糖鎖修飾の理解とそのタンパク質への影響
糖鎖付加は生き物のタンパク質の機能と安定性に重要なんだ。
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糖鎖付加は、タンパク質が作られた後に糖を追加するプロセスだよ。これは通常、ヒトや他の動物のような核を持つ細胞で起こる。このプロセスは、タンパク質の働き方、折りたたみ方、安定性にとって重要なんだ。糖鎖付加は体のいろんな機能に影響を及ぼすから、健康な状態と病気の状態の両方を研究する必要があるんだ。
哺乳類では、N-糖鎖付加とO-糖鎖付加の2つの主要なタイプが知られているよ。N-糖鎖付加では、糖鎖が細胞内の小器官である内因性小胞体の中に入るときに、特定の部分にくっつくんだ。その部分が糖鎖付加シークエンスと呼ばれる特別なアミノ酸の配列にある場合、糖鎖付加が起こる可能性が高くなる。一方、O-糖鎖付加は、主に細胞のゴルジ体という別の部分で起こって、そこではセリンやスレオニンの部分に糖が追加されるんだ。
糖鎖のクラス
哺乳類では、N-糖鎖は数種類の形を取ることができる。主な3つのタイプは、オリゴマンノース、ハイブリッド、複合体だよ。それぞれのタイプは似たようなスタート構造があるけど、エンディングは異なる。オリゴマンノース糖鎖は主にマンノースでできているし、複合体糖鎖にはシアル酸を含むいろんな糖がある。ハイブリッド糖鎖はこれらの特徴が混ざってる。O-糖鎖も異なるコア構造があって、これは最初の糖から作られているんだ。
糖タンパク質プロテオミクスって?
糖タンパク質プロテオミクスは、サンプル中の糖タンパク質を研究することだよ。目的は、どのタンパク質に糖が付いているか、特定の部分にいくつの糖鎖が付いているか、そしてそれらの糖鎖がどんな形をしているかを調べることなんだ。これを実現するために、科学者たちはしばしば糖ペプチド、つまり糖が付いているタンパク質の部分を分析するんだ。正確な結果を得るためには、糖ペプチドのすべての特徴を調べる必要があるんだ。
糖ペプチドを分析するために、科学者たちはLC-MS/MSのような方法を使うよ。これは、糖ペプチドを小さな部分に分解して、タンパク質のバックボーンと付いている糖についての詳細な情報を得ることを含むんだ。
糖ペプチドの分解
科学者たちが糖タンパク質を分析する時、2つの主要な方法を使ってそれを小さな部分に分解するよ:熱解離法とラジカル駆動解離法。
熱解離法
CID(衝突誘導解離)のような熱解離法では、イオンがガスに当たって壊れるんだ。この方法は、タンパク質とそれに付いている糖の部分を特定するのに役立つけど、糖についての良い情報を提供する一方で、タンパク質についての詳細はあまり得られないんだ。
ラジカル駆動法
それに対して、ECD(電子捕捉解離)やETD(電子移動解離)のようなラジカル駆動法は、タンパク質のバックボーンを壊すことにもっと焦点を当てているんだ。これらの方法は、電子を使って断片化を引き起こして、糖がタンパク質のどこに付いているかを正確に理解するのに役立つ。これによって糖についての情報は少なくなるかもしれないけど、タンパク質の部分についてはより良い理解が得られるんだ。
方法の組み合わせ
一部の科学者たちは、これらの方法を組み合わせて両方の利点を得ようとするよ。たとえば、ECDとCIDを混ぜると、糖とタンパク質の部分を効果的に分析できるんだ。
ZenoTOF 7600とその使い方
ZenoTOF 7600は、分析中の条件を細かく調整できる質量分析計の一種だよ。電子エネルギーや時間などのさまざまな要因を調整することで、複雑なサンプル中の糖ペプチドの同定を改善できるんだ。
サンプルの準備
糖タンパク質を分析するために、研究者たちはラボでヒト細胞を育てて、分泌されたタンパク質を集めて分析の準備をするよ。タンパク質は、清掃、分解、糖が付いたものを濃縮するなどのいくつかのステップを経るんだ。
糖ペプチドの分析
糖ペプチドが準備できたら、ZenoTOF 7600を使って調べるよ。質量分析計にサンプルを注入することで、研究者たちは異なる糖ペプチドを分離して同定できるんだ。
結果の確認
分析から得られる結果は、どれだけユニークな糖ペプチドが同定されたかを示すことができるんだ。これにより、研究者たちは自分たちの方法がどれだけ効果的だったかを理解できる。データを分析して、どの方法が糖ペプチドの同定や質に関して最良の結果をもたらしたかを見ることができるんだ。
異なる方法の比較
糖ペプチドを分析する最良の方法を見つけたら、研究者たちは異なる断片化方法を見ていくよ。どの方法がより多くの糖ペプチドの同定につながるか、タンパク質上の糖の位置特定が良くなるかを知りたいんだ。
パフォーマンスの測定
各方法のパフォーマンスは、どれだけ多くの糖ペプチドが同定されたかや、そのスペクトルの質をチェックして評価されるよ。スペクトルはデータの視覚的表現を提供して、研究者たちが結果を明確に見るのを助けるんだ。
主な発見
分析を通じて、研究者たちは伝統的な方法であるCIDが最も多くの糖ペプチドの同定を提供することがわかったんだ。でも、EADやその変種を使うことで、糖がタンパク質にどこに付いているかについてのより良い情報が得られることもあるんだ。
EAD方法の利点
EADは全体的に同定数が少ないかもしれないけど、糖の位置特定に関する特定の情報を提供するのが得意なんだ。これは、糖鎖付加がタンパク質の機能にどのように影響するかを理解するのに重要なんだ。
ハイブリッド方法
研究者たちがEADとCIDの組み合わせ(EAciDと呼ばれる)を使ったとき、この方法は両方の強みを組み合わせたことがわかったんだ。それは、適度な糖ペプチドの同定を提供しつつ、位置特定の信頼性も改善したんだ。
結論
