La dynamique des forces cellulaires et de la santé des tissus
Explorer comment les forces cellulaires influencent la formation des tissus et les processus de guérison.
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Table des matières
- Méthodes pour étudier les forces cellulaires
- Le rôle de l'adhésion et de la rigidité
- Observations du comportement cellulaire
- Ablation au laser et mesures des forces
- Contractilité non uniforme à travers les monocouches
- Implications pour comprendre la mécanique des tissus
- Directions futures dans la recherche sur les tissus
- Source originale
Les cellules de notre corps ne sont pas juste des unités statiques ; elles poussent et tirent activement les unes contre les autres et leur environnement. Cette capacité à générer et transmettre des forces joue un rôle crucial dans divers processus biologiques, comme la formation des tissus, leur mouvement et leur guérison après une blessure. Ces forces sont principalement créées par une structure à l'intérieur de la cellule appelée cytosquelette actomyosine, qui interagit avec l'environnement extracellulaire grâce à des connexions spéciales connues sous le nom de complexes d'adhésion.
Quand les cellules se déplacent ou changent de forme, elles exercent du stress sur leurs cellules voisines et les surfaces auxquelles elles sont attachées. Ces interactions sont vitales pour des actions coordonnées comme la formation des organes, le mouvement en groupe et la guérison des blessures. Particulièrement dans les tissus épithéliaux-des feuillets de cellules qui tapissent les surfaces du corps-il y a un équilibre délicat entre les forces agissant à travers les connexions avec le substrat en dessous et celles agissant à travers les connexions avec les cellules voisines.
Malgré l'importance de ces interactions, les chercheurs essaient encore de comprendre comment le stress est transféré entre ces différentes connexions dans les cellules épithéliales. Ce manque de compréhension pose un défi, notamment en ce qui concerne la manière dont les cellules communiquent entre elles et coordonnent leurs activités durant des processus critiques comme le développement et la guérison.
Méthodes pour étudier les forces cellulaires
Pour analyser les forces produites par les cellules, les scientifiques utilisent diverses techniques. Une méthode en vue est la microscopie de traction. Dans cette approche, les chercheurs intègrent de minuscules billes dans un matériau flexible sur lequel les cellules grandissent. En suivant le mouvement de ces billes lorsque les cellules exercent des forces sur elles, les scientifiques peuvent déterminer la force de ces effets.
En examinant de petits groupes de cellules ou de plus grandes couches de cellules épithéliales, les chercheurs ont trouvé des incohérences dans la façon dont les forces sont équilibrées. Cela indique une relation complexe où les forces transmises des cellules vers leur environnement ne correspondent pas toujours aux forces partagées entre cellules voisines.
Une autre technique importante utilisée pour étudier les forces cellulaires est l'ablation au laser. En utilisant un laser focalisé pour couper à travers des connexions spécifiques entre les cellules, les scientifiques peuvent observer comment les cellules restantes se comportent après la coupure. Cela aide à comprendre comment les tensions et les forces sont distribuées dans les tissus et comment ils réagissent aux changements.
Par exemple, les chercheurs ont constaté que lorsque certaines connexions entre les cellules sont rompues, les connexions restantes ne se comportent parfois pas comme prévu. Cela suggère que les cellules pourraient ajuster comment elles exercent des forces en fonction des propriétés mécaniques de leur environnement, comme que le matériau sous-jacent soit souple ou rigide.
Le rôle de l'adhésion et de la rigidité
Les tissus ne sont pas uniformes ; ils peuvent changer de rigidité et de structure. Les chercheurs veulent comprendre comment l'arrangement de ces connexions-appelées Adhésions focales-affecte l'équilibre des forces dans les tissus. Par exemple, lorsque les cellules étaient cultivées dans un environnement en motif où les surfaces adhésives étaient limitées, les scientifiques ont observé que la distribution des forces changeait de manière significative.
Dans des expériences où des gels spéciaux étaient utilisés pour imiter différents niveaux de rigidité, les scientifiques ont découvert que lorsque les zones adhésives étaient restreintes (comme en forme d'anneau), les cellules avaient des distributions de forces différentes par rapport à lorsqu'elles avaient des zones adhésives plus larges (comme en forme de disque). Sur des surfaces plus souples, les cellules généraient et transmettaient plus de forces efficacement, tandis que sur des surfaces plus rigides, cette transmission était restreinte.
