Nuove intuizioni sulla funzione ipotalamica umana
I ricercatori sviluppano modelli di ipotalamo umano per studiare la fame e il metabolismo.
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Il controllo dell'assunzione di cibo e dei livelli di zucchero nel sangue è importante per la salute, e questo processo è gestito da specifiche cellule cerebrali, soprattutto in una regione chiamata ipotalamo. All'interno di questa zona, ci sono Neuroni speciali noti come neuroni ARC che comunicano informazioni su fame e sazietà ad altri neuroni nel cervello. Alcuni dei protagonisti sono due tipi di neuroni ARC chiamati AGRP e POMC, che aiutano a regolare l'appetito in base a se il corpo ha mangiato di recente. Un'altra parte dell'ipotalamo, chiamata VMH, funge da segnale per quando smettere di mangiare, rilevando i livelli di glucosio nel sangue.
Oltre ai neuroni, ci sono anche cellule di supporto chiamate tanyciti nel terzo ventricolo del cervello, che aiutano a trasmettere segnali da e verso i neuroni. Problemi con queste cellule cerebrali possono portare a condizioni metaboliche come l'obesità e il diabete di tipo 2. La ricerca sugli ormoni che controllano l'appetito, come la leptina, e sui nuovi farmaci per la perdita di peso che prendono di mira i recettori nel cervello, suggeriscono che questi meccanismi funzionano attraverso l'ipotalamo, ma c'è ancora bisogno di lavoro per capire appieno come operano.
La ricerca si è tipicamente concentrata su modelli animali, come i topi, per studiare lo sviluppo e la funzione dell'ipotalamo. Tuttavia, studiare l'ipotalamo umano è stato difficile a causa della sua posizione nel cervello. Gli scienziati hanno iniziato a sviluppare neuroni umani da cellule staminali per studiare meglio come il cervello controlla la fame e il metabolismo, il che potrebbe anche aiutare a scoprire nuovi farmaci per queste condizioni. Nonostante questi progressi, è stata una sfida creare modelli accurati dell'ipotalamo a causa della complessità delle sue cellule.
Sviluppo di modelli umani dell'ipotalamo
In recenti studi, i ricercatori hanno sviluppato nuovi modi per guidare le cellule staminali umane a diventare diversi tipi di neuroni trovati nell'ipotalamo, come AGRP, POMC, GHRH, PNOC, NR5A1 e tanyciti. Hanno scoperto che aggiungere determinati fattori di crescita a momenti specifici durante il processo di sviluppo cellulare era fondamentale per creare questi tipi di neuroni. In particolare, il timing di un fattore chiamato BMP ha influenzato se le cellule si sviluppassero in neuroni di tipo ARC o in altri tipi di neuroni.
Il team ha verificato che i neuroni umani prodotti in laboratorio funzionassero correttamente utilizzando vari metodi per misurare la loro attività e risposta ai segnali. Hanno persino testato questi neuroni trapiantandoli nei ratti, dimostrando che potevano svilupparsi nei tipi di neuroni desiderati in un organismo vivente.
Utilizzando tecniche avanzate di coltura cellulare, i ricercatori hanno creato modelli dettagliati del nucleo arcuato, che è un’area chiave per il controllo dell'appetito nell'ipotalamo. Questi modelli aiutano gli scienziati a capire come si sviluppano diversi tipi di neuroni e come possono essere influenzati da vari fattori.
Composizione cellulare dei neuroni ARC
Per determinare quali tipi di neuroni erano presenti nelle loro colture, i ricercatori hanno analizzato le cellule che hanno creato in diverse fasi di sviluppo. Hanno scoperto che la maggior parte di esse erano cellule progenitrici specifiche che alla fine si sono trasformate in neuroni maturi. Solo una piccola frazione delle cellule non faceva parte della popolazione prevista.
Man mano che le cellule maturavano, producevano una gamma diversificata di neuroni ARC. Questo includeva il riconoscimento di più sottotipi di neuroni POMC e vari altri tipi di neuroni come AGRP e GHRH che giocano ruoli significativi nella regolazione dell'appetito.
