Avanzamenti nella Proteomica Spaziale: Uno Studio Comparativo
Questo studio confronta metodi per analizzare le proteine nei campioni di tessuto.
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Indice
- Metodi utilizzati nell'Omics Spaziale
- Proteomica nell'analisi spaziale
- Tecniche chiave nella proteomica spaziale
- Vantaggi della proteomica spaziale
- Confronto tra diversi metodi
- Design dello studio
- Approcci sperimentali
- Risultati dello studio comparativo
- Effetto della variabilità del tessuto
- Caratterizzazione delle caratteristiche del tessuto
- Visualizzazione dei dati del proteoma
- Scoprire schemi nascosti
- Scoprire i cluster di proteine
- Conclusioni e direzioni future
- L'importanza delle pratiche di ricerca etiche
- Fonte originale
- Link di riferimento
L'omics spaziale è un campo della scienza che studia come sono strutturati e funzionano i tessuti, osservando molti biomolecole contemporaneamente. Questa tecnica aiuta gli scienziati a vedere come diverse cellule interagiscono tra di loro sia nei tessuti sani che in quelli malati. Grazie a tecniche avanzate di imaging e sequenziamento, i ricercatori possono comprendere meglio i microambienti dei tessuti.
Metodi utilizzati nell'Omics Spaziale
Gli strumenti utilizzati nell'omics spaziale includono tecniche come la trascrittomica spaziale Visium, MERFISH, Slide-Seq e altre. Questi metodi aiutano a misurare l'RNA, che gioca un ruolo chiave nell'espressione dei geni nelle cellule. Però, mentre queste tecniche sono valide per mostrare i livelli di RNA, non riescono a misurare direttamente le proteine, che sono cruciali per molte funzioni cellulari.
Proteomica nell'analisi spaziale
Per analizzare le proteine nei tessuti, gli scienziati spesso usano metodi basati su anticorpi come l'immunoistochimica, GeoMx e la Spettrometria di massa. Queste tecniche possono dare dettagli sui quantitativi di proteine su scala molto fine. Tuttavia, dipendono dalla qualità degli anticorpi disponibili, il che può a volte limitarne l'efficacia.
Un metodo alternativo utilizza la spettrometria di massa, che può misurare migliaia di proteine in un singolo campione di tessuto. I recenti progressi hanno reso possibile studiare le proteine a livello di singole cellule, il che è un grande passo avanti. I miglioramenti nel modo in cui le proteine sono etichettate e separate hanno anche aiutato gli scienziati ad analizzare molti campioni più rapidamente.
Tecniche chiave nella proteomica spaziale
Per la proteomica spaziale, gli scienziati iniziano spesso isolando i campioni usando tecniche come la microdissezione laser. Dopo aver isolato i campioni di tessuto, possono scomporre le proteine in pezzi più piccoli per l'analisi. Il sistema nanoPOTS è un approccio moderno che consente una migliore profilazione delle proteine a risoluzione fine.
Un'altra tecnica emergente è la Deep Visual Proteomics, che combina imaging, apprendimento automatico e spettrometria di massa. Questo metodo consente studi molto dettagliati delle proteine a livello di singola cellula.
Vantaggi della proteomica spaziale
La proteomica spaziale sta guadagnando popolarità perché offre una vista dettagliata dell'organizzazione dei tessuti. Scomponendo i tessuti in sezioni più piccole o "pixel", i ricercatori possono analizzare i quantitativi di proteine usando varie strategie. Questo include metodi sia privi di etichetta che quelli che utilizzano etichette chimiche per identificare le proteine.
Anche se i metodi privi di etichetta sono semplici ed efficaci, potrebbero mancare della velocità necessaria per studi più ampi. D'altra parte, le tecniche etichettate possono elaborare molti campioni rapidamente, ma a volte compromettono la dettagliatezza delle informazioni.
Confronto tra diversi metodi
Quando si confrontano diversi metodi di misurazione delle proteine, i ricercatori spesso cercano di capire quanti proteine possono rilevare, la velocità del metodo e quanto sono accurati i risultati. In uno studio recente, i ricercatori hanno analizzato da vicino due metodi: l'approccio privo di etichetta e uno che utilizzava il tagging isobarico. Hanno scoperto che la tecnica priva di etichetta forniva generalmente una copertura più profonda delle proteine e una quantificazione più accurata.
