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Avanzamenti nelle tecniche di tracciamento neurale

Nuovi metodi migliorano la nostra comprensione delle connessioni neurali e del funzionamento del cervello.

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Il sistema nervoso è composto da milioni di cellule chiamate Neuroni. Nei topi ci sono circa 70 milioni di neuroni, mentre negli esseri umani ce ne sono circa 86 miliardi. Questi neuroni si collegano tra loro in reti complesse per aiutarci a pensare, ricordare e processare informazioni. Gli scienziati studiano queste connessioni per capire meglio come funziona il cervello e per comprendere i problemi di salute mentale.

Per vedere come sono collegati questi neuroni, i ricercatori usano tecniche speciali chiamate metodi di tracciamento neurale. Identificando circuiti specifici di neuroni, gli scienziati possono costruire modelli per studiare come funziona il cervello e cosa va storto nei disturbi della salute mentale.

Sviluppo Storico del Tracciamento Neurale

Nel 1971, due ricercatori hanno introdotto un concetto chiave che è ancora usato in molti tracciatori neurali moderni. Hanno scoperto che i neuroni possono trasportare molecole lungo i loro lunghi bracci, chiamati assoni. Questa scoperta ha portato all'idea che questi meccanismi di trasporto potessero essere utilizzati per trasportare sostanze che etichettano i neuroni. I primi metodi di tracciamento usavano aminoacidi radioattivi, ma richiedevano macchine voluminose per rilevarli.

Oggi, molti metodi di tracciamento si basano su microscopi ottici ed elettronici per visualizzare questi neuroni etichettati. I metodi più vecchi spesso usavano coloranti, ma queste sostanze potevano diluirsi o degradarsi nel tempo. Le tecniche più recenti usano virus per etichettare i neuroni. Virus come il virus dell'herpes simplex (HSV), il virus associato all'adenovirus (AAV) e il virus della rabbia (RV) possono entrare nei neuroni e viaggiare in diverse direzioni per marcarli. Questi virus possono essere modificati per esprimere proteine speciali che illuminano i neuroni sotto un microscopio.

Come Funzionano i Tracciatori Virali

Diversi tracciatori virali possono etichettare i neuroni in modi diversi:

  1. Etichettatura statica: Il virus segna solo i neuroni che tocca per primi.
  2. Etichettatura monosynaptica: Il virus segna i neuroni vicini che sono direttamente collegati.
  3. Etichettatura polisynaptica: Il virus segna più strati di neuroni connessi.

Combinando questi tracciatori virali con strumenti genetici speciali, i ricercatori possono avere ancora più controllo su come e dove i tracciatori si diffondono. Varie proprietà, come la dimensione del materiale genetico che possono trasportare e quanto siano tossici per le cellule, determinano quale tracciatore virale è meglio per uno specifico studio.

L'AAV è limitato a trasportare piccole quantità di materiale genetico, mentre altri virus come l'HSV possono gestire carichi molto più grandi. Tuttavia, l'HSV e altri vettori grandi possono essere tossici per le cellule o avere limitazioni nel loro utilizzo come tracciatori.

Progressi nel Tracciamento Virale

Il virus della rabbia ricombinante (RV) è una scelta popolare per il tracciamento neurale perché i ricercatori possono controllare come si diffonde rimuovendo un gene specifico. Quando questo gene viene rimosso, possono abilitare una diffusione controllata attraverso i neuroni connessi.

Un altro modo per migliorare il controllo sulla diffusione virale è attraverso un recettore speciale chiamato TVA, che permette al virus della rabbia di diffondersi in modo più preciso. Tuttavia, senza un controllo attento, il virus potrebbe diffondersi troppo e etichettare troppi neuroni, rendendo difficile studiare collegamenti specifici.

Alcuni ricercatori hanno sviluppato nuove varianti di RV che minimizzano la tossicità e permettono un'etichettatura a lungo termine dei neuroni. Modificando il patrimonio genetico del virus, possono migliorare la sua capacità di diffondersi mantenendolo sicuro per le cellule.

Optogenetica: Controllare i Neuroni con la Luce

Uno strumento affascinante che è emerso in questo campo è l'optogenetica, che comporta l'uso della luce per controllare l'attività neuronale. I ricercatori hanno trovato modi per collegare proteine fotosensibili ai geni responsabili della diffusione virale. Accendendo la luce su queste proteine, gli scienziati possono attivare o disattivare la diffusione del virus.

Un esempio coinvolge una specifica proteina vegetale che risponde a diversi colori di luce. Quando si illumina la proteina con luce rossa, attiva il gene per la diffusione del virus della rabbia. Se si usa luce rosso lontano, il processo può essere soppressa. Questo consente un controllo molto preciso su dove avviene il tracciamento virale.

