RAM-FISH: RNAを学ぶ新しい方法
RAM-FISHはRNAの検出を簡単にして、科学者が遺伝子発現をもっとよく理解するのに役立つんだ。
Tirtha Das Banerjee, Joshua Raine, Ajay S. Mathuru, Kok Hao Chen, Antónia Monteiro
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目次
動物や植物のように多くの細胞でできている生き物は、中に複雑なシステムを持ってるんだ。このシステムはRNAと呼ばれる小さな分子によって制御されてるんだ。細胞内に現れるRNA分子が、組織の発達や病気の始まりについて多くのことを教えてくれる。多くの科学者は、あまり手間をかけずに組織内の複数のRNA分子を簡単で信頼できる方法で見る方法を探しているんだ。
これらのRNA分子を研究するために、科学者たちは効率よく、あまり時間や労力をかけずにできる方法を必要としている。また、あまり準備をしなくてもさまざまなサンプルを見られることも大事なんだ。最近の技術により、組織構造を保ったまま単一の細胞内のRNAをチェックできるようになった。主に2つの方法があって、1つは配列解析を使う方法、もう1つはカラフルなプローブを使う方法だよ。
RNA検出技術
配列解析に基づく方法
配列解析に基づく方法は、RNAの配列を分解して読み取って、どの遺伝子が活性化しているかを調べる方法だ。よく知られている技術には次のようなものがある:
- Visium: 組織内のRNAの空間分析を可能にし、遺伝子の活性の地図を提供する方法。
- Stereo-seq: 同様にデータをキャッチするが、異なるアプローチを持つ技術。
- Slide-seq: 特定のスライドセットアップを使ってRNA信号をキャッチする方法。
イメージングを基にした方法
イメージングを基にした方法は、特殊な蛍光タグを使ってRNAの位置と量をマークする方法なんだ。有名な技術には次のものがある:
- MERFISH: この方法は、複数ラウンドのイメージングを使って多くのRNA分子のデータを一度に集める。
- osmFISH: RNAを非常に詳細に可視化するのに役立つ。
- CosMx SMI: 組織サンプル内のRNAを追跡する革新的なアプローチ。
- STARmap: 組織内のRNAの位置を高解像度画像で与える技術。
- seq-FISH: 科学者がRNA信号を非常に明確に見ることができる別の方法。
- FISH&CHIPS: 他の技術と併用して使う新しい方法。
これらの方法は役立つけど、複雑な準備ステップ、高コスト、偽信号のリスクなどの問題があることが多い。
RNA局在化方法の改善
科学者たちは、信号を増幅し、バックグラウンドノイズを抑えるためのより良い方法を考え出した。HCR3.0やSABER-FISHのような方法は、信号をより明確に見えるようにし、バックグラウンドの干渉を減らした。ただし、これらの技術には次のような問題もある:
- 一度に多くのRNAターゲットを扱う能力が限られている。
- 実験のタイムラインが長い。
- 専門的な取り扱いが必要な労働集約的なプロトコルで、ミスが起きる可能性がある。
cycleHCRやEASI-FISHのような新しい方法は扱えるターゲットの数が改善されたけど、複雑なセットアップが必要で、すべての研究室で使いやすいわけではない。
RAM-FISH: 新しい解決策
そこで登場するのがRAM-FISH!この方法は、30以上のRNAターゲットを一度に効率的に検出できる高度な技術を組み合わせたものだ。従来の方法よりも速くて簡単なので、科学者たちが使いやすくなった。これまで研究者たちはこの方法を蝶の鱗や魚の脳で試してきて、今では複数回の検出ができるように進化したんだ。
RAM-FISHのワークフロー
RAM-FISHのワークフローはシンプルだよ。まず、組織サンプルの準備から始まる。これは手動でも自動化されたシステムを使ってもいい。組織を集めた後、科学者たちはそれを固定し、透過性を高める。次に、検査を自分でやるか、機械に任せるんだ。
基本的なステップは次の通り:
- 組織を集める: まず、蝶や魚などの生物からサンプルを取る。
- 固定と準備: 組織が扱いやすく、細胞が intact に保たれるように処理する。
- RNAをプローブする: 興味のあるRNAに結合する特殊なプローブを使用。その後、見たい信号を増幅するための追加のプローブを使う。
- イメージング: 最後に、特殊な顕微鏡でサンプルを調べてRNA信号をキャッチする。
手動の場合、ハイブリダイゼーション、洗浄、信号除去のステップは主にガラスプレートや小さなチューブで行われる。自動化されたアプローチは、流体システムを使ってプロセスを効率化しているよ。
プローブの準備
RNA検出用のプローブを準備するために、研究者たちは役立つExcelテンプレートを作った。このテンプレートを使って、特定のRNAに付着できるオリゴヌクレオチドをデザインするんだ。データベースから遺伝子配列を使って、プローブが正しく結合するように準備する。
RAM-FISHの実用例
蝶の研究
RAM-FISHの一つのエキサイティングな応用は、成長中の蝶の翼を見ることだ。蝶は成長するにつれてユニークな色のパターンが変わる。科学者たちは、発達の異なる段階で33の遺伝子を研究して、どう振る舞うかを見ている。
例えば:
- Wnt1、Wnt6、Wnt10: これらの遺伝子は翼の縁や斑点に関連する一貫したパターンを示し、過去の研究と一致していた。
- Cubitus interruptus (ci): この遺伝子は翼の特定の領域で見つかり、以前の研究と一致していた。
RAM-FISHを使うことで、研究者たちは蝶の発達中の遺伝子発現の複雑さを理解でき、成長や色のパターンを調べる手助けになっている。
ゼブラフィッシュの脳研究