I ricercatori hanno anche valutato come le popolazioni neuronali differissero nelle colture 2D e 3D. Hanno scoperto che le colture 3D erano particolarmente buone per generare alcuni tipi di neuroni, come i neuroni AGRP. C'erano differenze nelle proporzioni dei tipi di neuroni nelle diverse colture, indicando che l'ambiente influenzava come si sviluppavano queste cellule.
Test funzionali dei neuroni ARC
Il passo successivo ha comportato il test per vedere se questi neuroni potevano rispondere a segnali esterni, come l'ormone della fame leptina. Hanno confermato che i neuroni esprimevano recettori per la leptina, dimostrando che potevano interagire con questo ormone. Quando i neuroni erano stimolati con leptina, mostravano una forte risposta, suggerendo che erano capaci di funzionare come veri neuroni cerebrali.
Per convalidare ulteriormente i loro risultati, i ricercatori hanno trapiantato queste colture neuronali nei ratti. Sono stati in grado di osservare come i neuroni derivati dall'uomo crescessero e si sviluppassero in un organismo vivente. I neuroni trapiantati prosperavano e sviluppavano caratteristiche simili a quelle dei neuroni nativi dei ratti.
Tanyciti: le cellule di supporto
I ricercatori hanno anche esaminato come i tanyciti, le cellule di supporto dell'ARC, si sviluppassero nelle loro colture. Hanno scoperto che queste cellule potevano differenziarsi dagli stessi tipi di progenitori dei neuroni. Analizzando l'espressione genica, hanno dimostrato che questi tanyciti avevano caratteristiche distinte rispetto ad altri tipi di cellule cerebrali.
I tanyciti sono importanti perché giocano un ruolo nel trasmettere segnali nell'ipotalamo. Aiutano a rilevare nutrienti e ormoni che influenzano l'equilibrio energetico. I ricercatori hanno dimostrato che il loro modello poteva imitare il comportamento dei tanyciti in risposta ai segnali del corpo, confermando ulteriormente il potenziale dei loro modelli in vitro.
Tempistica del BMP e il suo impatto sullo sviluppo
Una parte cruciale della ricerca riguardava comprendere come il timing del fattore di crescita BMP influenzasse lo sviluppo dei neuroni. I ricercatori hanno scoperto che il momento di aggiunta del BMP alle colture era significativo per determinare se le cellule diventassero neuroni AGRP o altri tipi di cellule.
Hanno testato vari scenari di timing per vedere come questo influenzasse l'espressione di geni collegati a specifici tipi di neuroni. Attraverso questi esperimenti, hanno scoperto che punti temporali specifici erano vitali per produrre neuroni AGRP, mentre segnali BMP più precoci portavano allo sviluppo di altri tipi di cellule neuronali.
Regolando quando e per quanto tempo è stato aggiunto il BMP, gli scienziati potevano guidare lo sviluppo delle cellule staminali verso destini neuronali specifici. Questo lavoro aiuta a chiarire come i complessi percorsi di segnalazione durante lo sviluppo possano essere controllati per creare tipi di cellule desiderati.
Implicazioni per la ricerca metabolica
La possibilità di generare neuroni ipotalamici umani in laboratorio ha importanti implicazioni per comprendere e trattare i disturbi metabolici. Utilizzando questi modelli, i ricercatori possono studiare come vari fattori influenzano l'appetito e la regolazione energetica. Possono anche esplorare come diverse mutazioni genetiche impattino i percorsi metabolici legati a malattie come l'obesità e il diabete.
Questi modelli offrono anche una piattaforma per testare nuovi farmaci mirati a trattare i disturbi metabolici. Osservando come questi farmaci influenzano i neuroni coltivati, i ricercatori possono ottenere spunti sui potenziali meccanismi terapeutici e sugli esiti. Questo potrebbe accelerare lo sviluppo di trattamenti mirati per condizioni che derivano da disfunzioni metaboliche.
