Targeting MmpL3 nelle infezioni micobatteriche
La ricerca svela il ruolo di MmpL3 nella sopravvivenza dei micobatteri e nel targeting dei farmaci.
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Indice
- Il Ruolo di MmpL3
- Comprendere lo Stato Oligomerico di MmpL3
- Clonazione ed Espressione delle Proteine MmpL3
- Purificazione delle Proteine MmpL3
- Ricostituzione in Sistemi di Membrana
- Analisi della Struttura della Proteina
- Tecniche di Caratterizzazione Avanzata
- Microscopia Elettronica Criogenica
- Simulazioni di Dinamica Molecolare
- Conclusione e Direzioni Future
- Fonte originale
- Link di riferimento
Gli Acidi micolici (MAs) sono acidi grassi speciali presenti nello strato esterno degli organismi micobatterici, come il Mycobacterium tuberculosis, che causa la tubercolosi. Questi acidi sono fondamentali per la struttura e la protezione dei batteri. Hanno un ruolo significativo nel rendere la membrana cellulare esterna meno permeabile, influenzando come i batteri interagiscono con l'ambiente. Gli MAs sono vitali per la capacità dei batteri di causare malattie e possono influenzare come il sistema immunitario dell'ospite reagisce durante l'infezione.
Per spostare questi MAs nella membrana esterna, prima attraversano la membrana interna come un composto noto come trealosio monomicolato (TMM). Da lì, il TMM può diventare parte di un altro composto chiamato trealosio dimicolato (TDM) o collegarsi allo strato di peptidoglicano, formando peptidoglicano arabinogalattano micolato (mAGP). Poiché gli MAs sono così importanti per i batteri, sono un obiettivo interessante per i farmaci. Diversi farmaci che aiutano a trattare la tubercolosi si concentrano sul disturbare la produzione di MAs.
Il Ruolo di MmpL3
Recentemente, i ricercatori hanno indirizzato la loro attenzione su come gli MAs vengono trasportati nella membrana esterna. Una proteina chiamata Mycobacterium membrane protein large 3 (MmpL3) è stata identificata come fondamentale in questo processo. MmpL3 fa parte di una famiglia di proteine note come trasportatori RND, responsabili di spostare sostanze attraverso le membrane. Questa proteina può trasportare TMM attraverso la membrana interna, e i ricercatori hanno scoperto che piccole molecole possono bloccare questa azione.
Ci sono varie strutture di MmpL3 disponibili sia da M. tuberculosis che da un batterio correlato chiamato Mycobacterium smegmatis. Gli studi mostrano che MmpL3 ha dodici domini transmembrana disposti in due fasci. Contiene anche una grande sezione all'esterno della membrana, che collega i domini transmembrana. Questa struttura consente a MmpL3 di interagire strettamente al suo interno, e i ricercatori hanno scoperto che ha un sito di legame per candidati farmaci.
Inoltre, altri studi hanno rivelato che MmpL3 può interagire con diverse molecole, come detergenti e Lipidi, per facilitare la sua funzione. Queste strutture forniscono informazioni su come MmpL3 funziona e su come potrebbe essere possibile progettare farmaci che prendono di mira questa proteina.
Comprendere lo Stato Oligomerico di MmpL3
È interessante notare che gli studi hanno mostrato che MmpL3 esiste come un'unità singola (monomero) piuttosto che in gruppi, il che è diverso da molte altre proteine simili. Ad esempio, proteine come AcrB, conosciute per trasportare più farmaci, si trovano di solito come trimeri. Al contrario, MmpL3 sembra funzionare efficacemente come un monomero. Tuttavia, i ricercatori hanno ipotizzato che questa proteina possa a volte formare coppie (dimeri).
Per indagare ulteriormente, i ricercatori hanno utilizzato varie tecniche per analizzare MmpL3 sia da M. smegmatis che da M. tuberculosis. Hanno scoperto che MmpL3 è presente come dimeri in diversi ambienti, anche se sono stati identificati anche alcuni singoli. La combinazione dei dati suggerisce che mentre MmpL3 può raggrupparsi, queste coppie non sono tenute insieme in modo molto forte e la presenza di lipidi può aiutare a stabilizzare questi dimeri.
Clonazione ed Espressione delle Proteine MmpL3
Per studiare MmpL3 in dettaglio, gli scienziati hanno clonato ed espresso versioni della proteina MmpL3 sia da M. smegmatis che da M. tuberculosis. Questo processo ha comportato la creazione di diverse forme della proteina, alcune più lunghe e altre più corte. L'obiettivo era produrre abbastanza di queste proteine per ulteriori esperimenti.
Dopo aver fatto crescere i batteri e indotti a produrre la proteina, i ricercatori hanno raccolto e congelato le cellule per un uso successivo. Quando erano pronti, hanno rotto le cellule per estrarre le proteine, usando detergenti per separare MmpL3 da altri componenti cellulari.
Purificazione delle Proteine MmpL3
Il passo successivo era purificare le proteine MmpL3 usando varie tecniche. Le proteine sono state sciolte in un buffer specifico e mescolate con un detergente per estrarle dalla membrana. Il liquido è stato poi centrifugato ad alta velocità per rimuovere materiali indesiderati.
Hanno usato un metodo che coinvolge resina di nichel per catturare le proteine MmpL3 in base alla loro estremità taggata, permettendo di lavare via impurità. Dopo diversi lavaggi, i ricercatori sono stati in grado di eludere le proteine purificate, concentrandole per ulteriori studi.
Ricostituzione in Sistemi di Membrana
Per studiare come MmpL3 si comporta in un ambiente simile a una membrana, i ricercatori hanno ricostituito le proteine purificate in membrane artificiali chiamate nanodischi. Questi nanodischi imitano la membrana cellulare, permettendo una rappresentazione più accurata del comportamento di MmpL3.
