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Sequenciamento de RNA de Células Únicas Ilumina Nematóides Parasitários

Novas descobertas sobre a expressão gênica e a diversidade celular em H. bakeri.

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Sequenciamento de RNA (RNA-seq) é um método poderoso usado para estudar a Expressão Gênica nas células. O RNA-seq tradicional analisa várias células juntas, dando um nível médio de expressão gênica em uma população. Mas, esse média pode ocultar as diferenças na forma como células individuais expressam genes, especialmente em tecidos complexos com diferentes Tipos de Células. Essa perda de detalhe é um problema significativo porque tipos de células diferentes podem se comportar de maneiras bem diferentes e ter funções únicas no corpo.

Para driblar essa limitação, os cientistas usam uma técnica chamada Sequenciamento de RNA de célula única (scRNA-seq). Esse método permite que os pesquisadores examinem células individuais separadamente, capturando perfis distintos de expressão gênica para cada célula. Assim, os cientistas podem identificar vários tipos de células e suas funções dentro do tecido.

A Necessidade da Análise de Célula Única

Quando se estuda tecidos ou organismos inteiros, pode haver muitos tipos diferentes de células, cada uma com funções únicas e padrões de expressão gênica. Por exemplo, diferentes tipos de células musculares podem expressar genes de maneira muito diferente das células nervosas. No RNA-seq convencional, todas essas células ficam misturadas, levando a um padrão médio de expressão que não reflete a realidade da atividade de cada célula.

O sequenciamento de RNA de célula única ajuda a resolver esse problema. Ele separa os tecidos em células individuais e examina cada uma separadamente, permitindo que os pesquisadores criem um mapa detalhado de todos os diferentes tipos de células presentes. Essa abordagem abrangente é particularmente importante para entender processos biológicos, como desenvolvimento ou respostas a doenças.

Como Funciona o Sequenciamento de RNA de Célula Única

O processo do scRNA-seq começa com a coleta de células de uma amostra de tecido. Isso pode ser feito quebrando o tecido para obter uma suspensão de células únicas. O próximo passo é capturar essas células individuais e prepará-las para o sequenciamento.

Uma tecnologia comumente usada para o scRNA-seq é o sistema 10X Genomics Chromium. Esse sistema usa gotículas para isolar células individuais junto com pequenas esferas de gel que contêm os materiais necessários para o perfilamento de RNA. Uma vez que as células são capturadas nessas gotículas, elas são lisadas, liberando seu RNA nas esferas. As esferas são então codificadas, permitindo que o processo de sequenciamento acompanhe qual RNA veio de qual célula.

Depois que o RNA é sequenciado, os dados resultantes são analisados para quantificar a expressão gênica em cada célula. Essa análise geralmente envolve mapear as leituras a um genoma de referência e gerar uma matriz que mostra quantas leituras correspondem a cada gene em cada célula.

A Importância dos Atlas Celulares

Quando os pesquisadores coletam dados de scRNA-seq de muitas células diferentes, eles podem agrupar (ou clusterizar) as células com base em seus perfis de expressão gênica. Essa clusterização pode ajudar a identificar quais tipos de células estão presentes em uma amostra e entender suas funções. Uma coleção abrangente desses perfis é conhecida como atlas de célula única.

Os atlas de célula única fornecem insights valiosos sobre a diversidade de tipos celulares em um organismo. Eles podem revelar tipos celulares ou estados que antes eram desconhecidos e oferecer uma visão mais profunda de como diferentes células contribuem para a função geral do tecido.

Por exemplo, estudos mostraram que o verme planário tem tipos celulares únicos que não são vistos em outros organismos, ampliando nosso conhecimento sobre a diversidade celular. Analisando esses atlas, os cientistas podem aprender mais sobre como diferentes células interagem e operam dentro de seus ambientes.

Desafios do scRNA-seq

Apesar dos benefícios, o scRNA-seq tem seus desafios. Um problema é que o processo captura apenas uma fração do RNA em cada célula. Em muitos casos, apenas cerca de 30% do total de RNA em uma célula é detectado na saída final do sequenciamento. Isso significa que as moléculas de RNA mais abundantes têm mais chances de serem observadas, enquanto as menos comuns podem ser perdidas, potencialmente distorcendo a compreensão da expressão gênica em uma célula.

