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# Biologie# Biologie cellulaire

Nouvelles idées sur la dynamique nucléaire dans les cellules

Des chercheurs dévoilent des progrès dans l'étude du comportement nucléaire pendant le développement des cellules.

Amanda A Amodeo, Y. Shindo, S. Balachandra

― 7 min lire


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Le noyau est une partie super importante d'une cellule qui change de différentes manières à mesure que la cellule grandit, vieillit ou tombe malade. Il joue un rôle clé dans la gestion de ce qui se passe à l'intérieur de la cellule. Un des gros gardiens du noyau, c'est le complexe de pores nucléaires (NPC). Ce complexe permet à certaines grosses molécules d'entrer et de sortir du noyau, agissant comme une porte entre le noyau et le reste de la cellule.

Le NPC est composé d'environ 30 protéines différentes qu'on appelle Nucléoporines. Ces protéines bossent ensemble pour créer une barrière et un canal qui sépare le contenu du noyau du cytoplasme. Des récepteurs de transport, comme Importin-β, aident à déplacer divers matériaux, y compris des protéines et de l'ARN, à travers la membrane nucléaire. Mais on ne sait pas encore beaucoup sur comment le transport à l'intérieur et à l'extérieur du noyau change quand une cellule se développe ou mûrit, notamment dans différentes conditions.

Pour étudier ça, les scientifiques utilisent des marqueurs fluorescents spéciaux qui se fixent aux protéines à l'intérieur du noyau. Ces marqueurs aident à visualiser et analyser le noyau et les molécules qu'il contient. Les marqueurs communs incluent ceux fixés aux protéines qui composent la chromatine ou aux signaux de localisation nucléaire. Ces marqueurs peuvent facilement identifier et séparer le noyau quand on les regarde dans des arrangements plats, comme une seule couche de cellules. Cependant, regarder les noyaux dans des tissus plus épais et complexes peut être compliqué. Dans ces cas-là, les signaux des cellules voisines peuvent se chevaucher, rendant difficile de distinguer les noyaux individuels.

Nouveaux outils pour la visualisation

Pour résoudre ces problèmes, les chercheurs ont développé de nouveaux marqueurs nucléaires basés sur les nucléoporines et les récepteurs de transport. Ces marqueurs peuvent aider à améliorer la capacité à visualiser et séparer les noyaux individuels dans des tissus complexes. En étiquetant les protéines Nup96 et Importin-β avec des étiquettes fluorescentes chez les mouches à fruits, les scientifiques peuvent créer de meilleures images qui montrent clairement les noyaux sans interférence des signaux voisins.

Quand ils ont testé ces marqueurs sur différents types de tissus de mouches à fruits, ils ont montré des signaux forts et clairs au niveau de la membrane nucléaire. Ils ont bien fonctionné dans divers types de cellules, y compris celles dans les embryons et les ovaires. Contrairement aux anciens marqueurs, ces nouvelles étiquettes ne causent pas de surcharge des protéines étiquetées, ce qui signifie qu'elles aident à créer une image plus précise de ce qui se passe à l'intérieur de la cellule.

Amélioration de la segmentation nucléaire

Les chercheurs se sont concentrés sur la chambre à œufs de la mouche à fruits, qui contient plusieurs cellules étroitement empaquetées. Le défi dans ces tissus, c'est que les signaux des marqueurs fluorescents peuvent se chevaucher, rendant difficile de dire où un noyau se termine et où un autre commence. Cependant, les nouveaux marqueurs ont permis une segmentation claire des noyaux individuels dans des zones où les anciens marqueurs d'histone avaient échoué.

En imager des cellules qui migrent ensemble, appelées cellules de bord, les nouveaux marqueurs ont également amélioré la visualisation de chaque noyau individuel. La capacité de mieux voir et différencier ces noyaux ouvre de nouvelles possibilités pour étudier comment les cellules se comportent dans des environnements complexes.

Suivi de la dynamique nucléaire

Après avoir confirmé l'efficacité des nouveaux marqueurs, les scientifiques ont commencé à les utiliser pour étudier comment le transport nucléaire change pendant le développement cellulaire. Ils ont examiné comment le marqueur Nup96 changeait dans les embryons précoces pendant la division cellulaire. Ils ont remarqué que le signal Nup96 diminuait au niveau de la membrane nucléaire lorsque les cellules entraient en mitose, mais il restait toujours associé à des structures importantes pour le processus de division de la cellule.

En plus de ces changements, les chercheurs ont observé que des marqueurs Nup96 apparaissaient également dans le cytoplasme, probablement dans un sous-domaine du réticulum endoplasmique. Ce comportement persistait pendant la division cellulaire, mais était moins visible pendant les stages plus tardifs de la division. Ces observations suggèrent qu'il y a différentes couches d'organisation en jeu et que comprendre comment ces structures changent pendant le développement est crucial.

