Indagare la separazione di fase liquido-liquido nelle proteine intrinsecamente disordinate
Uno studio rivela come la separazione di fase influisca sulla struttura delle proteine disordinate.
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Indice
- Proteine Intrinsecamente Disordinate (IDP)
- Interazioni intermolecolari
- Evidenza Sperimentale della Separazione di Fase
- Altri Metodi di Studio
- Indagare la Separazione di Fase nella Proteina FUS
- Preparazione e Metodi
- Misurazioni NMR
- Risultati e Osservazioni
- Conclusione
- Implicazioni e Direzioni Future
- Fonte originale
La Separazione di fase liquido-liquido (LLPS) è un processo che avviene nelle soluzioni di biopolimeri dove alcune proteine possono separarsi in gocce dense. Questo fenomeno è importante per le funzioni biologiche ed è un argomento di ricerca in corso. Anche se in passato gli scienziati hanno studiato la LLPS nelle proteine che cristallizzano, le ricerche recenti si sono concentrate su proteine disordinate per natura o con domini disordinati.
Proteine Intrinsecamente Disordinate (IDP)
Le proteine intrinsecamente disordinate (IDP) non hanno una struttura stabile. Questo significa che possono assumere molte forme quando sono molecole singole, assomigliando a una spirale casuale. Interessantemente, le IDP possono diventare strutturate quando si legano ad altre proteine, formando complessi. Possono anche organizzarsi in strutture specifiche come le fibrille di amiloide, che sono lunghe formazioni simili a thread. La creazione di struttura nei complessi o nelle fibrille è influenzata da come le molecole interagiscono tra di loro.
Quando avviene la separazione di fase, le IDP possono cambiare la loro struttura o come preferiscono essere modellate. Questo perché l'area in cui le proteine sono concentrate aumenta, portando a più interazioni tra di esse.
Interazioni intermolecolari
Alcuni ricercatori hanno suggerito che il modo in cui le proteine interagiscono tra loro in una miscela è simile a come interagiscono all'interno di se stesse. Quindi, sostengono che non dovremmo aspettarci grandi cambiamenti nelle forme delle IDP quando avviene la separazione di fase. Tuttavia, c'è un controargomento. Per esempio, quando le IDP formano fibrille di amiloide, tipicamente creano strutture con sezioni organizzate chiamate β-fogli. Questi β-fogli allineano le stesse sequenze di amminoacidi delle molecole vicine, il che consente legami intermolecolari più forti.
Alcune IDP possono anche subire separazione di fase e formare comunque fibrille di amiloide nel tempo. Questo solleva la questione se la separazione di fase sia uno stato temporaneo prima che si formino le strutture fibrillari più stabili. Infatti, alcune proteine leganti l'RNA note per avere regioni a bassa complessità mostrano entrambi i comportamenti.
Se le interazioni che avvengono nello stato separato di fase sono simili a quelle nelle fibrille, ci si aspetterebbe che alcune regioni delle IDP adottino forme più strutturate come i β-fogli quando avviene la separazione di fase.
Evidenza Sperimentale della Separazione di Fase
Per indagare come la LLPS influisca sulla struttura delle IDP, i ricercatori utilizzano principalmente la spettroscopia di risonanza magnetica nucleare (NMR). Sono stati condotti studi NMR su soluzioni proteiche separate in fase da diversi gruppi di ricerca. Tuttavia, sorgono sfide a causa dell'alta viscosità delle gocce, che influisce sulla qualità dei segnali NMR. Nonostante queste sfide, gli scienziati hanno sviluppato metodi per ottenere dati utili.
Gli studi con NMR su IDP in stati separati di fase mostrano che, mentre il movimento di queste proteine rallenta all'interno delle dense gocce, alcuni movimenti locali rimangono abbastanza veloci da essere catturati dalle tecniche NMR. Tipicamente, gli spostamenti chimici osservati in questi studi somigliano a quelli degli stati non strutturati, suggerendo che ci sia poca struttura continua.