Progettare il Sistema Optoelettronico

Costruire un sistema efficace per controllare questi processi implica una combinazione di diversi componenti. I ricercatori hanno progettato attrezzature che includono un pannello luminoso speciale e una telecamera. La telecamera cattura immagini mentre il pannello luminoso illumina di rosso o rosso lontano per controllare l'espressione genica e la diffusione virale.

Il processo inizia con i vettori virali che infettano i neuroni, permettendo loro di essere etichettati. Quando la luce viene usata per attivare neuroni specifici, il virus si diffonde ai neuroni connessi, permettendo ai ricercatori di visualizzare la rete di connessioni in tempo reale.

Semplificare le Tecniche di imaging

Sviluppi recenti nelle tecniche di imaging hanno anche reso più facile visualizzare le connessioni tra i neuroni. Invece di usare microscopi convenzionali, i ricercatori hanno iniziato a utilizzare sistemi di imaging senza lenti. Questi sistemi possono catturare immagini di ampie aree senza necessitare di attrezzature complesse e costose.

L'imaging senza lenti funziona raccogliendo pattern di luce da un campione senza la necessità di una lente tradizionale. Questo consente ai ricercatori di catturare rapidamente ed efficientemente immagini di interi fette di cervello.

Combinare Tecnologie per un Tracciamento Migliorato

Nel loro lavoro, i ricercatori hanno combinato vettori virali ad alta capacità con strumenti optogenetici per creare un potente sistema di tracciamento. Progettando un baculovirus per trasportare vari componenti necessari, possono controllare l'espressione del gene del virus della rabbia responsabile della diffusione.

La configurazione complessiva consente il tracciamento dei circuiti neurali infettando prima i neuroni con il baculovirus. Una volta che i neuroni esprimono i componenti necessari, il virus della rabbia può essere introdotto. Quando la luce attiva i geni della rabbia, il virus si diffonde attraverso i neuroni connessi, consentendo una mappatura dettagliata delle vie neuronali.

Applicazioni e Direzioni Future

Questo approccio optogenetico al tracciamento delle connessioni neurali ha molte potenziali applicazioni. Potrebbe essere utilizzato per capire come diverse regioni del cervello comunicano tra loro e come queste connessioni cambiano nelle malattie o nelle fasi di sviluppo.

I ricercatori possono utilizzare questa mappatura dettagliata per indagare disturbi psichiatrici, malattie neurodegenerative e altre condizioni neurologiche. Inoltre, questo tipo di tracciamento può aiutare a identificare quali neuroni sono responsabili di specifiche funzioni nel cervello.

Conclusione

La combinazione di tracciamento virale e optogenetica rappresenta un grande avanzamento nella nostra capacità di studiare circuiti neurali. Consentendo ai ricercatori di visualizzare e controllare questi circuiti in modo più efficace, apriamo nuove strade per comprendere le complessità del cervello e delle sue connessioni. Man mano che la tecnologia continua a migliorare, il potenziale per scoprire nuove terapie e comprendere le malattie neurologiche diventa ancora più promettente.

Fonte originale

Titolo: Light-Guided Rabies Virus Tracing for Neural Circuit Analysis

Estratto: Neuronal tracing methods are essential tools to understand the fundamental architecture of neural circuits and their connection to the overall functional behavior of the brain. Viral vectors used to map these transsynaptic connections are capable of cell-type-specific and directional-specific labeling of the neuronal connections. Herein, we describe a novel approach to guide the transsynaptic spreading of the Rabies Virus (RV) retrograde tracer using light. We built a Baculovirus (BV) as a helper virus to deliver all the functional components necessary and sufficient for a nontoxic RV to spread from neuron to neuron, with a light-actuated gene switch to control the RV polymerase, the L gene. This design should allow for precisely controlled polysynaptic viral tracing with minimal viral toxicity. To use this system in a highly scalable and automated manner, we built optoelectronics for controlling this system in vitro with a large field of view using an off-the-shelf CMOS sensor, OLED display panel, and microcontrollers. We describe the assembly of these genetic circuits using the uLoop DNA assembly method and a library of genetic parts designed for the uLoop system. Combining these tools provides a framework for increasing the capabilities of nontoxic tracing through multiple synapses and increasing the throughput of neural tracing using viruses.

Autori: Phillip Kyriakakis, S. Zhang, Y. Ma, W. Ngamkanjanarat, S. Takahashi, D. Gibbs, T. Coleman, S. Doan

Ultimo aggiornamento: 2024-02-23 00:00:00

Lingua: English

URL di origine: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2023.03.04.531104

Fonte PDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2023.03.04.531104.full.pdf

Licenza: https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/

Modifiche: Questa sintesi è stata creata con l'assistenza di AI e potrebbe presentare delle imprecisioni. Per informazioni accurate, consultare i documenti originali collegati qui.

Si ringrazia biorxiv per l'utilizzo della sua interoperabilità ad accesso aperto.

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