ゼブラフィッシュの幼虫は、RAM-FISHの実用例のもう一つの素晴らしい例だ。ゼブラフィッシュはシンプルな構造と透明な体を持っているため、幼少期の脳での遺伝子の働きを研究するのに最適だ。研究者たちはRAM-FISHを使って特定の遺伝子がどのように脳で発現しているかを調べ、それが行動を理解するのに重要なんだ。
例えば、神経機能に関連するいくつかの遺伝子を調べて、それがどこでどのように活性化しているかを示した。これにより、脳の機能と発達の明確なイメージを構築する手助けになる。
課題と堅牢性分析
RAM-FISHは強力なツールだけど、科学者たちは信号が複数回の検出を通じて強く保たれるようにする課題に取り組まなきゃいけなかった。彼らは**optomotor-blind (omb)**という遺伝子を特に見て、信号が時間と共にどのように減衰するかを分析した。
この方法の信頼性をテストするために、異なる検出ラウンドの後に撮影された画像を比較した。信号が減少することはあったけど、全体的なパターンは明確に保たれていて、RAM-FISHの手法の堅牢性を支持している。
結論
RAM-FISHは、RNAの検出と局在化の分野におけるエキサイティングな進展を表している。これは、さまざまな生物の遺伝子発現を研究するためのシンプルで速く、より信頼性のある方法を提供するんだ。蝶の羽の発達の秘密を解き明かすことや、ゼブラフィッシュの脳に関する洞察を提供することなど、この方法は科学者が遺伝子発現の世界を探求する方法を革命的に変える可能性を持っている。
絶えず変化する科学研究の世界で、RAM-FISHはRNAの fascinatingな世界とその生物のプロセスにおける役割を解明するための効率的な方法を求める多くの研究者にとって、期待が持てるものだ。このツールを使って、科学者たちは生物学、発展、病気の理解を深める発見をする可能性が高いね。
だから、目を光らせておこう!この新しいRNA研究アプローチでどんな素晴らしい発見が待っているか、わからないからね!
オリジナルソース
タイトル: Spatial mRNA profiling using Rapid Amplified Multiplexed-FISH (RAM-FISH)
概要: Localizing multiple RNA molecules simultaneously in intact tissues and organs is valuable for gaining insights into possible gene-regulatory interactions underlying cell differentiation. Existing technologies for multiplexed RNA localization are expensive, computationally complex, have elaborate sample preparation steps, have size limitations, and require weeks of processing time. This limits the widespread use of such techniques in most labs. Here we describe a cost-effective methodology, Rapid Amplified Multiplexed-FISH (or RAM-FISH), based on Hybridization Chain Reaction 3.0 for localizing dozens of transcripts in the same sample. This methodology achieves multiplexing by localizing 3 genes per cycle to detect 30 or more genes within a few days. The method can be applied to fixed tissue sections, entire organs, or whole organisms such as larval Danio rerio, without extensive sample preparation steps. The automation used here can also be adapted to perform other amplification-based FISH. Here, we demonstrate its utility, flexibility, and versatility for gene expression analysis in two very different types of samples, Bicyclus anynana butterfly larval wings and intact 10-day-old Danio rerio fish larvae.
著者: Tirtha Das Banerjee, Joshua Raine, Ajay S. Mathuru, Kok Hao Chen, Antónia Monteiro
最終更新: 2024-12-12 00:00:00
言語: English
ソースURL: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.12.06.627193
ソースPDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.12.06.627193.full.pdf
ライセンス: https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/
変更点: この要約はAIの助けを借りて作成されており、不正確な場合があります。正確な情報については、ここにリンクされている元のソース文書を参照してください。
オープンアクセスの相互運用性を利用させていただいた biorxiv に感謝します。