Tuttavia, alcune proteine, come la proteina tau, mostrano un aumento delle forme strutturate in condizioni di separazione di fase. Altre ricerche hanno catturato evidenze di proprietà strutturali o dinamiche distinte in proteine che subiscono LLPS.
Altri Metodi di Studio
La risonanza paramagnetica elettronica (EPR) è un'altra tecnica utilizzata per studiare le IDP. L'EPR misura come si comportano i giri degli elettroni in ambienti diversi. Per esempio, studi hanno dimostrato che alcune IDP diventano più compatte quando si trovano in stati separati di fase rispetto a quando sono in soluzioni omogenee.
Tecniche di NMR a stato solido vengono anche impiegate per esaminare le strutture delle fibrille proteiche che sorgono dalla separazione di fase, fornendo informazioni su come queste strutture si formano nel tempo.
In aggiunta, tecniche computazionali vengono utilizzate per modellare come si comportano le IDP negli stati separati di fase. Alcune simulazioni suggeriscono che certe conformazioni rimangono inalterate nello stato separato di fase.
Studi biochimici mostrano anche legami tra il comportamento delle IDP nelle gocce separate di fase e nelle fibrille, indicando che specifiche regioni di queste proteine mantengono caratteristiche simili in entrambi gli stati.
Indagare la Separazione di Fase nella Proteina FUS
Questa ricerca si concentra sul dominio LC della proteina FUS, un noto IDP. FUS-LC viene studiato utilizzando vari schemi di etichettatura isotopica e strutture. I campioni sono preparati in modo tale da consentire la separazione di fase a temperatura ambiente.
Sono state testate temperature diverse per determinare il punto in cui FUS-LC subisce separazione di fase. Gli esperimenti hanno dimostrato che questa temperatura cambia in base alla composizione specifica della soluzione. Anche dopo il congelamento, le gocce separate per fusione rimangono stabili e mantengono le loro dimensioni originali.
Preparazione e Metodi
Per gli esperimenti, specifici costrutti di FUS-LC sono stati espressi e purificati in laboratorio. Il processo ha coinvolto la crescita di colture di batteri che producono la proteina FUS-LC, seguita dalla rottura di queste cellule ed estrazione della proteina. La purezza della proteina è stata garantita da una serie di passaggi di lavaggio e filtraggio.
Dopo aver ottenuto le proteine, i ricercatori hanno preparato soluzioni per studi NMR. Queste soluzioni sono state manipolate in condizioni che promuovessero la separazione di fase. Tecniche di congelamento rapido sono state poi utilizzate per solidificare i campioni per l'analisi.
Misurazioni NMR
Le misurazioni NMR sono state condotte in condizioni controllate per comprendere come si comporta FUS-LC sia negli stati omogenei che in quelli separati di fase. Gli spettri NMR ottenuti sono stati confrontati per esaminare eventuali differenze o somiglianze nella struttura molecolare di FUS-LC.
L'analisi ha mostrato che gli spostamenti chimici nello stato separato di fase non deviano drasticamente da quelli nello stato omogeneo. Questo suggerisce che non ci siano cambiamenti significativi nella forma o struttura generale della proteina quando transita tra questi stati.
Risultati e Osservazioni
Gli esperimenti hanno portato a spettri NMR quasi identici sia per gli stati separati di fase che per quelli omogenei. Qualsiasi differenza osservata era minima e non indicava cambiamenti sostanziali nelle distribuzioni conformazionali. I risultati implicano che la LLPS in IDP come FUS-LC non porta a grandi cambiamenti strutturali in queste proteine.
Piccole variazioni osservate nei dati NMR potrebbero significare spostamenti minori nelle popolazioni di specifiche conformazioni, ma non suggeriscono un cambiamento fondamentale nella struttura proteica.
Conclusione
In sintesi, la ricerca indica che la separazione di fase liquido-liquido nelle IDP non causa cambiamenti significativi nella forma di queste proteine. Anche se alcune interazioni possono verificarsi nello stato separato di fase, queste non alterano drasticamente lo stato conformazionale delle proteine. Lo studio contribuisce a una comprensione più chiara di come si comportano le IDP sotto separazione di fase, con potenziali implicazioni per funzioni e processi biologici.