Além disso, como o scRNA-seq foca em detectar RNA da extremidade 3’ dos transcritos, ele fornece informações limitadas sobre o comprimento total de cada transcrito, incluindo como os genes podem variar entre diferentes isoformas ou características estruturais. Detalhes importantes como o splicing alternativo podem não ser capturados nesse processo.

Organismos Não Modelo e Seus Genomas

A maioria dos avanços em scRNA-seq foi feita usando organismos modelo, como camundongos ou humanos, que têm genomas e anotações gênicas bem estudados. No entanto, muitos organismos, especialmente os que são menos estudados, podem ter montagens genômicas de qualidade inferior. Usar scRNA-seq nesses organismos pode levar a desafios em mapear com precisão os dados de sequenciamento para seus genomas.

Se a montagem do genoma for ruim, isso pode resultar em genes faltando ou com anotações incorretas, o que pode levar à perda de dados ou conclusões imprecisas sobre a expressão gênica. Assim, usar organismos não modelo requer uma consideração cuidadosa de seus recursos genômicos.

A Importância de Estudar Nematódios Parasitários

Nematódios parasitários são uma preocupação significativa para a saúde humana e a agricultura. Enquanto C. Elegans é um modelo popular para a biologia de nematódios, ele não é um parasita e pode não representar totalmente a biologia das espécies parasitárias. Entender as diferenças entre C. elegans e nematódios parasitários é crucial para desenvolver tratamentos ou estratégias de manejo eficazes contra esses parasitas.

Por exemplo, o verme redondo intestinal murino H. bakeri é muito relacionado a C. elegans e tem um genoma disponível publicamente. Embora os pesquisadores enfrentem desafios para identificar tipos celulares dentro de H. bakeri devido à falta de marcadores verificados, eles podem usar marcadores conhecidos de C. elegans para orientar sua análise e comparar a expressão gênica entre os dois organismos.

A Análise de H. bakeri Usando scRNA-seq

Em um trabalho recente, os pesquisadores realizaram scRNA-seq em H. bakeri para criar um atlas preliminar. Embora o número de células analisadas não tenha sido suficiente para um atlas completo, o estudo utilizou marcadores celulares conhecidos de C. elegans como referência para descobrir semelhanças e diferenças na expressão gênica entre os dois vermes.

O processo de preparação das amostras para sequenciamento envolveu coletar H. bakeri de camundongos infectados e dissociar os vermes em uma suspensão de células únicas. Os pesquisadores então usaram o sistema 10X Genomics para preparação de biblioteca e sequenciaram os dados, que foram posteriormente analisados usando um pipeline padrão.

Identificando Tipos Celulares Potenciais

Os pesquisadores identificaram grupos de células no atlas de H. bakeri com base em perfis de expressão gênica. Ao comparar os padrões de expressão em grupos específicos com marcadores conhecidos de C. elegans, eles fizeram suposições educadas sobre os tipos de células presentes.

Entre os grupos identificados, aqueles associados a células espermáticas foram de particular interesse. Com base em marcadores conhecidos, os pesquisadores puderam sugerir a presença de diferentes estágios de desenvolvimento do esperma em amostras masculinas e femininas. Eles também identificaram grupos que pareciam estar relacionados a oócitos e embriões, ilustrando a complexidade da biologia reprodutiva em H. bakeri.

Desafios na Preparação e Interpretação de Amostras

A análise inicial revelou efeitos significativos de lote, particularmente entre as amostras masculinas e femininas. Isso dificultou discernir quanto das diferenças observadas se devia à variação biológica em vez de artefatos técnicos do processamento das amostras.

Para melhorar a clareza de suas descobertas, os pesquisadores separaram amostras masculinas e femininas para uma análise mais aprofundada, permitindo-lhes entender melhor os perfis de expressão gênica distintos de cada sexo. Eles também levaram em conta fatores confundidores potenciais no processo de preparação das amostras, como o tipo de enzima usada para a dissociação do tecido.