糖鎖付加は、体内でタンパク質がどのように機能するかに重要な役割を果たしているんだ。糖タンパク質プロテオミクスを通じてそれを理解することは、研究者たちが病気や生理についてもっと学ぶのに役立つよ。ZenoTOF 7600のような高度な質量分析技術を使うことで、科学者たちは分析方法を微調整して、糖タンパク質の複雑な世界についての深い洞察を得ることができるんだ。全体的に、方法の選択-CID、EAD、またはその組み合わせ-は、研究の目的によって決まってくるし、それができるだけ多くの糖ペプチドを同定することなのか、それともその構造と機能についての詳細な情報を得ることなのかによるんだ。
タイトル: Electron-Activated Dissociation and Collision-Induced Dissociation Glycopeptide Fragmentation for Improved Glycoproteomics
概要: Tandem mass spectrometry coupled with liquid chromatography (LC-MS/MS) has proven a versatile tool for the identification and quantification of proteins and their post-translational modifications (PTMs). Protein glycosylation is a critical PTM for the stability and biological function of many proteins, but full characterisation of site-specific glycosylation of proteins remains analytically challenging. Collision induced dissociation (CID) is the most common fragmentation method used in LC-MS/MS workflows, but loss of labile modifications render CID inappropriate for detailed characterisation of site-specific glycosylation. Electron-based dissociation (ExD) methods provide alternatives that retain intact glycopeptide fragments for unambiguous site localisation, but these methods often underperform CID due to increased reaction times and reduced efficiency. Electron activated dissociation (EAD) is another strategy for glycopeptide fragmentation. Here, we use a ZenoTOF 7600 SCIEX instrument to compare the performance of various fragmentation techniques for the analysis of a complex mixture of mammalian O- and N-glycopeptides. We found CID fragmentation identified the most glycopeptides and generally produced higher quality spectra, but EAD provided improved confidence in glycosylation site localisation. Supplementing EAD with CID fragmentation (EAciD) further increased the number and quality of glycopeptide identifications, while retaining localisation confidence. These methods will be useful for glycoproteomics workflows for either optimal glycopeptide identification or characterisation.
著者: Benjamin L. Schulz, K. L. Macauslane, C. L. Pegg, A. S. Nouwens, E. D. Kerr, J. Seitanidou
最終更新: 2024-02-23 00:00:00
言語: English
ソースURL: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.02.22.581095
ソースPDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.02.22.581095.full.pdf
ライセンス: https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/
変更点: この要約はAIの助けを借りて作成されており、不正確な場合があります。正確な情報については、ここにリンクされている元のソース文書を参照してください。
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