Durante questo processo, le proteine sono state mescolate con lipidi specifici e lasciate per tutta la notte per consentire la formazione di complessi stabili. I nanodischi contenenti MmpL3 sono poi stati isolati e purificati per studiarne le proprietà.
Analisi della Struttura della Proteina
I ricercatori hanno usato diverse tecniche per confermare la struttura di MmpL3 e capire il suo comportamento sia in forme monomeriche che dimeriche. Hanno condotto analisi usando metodi come SDS-PAGE, che hanno permesso di vedere diverse forme di proteina in base al loro peso.
Ulteriori esperimenti usando PAGE nativa e ultracentrifugazione analitica hanno confermato che MmpL3 esiste in stati monomerici e dimerici quando ricostituito nei nanodischi. I ricercatori hanno anche notato come gli stati oligomerici di MmpL3 possano dipendere dall'ambiente lipidico.
Tecniche di Caratterizzazione Avanzata
Per ottenere più informazioni sugli stati oligomerici, i ricercatori hanno impiegato la spettrometria di massa nativa. Questo metodo ha permesso di studiare la proteina in condizioni più vicine al suo ambiente naturale, fornendo informazioni su come MmpL3 esista in forme diverse.
I risultati hanno indicato che la proteina MmpL3 si separa in due popolazioni principali, una contenente principalmente monomeri e l'altra prevalentemente dimeri. I dati supportano l'idea che MmpL3 possa esistere in entrambi gli stati, influenzati dalle condizioni in cui si trova.
Microscopia Elettronica Criogenica
La microscopia elettronica criogenica è stata un'altra tecnica utilizzata per visualizzare la proteina MmpL3 all'interno dei nanodischi. Questo metodo ha permesso ai ricercatori di catturare immagini della proteina nel suo ambiente simile a quello naturale, aiutandoli a distinguere tra forme monomeriche e dimeriche in base alle differenze di densità osservate nelle immagini.
Attraverso la modellazione strutturale e le classificazioni sperimentali, i ricercatori sono riusciti a visualizzare entrambe le forme della proteina. Le differenze di densità suggerivano che la forma dimerica avesse un'organizzazione strutturale più prominente rispetto alla forma monomerica.
Simulazioni di Dinamica Molecolare
I ricercatori hanno anche utilizzato simulazioni di dinamica molecolare per esplorare ulteriormente le interazioni tra MmpL3 e i lipidi circostanti. Queste simulazioni hanno fornito informazioni su come MmpL3 potrebbe formare dimeri e su come l'ambiente lipidico influisca sulla sua struttura e stabilità.
Le simulazioni hanno indicato interazioni tra regioni specifiche di MmpL3, in particolare tra aree dei domini transmembrana e periplasmici. Residui polari e carichi di entrambi i monomeri sembravano partecipare alla formazione di legami idrogeno, suggerendo un potenziale meccanismo per la formazione di dimeri.
Inoltre, le simulazioni hanno identificato specifici siti di legame per lipidi attorno a MmpL3, indicando che questi lipidi potrebbero avere un ruolo cruciale nel stabilizzare la struttura della proteina e facilitare la sua funzione.
Conclusione e Direzioni Future
In generale, i risultati suggeriscono che MmpL3 è una proteina essenziale per la sopravvivenza delle specie micobatteriche e un obiettivo promettente per nuovi trattamenti contro la tubercolosi. Comprendere come esista come monomero o dimero - e i fattori che influenzano questi stati - potrebbe portare allo sviluppo di metodi che disturbano specificamente la sua funzione.
Le ricerche future potrebbero concentrarsi sulla determinazione dei meccanismi esatti dietro le interazioni di MmpL3 con i lipidi e le implicazioni dei suoi stati oligomerici nella progettazione di farmaci. Le intuizioni ottenute da questi studi potrebbero offrire una migliore comprensione di come combattere le infezioni causate da micobatteri e contribuire allo sviluppo di nuove strategie terapeutiche.
Titolo: The Mycobacterium lipid transporter MmpL3 is dimeric in detergent solution, SMALPs and reconstituted nanodiscs
Estratto: The mycobacterial membrane protein large 3 (MmpL3) transports key precursor lipids to the outer membrane of Mycobacterium species. Multiple structures of MmpL3 from both M. tuberculosis and M. smegmatis in various conformational states indicate that the protein is both structurally and functionally monomeric. However, most other resistance, nodulation and cell division (RND) transporters structurally characterised to date are either dimeric or trimeric. Here we present an in depth biophysical and computational analysis revealing that MmpL3 from M. smegmatis exists as a dimer in a variety of membrane mimetic systems (SMALPs, detergent-based solution and nanodiscs). Sucrose gradient separation of MmpL3 populations from M. smegmatis, reconstituted into nanodiscs, identified monomeric and dimeric populations of the protein using laser induced liquid bead ion desorption (LILBID), a native mass spectrometry technique. Preliminary cryo-EM analysis confirmed that MmpL3 forms physiological dimers. Untargeted lipidomics experiments on membrane protein co-purified lipids revealed PE and PG lipid classes were predominant. Molecular dynamics simulations, in the presence of physiologically-relevant lipid compositions revealed the likely dimer interface.
Autori: Bernadette Byrne, S. Cioccolo, J. Barritt, N. Pollock, Z. Hall, J. Babuta, P. Sridhar, A. Just, N. Morgner, T. R. Dafforn, I. Gould
Ultimo aggiornamento: 2024-05-07 00:00:00
Lingua: English
URL di origine: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.05.06.592688
Fonte PDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.05.06.592688.full.pdf
Licenza: https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/
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