Entendendo o Intestino e Outros Tecidos

Os pesquisadores mergulharam nos perfis de expressão gênica do intestino masculino de H. bakeri, que exibiu um ambiente transcripcional ativo. Vários genes associados à digestão e absorção de nutrientes foram identificados. A análise sugeriu uma organização espacial de funções ao longo do trato intestinal, semelhante a padrões observados em outros organismos.

Comparações com C. elegans estabeleceram ainda mais uma linha de base para entender as funções intestinais em H. bakeri. No entanto, algumas diferenças surgiram, particularmente em termos de taxas de proliferação celular, indicando que H. bakeri pode ter uma estratégia de crescimento diferente em comparação com seu parente não parasitário.

Desenvolvimento Inicial e Embrionário

Os pesquisadores também estavam interessados em entender o desenvolvimento inicial de H. bakeri. Ao comparar os perfis de expressão gênica do esperma e dos primeiros embriões, eles tentaram desvendar como genes maternos e paternos contribuem para o embrião.

Eles descobriram que certos genes eram expressos tanto no esperma quanto no oócito fertilizado, enquanto outros eram mais pronunciados nos embriões, sugerindo mecanismos regulatórios complexos em jogo durante o desenvolvimento inicial. Este estudo lança luz sobre como gametas e embriões interagem geneticamente durante as fases críticas do desenvolvimento.

Conclusão

A primeira incursão na análise de célula única de H. bakeri forneceu insights valiosos sobre as complexidades da expressão gênica e diversidade celular nesse organismo parasitário. Embora o estudo enfrente vários desafios, incluindo a necessidade de melhores recursos genômicos e as complexidades do processamento de amostras, ele marca um passo significativo para entender como os nematódios parasitários funcionam a nível celular.

Pesquisas futuras construirão sobre essas descobertas, ajudando a revelar os segredos da biologia de H. bakeri e suas vulnerabilidades potenciais como parasita. À medida que os métodos de scRNA-seq continuam a evoluir e melhorar, os pesquisadores estarão melhor equipados para decifrar os detalhes intrincados do comportamento celular e da expressão gênica em vários organismos, incluindo aqueles menos compreendidos.

Fonte original

Título: A single-cell transcriptomics atlas for the parasitic nematode Heligmosomoides bakeri: Extrapolating model organism information to non-model systems

Resumo: Single-cell atlases aim to collect the gene expression information for every cell type in an organism but can be challenging to perform in non-model organisms. To try to circumvent the problem of having no verified cell type markers in the parasitic nematode Heligmosomoides bakeri to use for an atlas, we attempted to use orthologs of verified markers from the closely related model organism Caenorhabditis elegans. This resulted in a useful comparison between the two worms for each of the cell types recovered in preliminary H. bakeri single-cell RNA-sequencing. For H. bakeri males and females, robustly recovered cell types include the gametes, embryos, and male intestine, while hypodermis, neurons, muscles, and pharyngeal cells were under-represented cell types. The two worms appear to have a similar hypodermis, cuticle, eggshell, and spermatogenesis process. On the other hand, putative cell identities and cell cycle scores suggest the intestine and muscle cells in H. bakeri may still be cycling and dividing, unlike in C. elegans. Additionally, embryogenesis and early development appear to be quite different between the two worms, with only eight out of 94 confirmed paternal contributions to the embryo in C. elegans (with an ortholog) predicted to also be paternal contributions in H. bakeri. Overall, this new dataset allowed me to move beyond the presence or absence of orthologs to include their tissue specificity and expression level similarities and differences when comparing these two worms to better identify biological processes and traits in a parasitic nematode that are modelled well by C. elegans.

Autores: James D Wasmuth, S. M. J. Pollo, H. Liu, A. Leon Coria, N. Rosin, E. Labit, J. Biernaskie, C. A. M. Finney

Última atualização: 2024-02-28 00:00:00

Idioma: English

Fonte URL: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.02.27.582282

Fonte PDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.02.27.582282.full.pdf

Licença: https://creativecommons.org/licenses/by-nc/4.0/

Alterações: Este resumo foi elaborado com a assistência da AI e pode conter imprecisões. Para obter informações exactas, consulte os documentos originais ligados aqui.

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