Direzioni future
Andando avanti, i ricercatori intendono perfezionare i loro protocolli per produrre tipi di neuroni ancora più specifici all'interno dell'ipotalamo. Sperano di scoprire ulteriori fattori che influenzano il destino neuronale e trovare modi per meglio imitare l'ambiente in vivo.
Inoltre, il lavoro continuo per caratterizzare le proprietà funzionali dei diversi tipi di neuroni potrebbe portare a una comprensione più profonda di come interagiscono tra loro. Gli scienziati sono anche interessati ad esplorare ulteriormente il ruolo dei tanyciti e capire le loro funzioni specifiche all'interno dei meccanismi di equilibrio energetico del corpo.
Lo sviluppo di modelli in vitro affidabili dell'ipotalamo umano apre la strada a una comprensione più dettagliata di come i nostri corpi regolano la fame e l'immagazzinamento energetico. Con la ricerca continua, questi modelli possono fornire spunti preziosi che potrebbero portare a migliori trattamenti per le malattie metaboliche.
Conclusione
In sintesi, i ricercatori hanno fatto significativi progressi nello sviluppo di modelli ipotalamici umani da cellule staminali. Manipolando vari percorsi di segnalazione, in particolare attraverso un attento timing dell'esposizione al BMP, hanno generato con successo una gamma di importanti tipi di neuroni all'interno dell'ARC, oltre a tanyciti di supporto. Questi modelli non solo forniscono uno strumento potente per investigare i meccanismi sottostanti dell'appetito e della regolazione energetica, ma presentano anche possibilità entusiasmanti per la futura ricerca e lo sviluppo terapeutico nella salute metabolica.
Titolo: Generation of human appetite-regulating neurons and tanycytes from stem cells
Estratto: The balance between energy intake and expenditure is controlled by the hypothalamus, a small brain region characterised by high neuronal diversity. Specifically, the arcuate nucleus (ARC) and ventromedial hypothalamus (VMH) are key hypothalamic nuclei controlling appetite through behavioural response to circulating humoral signals. Yet, despite their physiological importance, the cellular and functional characteristics of this highly specialised neural region has been studied mainly in animals due to a lack of human models. Here, we fine-tuned the differentiation of human pluripotent stem cells toward the ARC and VMH hypothalamic nuclei and identified key subtype-specific progenitor markers of these subregions. We demonstrate that the timing for initiation and termination of bone morphogenetic protein (BMP) signalling is essential for controlling subregional specification of tuberal hypothalamic progenitors along the anterior-posterior axis, balancing VMH versus ARC fates. A particular population of SHH-/NKX2.1+/FGF10high/RAXhigh/TBX3high posterior tuberal progenitors was identified as the source for generation of ARC-associated agouti-related peptide (AGRP) neurons and tanycytes whilst anterior tuberal SHH+/NKX2.1+/FGF10low/RAXlow/TBX3low progenitors generated VMH phenotypes including NR5A1 neurons. Upon maturation in vitro and in xenografts, ARC-patterned progenitors gave rise to key appetite-regulating cell types including those producing AGRP, prepronociceptin (PNOC), growth hormone-releasing hormone (GHRH), thyrotropin-releasing hormone (TRH) and pro-opiomelanocortin (POMC), as well as tanycyte glial cells. Differentiated ARC cultures showed high transcriptomic similarity to the human ARC and displayed evidence of functionality by AGRP secretion and responsiveness to leptin and fibroblast growth factor 1 (FGF1). In summary, our work provides insights into the developmental lineages underlying hypothalamic subregional specification and enables access to highly characterised human ARC and VMH cultures, which will provide novel opportunities for investigating the cellular and molecular pathways triggered by obesity-associated genetic variants and weight-regulating stimuli.
Autori: Agnete Kirkeby, Z. Abay-Norgaard, A. K. Mueller, E. Hanninen, D. Rausch, L. Piilgaard, J. B. Christensen, S. Peeters, A. L. Schorling, A. Salvador, V. Nikulina, Y. K. Li, J. Kajtez, T. H. Pers
Ultimo aggiornamento: 2024-07-16 00:00:00
Lingua: English
URL di origine: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.07.11.603039
Fonte PDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.07.11.603039.full.pdf
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