ricercatori hanno scoperto che collegare i TSQ ai coloranti rodamina aiutava a rendere i coloranti meno dannosi per le cellule. Per esempio, confrontando il comportamento di diverse combinazioni di coloranti, hanno osservato che le rodamine coniugate ai TSQ causavano meno danni alle cellule durante l'imaging. Questo significa che i ricercatori possono raccogliere più dati dalle cellule vive senza mettere a rischio la loro salute.

Imaging delle cellule vive con rodamine più delicate

Lo sviluppo di coloranti rodamina più delicati ha fornito agli scienziati una soluzione pratica per immaginare specifiche parti delle cellule vive. Hanno testato varie combinazioni per vedere quali funzionassero meglio, concentrandosi su quanto danno causassero durante l'imaging. I risultati hanno mostrato che certe rodamine collegate al COT permettevano sessioni di imaging più lunghe senza danneggiare le cellule.

Test e risultati

Per valutare l'efficacia di questi nuovi coloranti, gli scienziati hanno condotto diversi test. Ad esempio, hanno esaminato quanta luce fosse necessaria per danneggiare le cellule etichettate con diversi coloranti. I coloranti collegati al COT hanno mostrato costantemente livelli più bassi di danno, il che è promettente per applicazioni future nell'imaging delle cellule vive.

Applicazioni nell'imaging cellulare

Le rodamine più delicate possono essere usate per visualizzare molti componenti delle cellule, comprese le mitocondri (le strutture che producono energia), la membrana plasmatica (il rivestimento esterno della cellula) e persino il nucleo (il centro di controllo della cellula). Usando questi coloranti più delicati, i ricercatori possono prendere immagini continue senza preoccuparsi di danneggiare le cellule.

Rodamine fluorogeniche in azione

Le rodamine fluorogeniche hanno proprietà uniche che permettono loro di cambiare colore in base all'ambiente, rendendole utili per l'imaging senza passaggi aggiuntivi di lavaggio. Quando combinate con i TSQ, questi coloranti offrono un modo per ottenere immagini più chiare riducendo al minimo il potenziale danno alle cellule.

Imaging a lungo termine con ridotta fototossicità

Nell'imaging delle cellule vive, minimizzare la fototossicità è cruciale, specialmente per studi a lungo termine. I ricercatori hanno dimostrato che l'uso dei nuovi coloranti rodamina consente sessioni di imaging molto più lunghe, catturando processi vitali senza causare danni significativi alle cellule.

Il ruolo delle proteine auto-etichettanti

I tag proteici auto-etichettanti consentono ai ricercatori di attaccare marcatori fluorescenti direttamente a specifiche proteine all'interno delle cellule. Questo fornisce un modo per studiare queste proteine nel tempo. Tuttavia, a causa del potenziale per la fototossicità, le nuove rodamine più delicate sono ideali per questo scopo, assicurando che le proteine possano essere osservate senza essere influenzate negativamente.

Conclusione

I progressi nella tecnologia dei coloranti rodamina e l'aggiunta dei TSQ hanno aperto nuove possibilità per la microscopia a fluorescenza. Questi sviluppi permettono un migliore imaging delle cellule vive riducendo al minimo i rischi associati alla fototossicità. Man mano che i ricercatori continuano a perfezionare queste tecniche, possono raccogliere dati più accurati sui processi cellulari, portando a ulteriori scoperte in biologia e medicina.

Fonte originale

Titolo: Gentle rhodamines for live-cell fluorescence microscopy

Estratto: Rhodamines have been continuously optimized in brightness, biocompatibility, and colors to fulfill the demands of modern bioimaging. However, the problem of phototoxicity caused by the excited fluorophore under long-term illumination has been largely neglected, hampering their use in time-lapse imaging. Here we introduce cyclooctatetraene (COT) conjugated rhodamines that span the visible spectrum and exhibit significantly reduced phototoxicity. We identified a general strategy for the generation of Gentle Rhodamines, which preserved their outstanding spectroscopic properties and cell permeability while showing an efficient reduction of singlet-oxygen formation and diminished cellular photodamage. Paradoxically, their photobleaching kinetics do not go hand in hand with reduced phototoxicity. By combining COT-conjugated spirocyclization motifs with targeting moieties, these gentle rhodamines compose a toolkit for time-lapse imaging of mitochondria, DNA, and actin and synergize with covalent and exchangeable HaloTag labeling of cellular proteins with less photodamage than their commonly used precursors. Taken together, the Gentle Rhodamines generally offer alleviated phototoxicity and allow advanced video recording applications, including voltage imaging.

Autori: Zhixing Chen, T. Liu, J. Kompa, J. Ling, N. Lardon, Y. Zhang, L. Reymond, M. Tran, Z. Yang, H. Zhang, Y. Liu, S. Pitsch, P. Zou, L. Wang, K. Johnsson

Ultimo aggiornamento: 2024-02-08 00:00:00

Lingua: English

URL di origine: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.02.06.579089

Fonte PDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.02.06.579089.full.pdf

Licenza: https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/

Modifiche: Questa sintesi è stata creata con l'assistenza di AI e potrebbe presentare delle imprecisioni. Per informazioni accurate, consultare i documenti originali collegati qui.

Si ringrazia biorxiv per l'utilizzo della sua interoperabilità ad accesso aperto.

Altro dagli autori

Articoli simili