Novo Método Melhora Estudos de CRISPR em Camundongos
CrAAVe-seq melhora a precisão do estudo de genes em cérebros de camundongos, mirando populações de neurônios.
Martin Kampmann, B. Ramani, I. V. L. Rose, N. Teyssier, A. Pan, S. Danner-Bocks, T. Sanghal, L. Yadanar, R. Tian, K. Ma, J. J. Palop
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Índice
- Limitações das Células Cultivadas nas Triagens CRISPR
- Triagens CRISPR em Vivo em Camundongos
- Apresentando o CrAAVe-seq
- Como o CrAAVe-seq Funciona
- Principais Descobertas dos Estudos CrAAVe-seq
- Vantagens do Uso do AAV em Triagens CRISPR
- Usando CrAAVe-seq pra Estudar Populações Específicas de Neurônios
- Superando Desafios com CRISPR em Pequenas Populações
- O Futuro do CrAAVe-seq na Neurociência
- Conclusão
- Fonte original
CRISPR é uma ferramenta usada na genética pra editar Genes. Cientistas usam CRISPR pra descobrir o que genes específicos fazem nos organismos vivos. Esse processo é chamado de triagem genética. Com o CRISPR, os pesquisadores conseguem observar vários genes ao mesmo tempo pra aprender mais sobre suas funções. Esse método ajuda a responder perguntas biológicas importantes.
Muitas vezes, essas triagens genéticas são feitas em células que são cultivadas em ambientes artificiais, chamadas células cultivadas. Embora essa configuração seja útil, tem suas limitações. Por exemplo, células cultivadas não representam completamente como as coisas funcionam em organismos vivos de verdade, onde diferentes tipos de células e condições interagem de formas complexas. Isso é especialmente verdadeiro para órgãos como o cérebro, que tem muitos tipos diferentes de células que trabalham juntas.
Pra resolver essas limitações, os pesquisadores começaram a usar um método chamado triagens CRISPR em vivo em grupo. Esse método envolve estudar os cérebros de camundongos vivos. Com isso, os cientistas esperam descobrir novas informações que poderiam ser perdidas em células cultivadas.
Limitações das Células Cultivadas nas Triagens CRISPR
Quando fazem triagens CRISPR em células cultivadas, os cientistas muitas vezes enfrentam desafios. Um grande problema é que o ambiente nas células cultivadas não imita as condições naturais de um organismo inteiro. Fatores como envelhecimento, inflamação e doenças não podem ser totalmente replicados em células crescidas em placa.
Isso é particularmente importante pra estudar o cérebro. O cérebro consiste em diferentes tipos de células que interagem de maneiras que são difíceis de replicar fora do corpo. Portanto, usar animais vivos pra esses experimentos pode fornecer informações mais relevantes sobre a função do cérebro e doenças relacionadas.
Triagens CRISPR em Vivo em Camundongos
Alguns estudos já examinaram o uso do CRISPR em cérebros de camundongos vivos. Nesses estudos, os cientistas entregaram componentes do CRISPR usando vírus que podiam se espalhar por todo o cérebro. A maioria desses primeiros esforços usou um tipo de vírus chamado lentivírus. No entanto, a entrega por lentivírus tem algumas desvantagens significativas, como distribuição desigual dentro do cérebro.
Pra melhorar isso, os pesquisadores mudaram pra usar um vírus diferente chamado vírus adeno-associado (AAV). O AAV consegue alcançar mais áreas do cérebro e pode funcionar melhor com a tecnologia CRISPR. Isso levou a uma nova técnica poderosa chamada AAV-Perturb-Seq, que permite que os pesquisadores coletem informações detalhadas sobre como diferentes genes funcionam em tipos específicos de células do cérebro.
Infelizmente, mesmo que o AAV seja uma opção melhor, os custos pra fazer esses experimentos em muitos camundongos e em um número grande de células ainda são bem altos. Estudos anteriores usaram bibliotecas de apenas um pequeno número de genes, limitando o alcance das descobertas.
Apresentando o CrAAVe-seq
Pra lidar com os problemas que surgiram com as triagens CRISPR em vivo, uma nova metodologia chamada "triagem CRISPR por sequenciamento de episomos AAV" ou CrAAVe-seq foi desenvolvida. Essa nova estratégia adiciona uma ferramenta genética especial pra ajudar a focar em tipos celulares específicos no cérebro. Ela usa um vírus que pode entregar instruções do CRISPR especificamente onde é necessário, permitindo o exame das funções dos genes em populações celulares alvo.