Changements pendant l'oogenèse

La recherche a également mis en lumière le comportement des nucléoporines et des récepteurs de transport durant le développement des Ovocytes chez la mouche à fruits. L'étude a trouvé que les marqueurs Nup96 et Importin-β créaient des motifs distincts dans le cytoplasme de l'ovocyte. Les signaux d'Importin-β étaient présents dans toutes les cellules nourricières, tandis que Nup96 était principalement localisé là où il était directement connecté à l'ovocyte.

Au cours des étapes de développement de l'ovocyte, les deux marqueurs se comportaient de manière similaire, s'accumulant dans le cytoplasme de l'ovocyte au début puis changeant de taille et de nombre à mesure que le développement progressait. Ce comportement suggère qu'il y a des moments spécifiques où ces protéines doivent être présentes en plus grande quantité.

Dynamique pendant l'embryogénèse précoce

Le focus s'est ensuite déplacé vers l'embryogenèse précoce, où il y a une forte demande pour le transport nucléaire. À l'étape du blastoderme syncytial, les chercheurs ont observé comment les marqueurs Nup96 changeaient pendant les divisions rapides. Ils ont enregistré une réduction significative des niveaux de Nup96 au fil du temps.

La diminution des signaux Nup96 au niveau de la membrane nucléaire durant ces étapes suggère qu'il y a des rôles essentiels pour les protéines produites pendant l'oogenèse, surtout parce qu'elles sont nécessaires en plus grande quantité pour les cellules qui se divisent rapidement.

Les chercheurs voulaient aussi examiner si les changements dans les niveaux de Nup96 à la membrane nucléaire étaient liés aux altérations des pools cytoplasmiques de nucléoporines pendant le développement. Leurs résultats ont indiqué que, bien que certaines nucléoporines puissent aider à maintenir les niveaux à la membrane, elles peuvent devenir moins abondantes durant les divisions rapides.

Conclusion

Cette recherche fournit de nouvelles méthodes pour comprendre comment le noyau et ses composants travaillent ensemble durant le développement cellulaire. Les marqueurs NE étiquetés de manière endogène permettent aux scientifiques de mieux visualiser et segmenter les noyaux cellulaires individuels dans des tissus complexes. En appliquant ces outils, les chercheurs peuvent obtenir des informations sur la dynamique des composants nucléaires à différents stades de développement, y compris l'oogenèse et l'embryogenèse.

L'étude contribue à une connaissance précieuse sur la façon dont la machinerie de transport nucléaire s'adapte durant les périodes de croissance et de développement. À mesure que les chercheurs continuent à explorer comment ces changements affectent les fonctions cellulaires, d'autres découvertes devraient émerger sur l'interaction entre le transport nucléaire et divers processus biologiques.


Ces infos mettent en avant l'importance de la recherche continue en biologie cellulaire, surtout concernant comment les noyaux fonctionnent et changent avec le temps. Comprendre ces processus est crucial pour dévoiler les implications plus larges pour la biologie du développement et les applications médicales potentielles.

Source originale

Titre: Visualizing developmental dynamics of nuclear morphology and transport machinery in Drosophila

Résumé: Communication between the cytoplasm and the nucleus requires a continuous exchange of molecules across the nuclear envelope (NE). The nuclear pore complex (NPC) is the gateway embedded in the NE through which cargo moves, while transport receptors mediate the passage of macromolecules through the NPC. Although their essential role as the components of the nuclear transport machinery has been extensively studied, how these factors respond to developmental and environmental cues has been underexplored. Here we tag the nucleoporin Nup96 and the transport receptor Imp{beta} with mEGFP and mScarlet-I at their endogenous loci in Drosophila. We demonstrate the functionality of these markers in multiple tissues and offer new options for better visualization of nuclear morphology in densely packed, complex tissues. Then, we characterize the spatiotemporal dynamics of these markers in multiple developmental contexts. We find that Nup96 and Imp{beta} form cytoplasmic puncta, whose size, numbers, and co-localization patterns change dynamically during oogenesis and early embryogenesis. Moreover, we find that the abundance of NPCs per nucleus decreases during early embryogenesis, complementing the emerging model in which NPCs play a regulatory role in development. The tools and observations described here will be useful in understanding the dynamic regulation of nuclear morphology and transport machinery in development.

Auteurs: Amanda A Amodeo, Y. Shindo, S. Balachandra

Dernière mise à jour: 2024-10-17 00:00:00

Langue: English

Source URL: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.10.17.618964

Source PDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.10.17.618964.full.pdf

Licence: https://creativecommons.org/licenses/by-nc/4.0/

Changements: Ce résumé a été créé avec l'aide de l'IA et peut contenir des inexactitudes. Pour obtenir des informations précises, veuillez vous référer aux documents sources originaux dont les liens figurent ici.

Merci à biorxiv pour l'utilisation de son interopérabilité en libre accès.

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