ストレプトコッカス・アンギノサスのCRISPR-Casシステム:バランスを取る行為
研究によると、CRISPR-Casは細菌の防御とストレス応答の二重の役割を果たしていることがわかった。
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原核生物、つまりバイ菌は、バクテリオファージって呼ばれるウイルスやその他の望ましくない遺伝物質から自分を守る方法を発展させてきた。そのための重要なシステムの一つがCRISPRって呼ばれるもの。これは、過去の侵入者からのDNAの断片を保存することで、バイ菌が新しい感染に適応するのを助ける一連の遺伝子と配列から成り立ってる。
CRISPRって何?
CRISPRは「Clustered Regularly Interspaced Short Palindromic Repeats」の略。特別な遺伝子やスペーサーと呼ばれるユニークな配列が含まれてる。これらのスペーサーは、過去の攻撃者から取ったDNAのビットで、バイ菌が似たような脅威を認識して防御するのを可能にする。新しい感染が起こると、バイ菌は新しいスペーサー配列を自分のCRISPR配列に追加できるから、効果的に対応できる。
CRISPRシステムは、スペーサー配列から小さなRNA分子、つまりcrRNAを生成することで機能する。これらのcrRNAはCasタンパク質って呼ばれるタンパク質とパートナーシップを結ぶ。この二つが一緒になって、侵入してきたウイルスや遺伝要素の特定のDNA配列を識別して切り取ることで、基本的に脅威を中和する。
CRISPR-Casシステムは、いくつかのタイプを含む二つの主要クラスに分類される。クラス1システムは複数のタンパク質サブユニットを持つのに対し、クラス2システムは通常Cas9っていう一つの重要なタンパク質だけから成り立ってる。このシンプルさがCas9を研究や遺伝子工学に広く使われる理由になってる。
メリットがある一方で、CRISPR-Casシステムはバイ菌サンプルの約半分にしか見られない。多くの株にこのシステムが見られない理由、特に特定の種においてはまだ不明な点が多い。
防御を超えて:CRISPR-Casのその他の役割
最近の研究で、CRISPR-Casシステムは単にバイ菌を侵入者から守るだけじゃないことがわかった。これらは、損傷したDNAを修復したり、遺伝子発現を調整したり、バイ菌の強さやストレス耐性に影響を与えたりする、さまざまなバイ菌の生命に関連する機能にも関与しているみたい。
バイ菌が環境からストレスにさらされると、CRISPR-Casシステムが活性化されることがある。この活性化が、熱や有害物質などのストレッサーによって引き起こされる損傷からバイ菌細胞を守る助けになる。さまざまな生息地で生活するバイ菌は、異なるストレッサーに直面しているんだ。人間の体内でも同様だよ。
Streptococcus anginosus:ケーススタディ
ある特定のバイ菌、Streptococcus anginosusは、口の中や消化器官、尿路など、人体のさまざまな部分に普通に見られる。普段は私たちのマイクロバイオームの無害な一部として存在するけど、深刻な感染や病気とも関連付けられている。
最近、S. anginosusの感染における役割が注目されていて、いろんな種類の感染で増えているのが確認されてる。このバイ菌は膿瘍によく見られ、肺感染や胃癌などの疾患にも関与している。これが、新たな病原菌としての重要性を示してるんだ。
以前の研究では、S. anginosusに異なるCRISPR-Casシステムが存在し、細胞損傷に関連した特定の遺伝子がこれらのシステムの存在に関連していることが示されている。この文脈で、S. anginosusのCRISPR-Casシステムがストレスにどう反応するかに焦点を当てた研究が進んでる。
S. anginosusのCRISPR-Casシステムの調査
研究者たちは、S. anginosusのCRISPR-Casシステムがどのように機能するか、特にストレス耐性について調べたかった。そこで、S. anginosusのいろんな変異株を作成した。一部の株はCRISPR-Casシステムの重要な部分が削除または変更されてた。
主に研究された株の一つはS. anginosus SK52で、これはCRISPR-Casシステムの一部としてCas9タンパク質を含んでいる。研究者たちは、Cas9がない株やCRISPR配列全体がない株、Cas9遺伝子が再追加された株など、異なる変異株を作り出した。これらの異なる株を研究することで、CRISPR-Casがストレス反応やバイ菌全体の生存にどのように影響するかを理解しようとしていた。
CRISPR-Casシステムがどれだけ機能しているかを評価するために、研究者たちはプラスミドを導入するテストを行った。プラスミドは小さな円形のDNAの断片で、S. anginosusに見られる特定のスペーサー配列を持つプラスミドを作成した。この実験の目的は、正しい配列が存在することでバイ菌が新しいプラスミドを受け入れられないか確認することだった。これはCRISPR-Casが外来DNAの侵入を防ぐために活動的に働いていることを示す指標なんだ。
実験の結果
実験の結果、S. anginosus SK52のCRISPR-Casシステムは実際に機能していることがわかった。正しいターゲット配列が存在すると、バイ菌は新しいプラスミドを取り込めなかった。これはCRISPR-Casシステムが外来DNAの侵入を阻止するために積極的に働いていることを示している。
次に研究者たちは、異なる成長段階やさまざまなストレス条件下でのCas9タンパク質の発現を調べた。残念ながら、バイ菌が抗生物質や熱などのストレッサーにさらされた時に、Cas9レベルの有意な増加は見られず、環境条件によってCas9のレベルは一定に保たれていることが示唆された。
ストレス反応と生存
S. anginosus SK52とその変異株のストレス反応を評価するために、研究者たちはバイ菌をUVライトや過酸化水素、高温などのさまざまなストレッサーにさらした。驚くことに、Cas9タンパク質を持つ株は、これらのストレス条件下で生存率が低かった。
例えば、Cas9タンパク質がない株はUV露出に対して、野生株よりもかなりよく生き残った。このパターンは他のストレス条件でも見られ、Cas9の発現がバイ菌のストレスへの対処能力を妨げる可能性が示唆されている。
さらなるテストでは、Cas9がないS. anginosus株が過酸化水素や極端な熱の酸化ストレスにさらされた時に高い生存率を示した。これにより、Cas9タンパク質を持つことには代償があるかもしれないと研究者たちは提案している。
成長と代謝活動
ストレス反応だけでなく、研究者たちはCas9タンパク質の有無が成長にどう影響するかも調べた。彼らは、異なるS. anginosus株の成長率を一定期間監視したところ、Cas9がない変異株の方が野生株よりも早く成長することがわかった。
寒天プレートでの成長を調べると、cas9欠損変異株は他の株に比べて目に見えて大きなコロニーを生成していた。これは、Cas9がないことがいくつかの成長上の利点をもたらす可能性があることを示している。
さらに、Cas9の発現に伴う代謝コストを探るために、研究者たちは異なる株の代謝活動を特定のアッセイを使って測定する追加のテストを行った。cas9欠損株は、ストレス下でも通常時でも、Cas9を持つ株に比べてより高い代謝活動を示した。
S. anginosusのCRISPR-Casシステムに関する結論
研究結果は、S. anginosusのCRISPR-Casシステムが機能しており、外来遺伝物質から保護を提供していることを示している。ただし、Cas9タンパク質の存在は、特にストレス耐性や全体的な成長において特定のコストと関連しているようだ。