O CrAAVe-seq também melhora a capacidade de analisar grandes volumes de informações genéticas. Usando episomos derivados do AAV, os cientistas podem aumentar o número de amostras que conseguem explorar sem incorrer em custos excessivos. A técnica permite que os pesquisadores investiguem uma gama mais ampla de genes enquanto analisam os dados de forma eficiente.
Usando o CrAAVe-seq, os pesquisadores conseguiram estudar genes que são essenciais pra sobrevivência de Neurônios nos cérebros de camundongos. Eles testaram bibliotecas contendo milhares de diferentes componentes do CRISPR e amostraram milhões de neurônios, revelando alta reprodutibilidade nos resultados.
Como o CrAAVe-seq Funciona
O método CrAAVe-seq começa com um vírus específico (AAV) que carrega uma biblioteca de ferramentas CRISPR projetadas pra atingir diferentes genes no cérebro do camundongo. O AAV também contém um marcador que permite aos cientistas ver quais células estão sendo alvo.
Os pesquisadores injetaram o vírus nos cérebros de camundongos neonatais, onde ele se espalhou e se integrou nas células-alvo. A introdução de Cre recombinase, uma ferramenta genética que ajuda a ativar o sistema CRISPR seletivamente em certas células, permitiu uma investigação focada dos neurônios.
Depois de algumas semanas, os cientistas conseguiram coletar amostras do Material Genético presente no cérebro. Eles tinham como objetivo analisar os componentes do CRISPR que haviam sido ativados nos neurônios-alvo. Usando métodos de PCR e sequenciamento, mediram com que frequência cada gene foi alvo e quais efeitos essas ações tiveram nos neurônios.
Principais Descobertas dos Estudos CrAAVe-seq
Nos seus trabalhos, os pesquisadores conseguiram descobrir vários genes críticos pra sobrevivência dos neurônios. Os estudos mostraram que a redução de certos genes levou à morte dos neurônios, o que significa que esses genes são essenciais pra manter os neurônios saudáveis.
Muitos dos genes identificados já eram conhecidos por serem importantes pra sobrevivência celular em outros contextos, especialmente na pesquisa sobre câncer. No entanto, o CrAAVe-seq também revelou vários genes únicos que não estavam conectados à sobrevivência de neurônios antes. Isso sugere a necessidade de continuar pesquisando esses genes pra entender melhor seus papéis.
Os resultados mostraram que o CrAAVe-seq pode identificar de forma confiável genes essenciais pra saúde dos neurônios e pode reproduzir essas descobertas em vários camundongos. O método tem o potencial de descobrir ainda mais genes importantes relacionados a doenças neurológicas.
Vantagens do Uso do AAV em Triagens CRISPR
Os AAVs têm várias vantagens sobre outros métodos usados anteriormente em triagens CRISPR. Eles conseguem se espalhar de forma mais eficaz dentro do cérebro, permitindo uma análise mais ampla de diferentes tipos de células. A capacidade de focar em subpopulações específicas de células, como neurônios, possibilita uma compreensão mais precisa das funções dos genes.
Além disso, os AAVs não se integram ao genoma das células que infectam, o que significa que não mudam permanentemente as células. Isso oferece um método mais seguro de manipulação genética sem os riscos que vêm da integração de DNA estranho.
O CrAAVe-seq também se beneficia do seu design escalável. Ao usar AAV, os pesquisadores conseguem analisar um grande número de genes mantendo os custos manejáveis. O método proporciona uma flexibilidade significativa pra estudar uma ampla variedade de genes em vários tipos celulares.
Usando CrAAVe-seq pra Estudar Populações Específicas de Neurônios
Um dos aspectos empolgantes do CrAAVe-seq é sua adaptabilidade pra focar em populações específicas de neurônios. Usando diferentes ferramentas de Cre recombinase, os pesquisadores conseguem isolar e estudar grupos menores de neurônios dentro do tecido cerebral maior. Eles até começaram a usar esse método pra investigar regiões do cérebro que são difíceis de estudar.
Por exemplo, ao usar um tipo diferente de driver Cre visando neurônios excitatórios, os cientistas conseguiram perfilar os genes essenciais nesses tipos específicos de neurônios. Isso revelou padrões semelhantes aos encontrados em triagens mais amplas, confirmando que o CrAAVe-seq pode fornecer insights confiáveis em diferentes populações de neurônios.