Design dello studio
Per confrontare equamente le prestazioni di questi due approcci, i ricercatori hanno raccolto campioni di tessuto pancreatico da un donatore umano sano. Si sono concentrati su diverse aree del tessuto, in particolare le regioni delle isole e quelle circostanti ghiandolari. Utilizzando una dimensione pixel specifica, cercavano di bilanciare il successo della raccolta con le variazioni naturali nel tessuto.
Approcci sperimentali
Nei loro esperimenti, i ricercatori hanno utilizzato tre flussi di lavoro principali: il metodo privo di etichetta, TMT-MS2 e TMT-MS3. Ogni approccio ha i suoi punti di forza e debolezza. Ad esempio, mentre il metodo privo di etichetta ha fornito la copertura più approfondita delle proteine, i metodi TMT hanno consentito un maggiore throughput, permettendo di elaborare più campioni contemporaneamente.
I ricercatori hanno analizzato le proteine dai pixel di tessuto per comprendere i punti di forza e le limitazioni di ciascun metodo. Hanno scoperto che, sebbene le tecniche senza etichetta fornissero misurazioni più accurate, i metodi TMT erano migliori per studi che richiedevano di esaminare molti campioni in breve tempo.
Risultati dello studio comparativo
I risultati dello studio hanno indicato che il metodo privo di etichetta ha rilevato un numero maggiore di proteine rispetto ai metodi TMT. In termini di accuratezza, l'approccio privo di etichetta ha anche mostrato risultati più affidabili attraverso i diversi campioni.
In generale, entrambi i metodi TMT hanno offerto buone concordanze nell'identificare le proteine presenti in quantità variabili tra i tipi di tessuto. Interessante, mentre ci si aspettava che TMT-MS3 migliorasse l'accuratezza, non ha superato significativamente TMT-MS2.
Effetto della variabilità del tessuto
A causa della natura del tessuto studiato, che presentava un mix di tipi cellulari, era importante controllare per la variabilità biologica. Selezionando pixel specifici da aree ben definite del tessuto, i ricercatori sono riusciti a minimizzare le variazioni impreviste. Questo li ha aiutati a produrre dati più consistenti e affidabili.
Caratterizzazione delle caratteristiche del tessuto
Dopo aver valutato gli aspetti tecnici dei metodi di quantificazione, i ricercatori hanno utilizzato i dati per esplorare le caratteristiche del tessuto. Employando tecniche di clustering, sono stati in grado di categorizzare i pixel in gruppi in base alla composizione cellulare dei tessuti. Questo processo ha rivelato due cluster principali: uno rappresentante le cellule acinose e l'altro rappresentante le cellule delle isole.
Visualizzazione dei dati del proteoma
Per visualizzare i dati spaziali, i ricercatori hanno impiegato tecniche di riduzione dimensionale che semplificano la comprensione delle complesse relazioni tra i diversi tipi cellulari. Questo ha aiutato a chiarire quanto fossero strettamente correlate le diverse aree del tessuto in termini di presenza di proteine.
Lo studio ha anche evidenziato l'importanza di marcatori ben noti per identificare i vari tipi cellulari presenti nel tessuto. Questo processo ha comportato l'abbinamento delle proteine identificate a marcatori precedentemente documentati, rafforzando l'accuratezza dei risultati di clustering.
Scoprire schemi nascosti
Uno dei principali vantaggi dell'analisi spaziale profonda è la sua capacità di scoprire schemi nascosti che potrebbero non essere visibili attraverso una valutazione morfologica normale. Utilizzando algoritmi specializzati, i ricercatori sono stati in grado di identificare gruppi di proteine che mostravano schemi di abbondanza simili attraverso il tessuto.
Scoprire i cluster di proteine
Nella loro analisi, i ricercatori hanno identificato più cluster di proteine che erano arricchiti in cellule delle isole o acinose. Sono stati in grado di collegare proteine specifiche a certe caratteristiche del tessuto, consentendo una migliore comprensione della biologia sottostante.