結果は、CRISPR-Casシステムを持つことが有害な遺伝要素からの保護を提供する一方で、バイ菌株のストレスへの反応能力や全体的な成長効率に関してトレードオフを引き起こす可能性があることを示唆している。これが、特定のS. anginosus株がCRISPR-Casシステムを全く持っていない理由を説明するかもしれない。
今後の研究では、CRISPR-Casの機能と、S. anginosusのようなバイ菌への潜在的なコストとの複雑なバランスを理解することに焦点を当てることができる。このような洞察が、これらの生物が変化し続ける環境でどのように生存し、防御メカニズムと成長や適応とのバランスを取っているかを明らかにする手助けになるかもしれない。
タイトル: The stress of carrying CRISPR-Cas
概要: Streptococcus anginosus (S. anginosus) is a commensal that can cause severe invasive bacterial infections. A considerable percentage of S. anginosus strains harbor CRISPR-Cas systems, which apart from being a bacterial immunity system can play an important role regarding the adaptation to environmental stress. The functionality of S. anginosus CRISPR-Cas systems has previously not been investigated. To address this, we created a set of deletion mutants in the CRISPR-Cas type II-A system of the S. anginosus SK52 type strain, targeting the nuclease Cas9 and the CRISPR array. Testing these strains in a plasmid clearance assay, we were able to confirm CRISPR-Cas activity. Furthermore, the role of the S. anginosus CRISPR-Cas system was investigated under various stress conditions such as UV light, hydrogen peroxide exposure, and high-temperatures in wildtype S. anginosus and CRISPR-Cas mutant strains. Under these conditions, survival was significantly lower in strains carrying cas9. Bacterial growth and metabolic activity in Alamar blue assays was also negatively affected by the presence of cas9 in S. anginosus. In summary we found that the presence of a functional CRISPR-Cas system in S. anginosus leads to measurable metabolic and fitness costs for the wildtype strain. Carrying cas9 was associated with an impaired stress response in our experiments and may thus explain, why many strains of this species lack CRISPR-Cas. Author SummaryThe bacterial immunity system CRIPRS-Cas provides protection against invading foreign genetic material. Despite this obvious advantage only about 50% of bacteria carry CRISPR-Cas. To investigate the CRISPR system of Streptococcus anginosus, which can cause serious bacterial infections and has recently been linked to gastric cancer, we created a set of mutants in different loci of the CRISPR system. Exposing these mutants to stress through UV-light, hydrogen peroxide and high temperatures, we could show that carrying the CRISPR nuclease gene Cas9 is associated with impaired survival under harsh conditions. Strains lacking the nuclease gene had a better growth and higher metabolic activity than the wildtype strain. In summary we found that the presence of a functional CRISPR-Cas system in S. anginosus leads to considerable metabolic and fitness costs. Carrying cas9 was associated with an impaired stress response in our experiments and may thus explain, why many strains of this species lack CRISPR-Cas.
著者: Barbara Spellerberg, D. Haider, R. Bauer, A. Grempels, R. Roscher, C. C. Aslan, S. Mauerer
最終更新: 2024-04-03 00:00:00
言語: English
ソースURL: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.04.03.587888
ソースPDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.04.03.587888.full.pdf
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変更点: この要約はAIの助けを借りて作成されており、不正確な場合があります。正確な情報については、ここにリンクされている元のソース文書を参照してください。
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