Implicazioni e Direzioni Future
I risultati di questa ricerca potrebbero avere implicazioni più ampie nella comprensione di come le proteine funzionano all'interno delle cellule, in particolare nei processi legati alle malattie. Gli studi futuri potrebbero costruire su questa base per esplorare i ruoli della LLPS in vari contesti biologici, come le formazioni di strutture cellulari.
Inoltre, comprendere come le proteine interagiscono e cambiano all'interno delle gocce separate di fase potrebbe portare a nuove intuizioni sui meccanismi delle malattie neurodegenerative, dove l'aggregazione delle proteine gioca un ruolo critico.
Complessivamente, l'esplorazione continua dei comportamenti di separazione di fase nelle IDP arricchirà il campo della biologia e potrebbe rivelare nuove strade per interventi terapeutici.
Titolo: Conformations of a Low-Complexity Protein in Homogeneous and Phase-Separated Frozen Solutions
Estratto: Solutions of the intrinsically disordered, low-complexity domain of the FUS protein (FUS-LC) undergo liquid-liquid phase separation (LLPS) below temperatures TLLPS in the 20-40{degrees} C range. To investigate whether local conformational distributions are detectably different in the homogeneous and phase-separated states of FUS-LC, we performed solid state nuclear magnetic resonance (ssNMR) measurements on solutions that were frozen on sub-millisecond time scales after equilibration at temperatures well above (50{degrees} C) or well below (4{degrees} C) TLLPS. Measurements were performed at 25 K with signal enhancements from dynamic nuclear polarization. Crosspeak patterns in two-dimensional (2D) ssNMR spectra of rapidly frozen solutions in which FUS-LC was uniformly 15N,13C-labeled were found to be nearly identical for the two states. Similar results were obtained for solutions in which FUS-LC was labeled only at Thr, Tyr, and Gly residues, as well as solutions of a FUS construct in which five specific residues were labeled by ligation of synthetic and recombinant fragments. These experiments show that local conformational distributions are nearly the same in the homogeneous and phase-separated solutions, despite the much greater protein concentrations and more abundant intermolecular interactions within phase-separated, protein-rich "droplets". Comparison of the experimental results with simulations of the sensitivity of 2D crosspeak patterns to an enhanced population of {beta}-strand-like conformations suggests that changes in conformational distributions are no larger than 5-10%. Statement of SignificanceLiquid-liquid phase separation (LLPS) in solutions of proteins with intrinsically disordered domains has attracted recent attention because of its relevance to multiple biological processes and its inherent interest from the standpoint of protein biophysics. The high protein concentrations and abundant intermolecular interactions within protein-rich, phase-separated "droplets" suggests that conformational distributions of intrinsically disordered proteins may differ in homogeneous and phase-separated solutions. To investigate whether detectable differences exist, we performed experiments on the low-complexity domain of the FUS protein (FUS-LC) in which FUS-LC solutions were first equilibrated at temperatures well above or well below their LLPS transition temperatures, then rapidly frozen and examined at very low temperatures by solid state nuclear magnetic resonance (ssNMR) spectroscopy. The ssNMR data for homogeneous and phase-separated frozen solutions of FUS-LC were found to be nearly identical, showing that LLPS is not accompanied by substantial changes in the local conformational distributions of this intrinsically disordered protein.
Autori: Robert Tycko, C. B. Wilson, M. Lee, W.-M. Yau
Ultimo aggiornamento: 2024-07-25 00:00:00
Lingua: English
URL di origine: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.07.25.605144
Fonte PDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.07.25.605144.full.pdf
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Modifiche: Questa sintesi è stata creata con l'assistenza di AI e potrebbe presentare delle imprecisioni. Per informazioni accurate, consultare i documenti originali collegati qui.
Si ringrazia biorxiv per l'utilizzo della sua interoperabilità ad accesso aperto.