Analizzando attentamente le proteine nel contesto delle loro posizioni spaziali, sono riusciti a trarre conclusioni su come i diversi tipi cellulari funzionino insieme nell'ambiente del tessuto. Questo ha incluso intuizioni su come varie proteine contribuiscano a funzioni come la segnalazione cellulare e il metabolismo.
Conclusioni e direzioni future
Lo studio comparativo dei diversi metodi proteomici sottolinea l'importanza di scegliere l'approccio giusto in base agli obiettivi di ricerca. I metodi privi di etichetta eccellono in profondità e accuratezza, rendendoli adatti per studi che si concentrano su campioni meno numerosi con dati più complessi. Nel frattempo, i metodi basati su TMT offrono velocità ed efficienza, che possono essere preziose in progetti su larga scala.
Con la continua crescita del campo dell'omics spaziale, combinare tecniche di imaging tradizionali con la profilazione proteomica moderna probabilmente fornirà nuove intuizioni sulle funzioni dei tessuti in salute e malattia. Comprendere queste dinamiche sarà cruciale per esplorare nuove vie per la ricerca medica e potenziali terapie per varie malattie.
Inoltre, i continui miglioramenti nella tecnologia e nella metodologia miglioreranno ulteriormente le capacità della proteomica spaziale, consentendo ai ricercatori di affrontare domande biologiche sempre più complesse. Questi progressi potrebbero anche portare alla scoperta di nuovi biomarcatori o target terapeutici, contribuendo infine a diagnosi e trattamenti migliori negli ambienti clinici.
L'importanza delle pratiche di ricerca etiche
Nella conduzione di ricerche che coinvolgono tessuti umani, le considerazioni etiche giocano un ruolo vitale. I ricercatori devono attenersi a linee guida rigorose quando ottengono e processano campioni. Garantire il consenso informato e seguire le normative aiuta a proteggere i donatori e mantiene l'integrità del processo di ricerca. Questo quadro etico è essenziale per promuovere la fiducia e far progredire la conoscenza scientifica in modo responsabile.
Mantenendo questi valori, il campo dell'omics spaziale può continuare a progredire e contribuire in modo significativo alla nostra comprensione della biologia e della medicina.
Titolo: Proteome-scale tissue mapping using mass spectrometry based on label-free and multiplexed workflows
Estratto: Multiplexed bimolecular profiling of tissue microenvironment, or spatial omics, can provide deep insight into cellular compositions and interactions in healthy and diseased tissues. Proteome-scale tissue mapping, which aims to unbiasedly visualize all the proteins in a whole tissue section or region of interest, has attracted significant interest because it holds great potential to directly reveal diagnostic biomarkers and therapeutic targets. While many approaches are available, however, proteome mapping still exhibits significant technical challenges in both protein coverage and analytical throughput. Since many of these existing challenges are associated with mass spectrometry-based protein identification and quantification, we performed a detailed benchmarking study of three protein quantification methods for spatial proteome mapping, including label-free, TMT-MS2, and TMT-MS3. Our study indicates label-free method provided the deepest coverages of [~]3500 proteins at a spatial resolution of 50 {micro}m and the highest quantification dynamic range, while TMT-MS2 method holds great benefit in mapping throughput at >125 pixels per day. The evaluation also indicates both label-free and TMT-MS2 provide robust protein quantifications in identifying differentially abundant proteins and spatially co-variable clusters. In the study of pancreatic islet microenvironment, we demonstrated deep proteome mapping not only enables the identification of protein markers specific to different cell types, but more importantly, it also reveals unknown or hidden protein patterns by spatial co-expression analysis.
Autori: Ying Zhu, Y. Kwon, J. Woo, F. Yu, S. M. Williams, L. M. Markillie, R. J. Moore, E. S. Nakaysu, J. Chen, M. Campbell-Thompson, C. E. Mathews, A. I. Nesvizhskii, W.-J. Qian
Ultimo aggiornamento: 2024-07-10 00:00:00
Lingua: English
URL di origine: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.03.04.583367
Fonte PDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.03.04.583367.full.pdf
Licenza: https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/
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