Superando Desafios com CRISPR em Pequenas Populações
Trabalhar com populações menores de células apresenta desafios pros pesquisadores, como garantir que amostras suficientes sejam coletadas pra detectar funções reais dos genes. O CrAAVe-seq não só permite uma análise ampla, mas também oferece a capacidade de focar em tipos de neurônios menos comuns.
Essa adaptabilidade é importante porque certas funções dos genes podem só se tornar aparentes quando se foca em subpopulações específicas. O método possibilita uma abordagem mais sutil para estudar a função dos genes, o que é particularmente útil na compreensão dos muitos papéis que os genes desempenham em diferentes contextos.
O Futuro do CrAAVe-seq na Neurociência
A capacidade de estudar populações de neurônios de forma mais eficaz através do CrAAVe-seq traz oportunidades empolgantes pra futuras pesquisas em neurociência. Os pesquisadores podem aplicar esse método pra investigar como diversos genes afetam doenças neurológicas e outros distúrbios cerebrais.
A esperança é que, ao descobrir mais sobre quais genes são essenciais pra saúde dos neurônios, os cientistas consigam abrir caminho pra novos tratamentos e estratégias terapêuticas voltadas a proteger os neurônios de danos ou aumentar sua sobrevivência.
Usar o CrAAVe-seq oferece uma maneira prática e econômica de realizar estudos em larga escala. Como consegue lidar com vastas bibliotecas de informações genéticas, abre as portas pra explorar uma ampla gama de questões biológicas. Essa versatilidade é essencial pra estudar condições complexas e muitas vezes mal compreendidas como a neurodegeneração.
Conclusão
CrAAVe-seq é uma ferramenta poderosa pra avançar nossa compreensão de como os genes funcionam no cérebro. Combinando as capacidades de vetores virais com a precisão da tecnologia CRISPR, os pesquisadores agora podem explorar as interações complexas entre vários genes e células do cérebro.
Os resultados do CrAAVe-seq mostram potencial pra identificar genes essenciais relacionados à sobrevivência dos neurônios. À medida que essa técnica evolui, ela tem o potencial de revelar insights significativos não só na neurociência, mas também em campos relacionados onde entender as funções genéticas é crucial.
Continuando a desenvolver métodos que permitam investigações mais aprofundadas em organismos vivos, o CrAAVe-seq pode contribuir muito pra futuras descobertas que moldem nossa compreensão da biologia e levem a melhores resultados de saúde. O futuro da neurociência e da pesquisa genética é brilhante, e ferramentas como o CrAAVe-seq estão na vanguarda dessa jornada empolgante.
Fonte original
Título: CRISPR screening by AAV episome-sequencing (CrAAVe-seq) is a highly scalable cell type-specific in vivo screening platform
Resumo: There is a significant need for scalable CRISPR-based genetic screening methods that can be applied directly in mammalian tissues in vivo while enabling cell type-specific analysis. To address this, we developed an adeno-associated virus (AAV)-based CRISPR screening platform, CrAAVe- seq, that incorporates a Cre-sensitive sgRNA construct for pooled screening within targeted cell populations in mouse tissues. We demonstrate the utility of this approach by screening two distinct large sgRNA libraries, together targeting over 5,000 genes, in mouse brains to create a robust profile of neuron-essential genes. We validate two genes as strongly neuron-essential in both primary mouse neurons and in vivo, confirming the predictive power of our platform. By comparing results from individual mice and across different cell populations, we highlight the reproducibility and scalability of the platform and show that it is highly sensitive even for screening smaller neuronal subpopulations. We systematically characterize the impact of sgRNA library size, mouse cohort size, the size of the targeted cell population, viral titer, and multiplicity of infection on screen performance to establish general guidelines for large-scale in vivo screens.
Autores: Martin Kampmann, B. Ramani, I. V. L. Rose, N. Teyssier, A. Pan, S. Danner-Bocks, T. Sanghal, L. Yadanar, R. Tian, K. Ma, J. J. Palop
Última atualização: 2024-12-19 00:00:00
Idioma: English
Fonte URL: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2023.06.13.544831
Fonte PDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2023.06.13.544831.full.pdf
Licença: https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/
Alterações: Este resumo foi elaborado com a assistência da AI e pode conter imprecisões. Para obter informações exactas, consulte os documentos originais ligados aqui.
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