L'équilibre des forces changeait aussi selon la taille et la forme des groupes de cellules. Lorsque les adhésions focales étaient concentrées aux bords de ces groupes, les cellules réagissaient différemment aux changements de rigidité du substrat. Cela aide à clarifier comment les propriétés mécaniques de l'environnement peuvent influencer la manière dont les cellules collaborent dans les tissus.
Observations du comportement cellulaire
Lorsque les scientifiques ont cultivé certaines cellules épithéliales selon des motifs définis, ils ont remarqué que le comportement cellulaire variait considérablement selon le type de motif adhésif et la rigidité du substrat sous-jacent. Par exemple, les cellules sur des motifs en forme de disque avaient des distributions de forces différentes par rapport à celles sur des motifs en forme d'anneau.
Sur des motifs en disque, les forces de traction diminuaient à mesure que la rigidité du gel sous-jacent augmentait, suggérant que les cellules étaient moins capables d'exercer leurs forces dans des matériaux plus rigides. En revanche, pour les motifs en anneau, les forces de traction restaient relativement stables à travers différents niveaux de rigidité. Cela suggère que la manière dont les cellules sont disposées joue un rôle clé dans la gestion des forces qu'elles génèrent, indépendamment de la rigidité du matériau en dessous.
De plus, en examinant la distribution d'une protéine liée à la génération de forces, les chercheurs ont découvert qu'elle était plus concentrée à certains points dans le tissu. Cela indiquait que les cellules modifiaient leur structure interne en fonction de la rigidité de leur substrat. Par exemple, sur des surfaces plus souples, la distribution de la protéine était inégale et favorisait les bords, tandis que sur des surfaces plus rigides, la distribution devenait plus uniforme.
Ablation au laser et mesures des forces
Les expériences d'ablation au laser ont fourni des informations supplémentaires sur la façon dont les cellules réagissent aux changements mécaniques. Lorsque des sections des connexions adhésives des cellules étaient coupées, les chercheurs ont observé des zones de déformation, montrant comment la transmission de force changeait. La vitesse de recul des cellules après un tel événement a offert des aperçus sur les tensions internes présentes dans le tissu.
En utilisant ces données expérimentales, les scientifiques pouvaient modéliser comment les forces sont distribuées à travers un tissu et comment ces distributions changent lorsque l'environnement extérieur varie. Ce modèle était précieux pour comprendre pourquoi les cellules en anneau présentaient des comportements différents de celles en disque.
La relation entre force de traction et stress intercellulaire-forces passées entre cellules voisines-est devenue moins directe que prévu. La connexion directe attendue entre les deux ne tenait pas dans tous les cas. Au lieu de cela, les caractéristiques de l'arrangement des adhésions focales jouaient un rôle significatif dans la détermination de la manière dont les forces étaient partagées à travers un tissu.
Contractilité non uniforme à travers les monocouches
Les chercheurs ont examiné comment la capacité des cellules à générer des forces contractiles variait à travers une couche de cellules. Il a été observé que la contractilité-à quel point les cellules pouvaient tirer sur leurs connexions-n'était pas la même partout dans le tissu. Cette variation était influencée par la manière dont les cellules étaient disposées et par la rigidité de leur environnement.
Un point d'intérêt essentiel était la distribution d'une protéine appelée pMyoII, liée à la génération de force. Les scientifiques ont découvert que dans des monocouches sur des motifs en disque, les niveaux de pMyoII étaient relativement égaux à faible rigidité mais devenaient plus uniformes à mesure que la rigidité augmentait. En revanche, pour les motifs en anneau, il y avait plus de cette protéine présente aux bords à mesure que la rigidité augmentait, suggérant que différents environnements mécaniques entraînaient des dynamiques de forces variées.
Ces résultats indiquent qu'au fil du temps, les cellules ajustent leur contractilité en fonction des conditions environnantes, leur permettant de maintenir un équilibre nécessaire des forces. L'adaptabilité de ce comportement contractile est cruciale pour divers processus physiques, comme le développement et la guérison des tissus.
Implications pour comprendre la mécanique des tissus
En combinant des données expérimentales avec des modèles théoriques, les chercheurs espèrent clarifier comment les forces sont transmises au sein des tissus. Il est devenu clair que la manière dont les cellules exercent des forces-ainsi que la façon dont ces forces se propagent dans le tissu-a d'importantes implications pour de nombreux processus physiologiques.
Par exemple, lors de la guérison, les tissus doivent être capables de s'adapter à des conditions changeantes tout en maintenant leur intégrité structurelle. De même, dans les tissus en développement, les ajustements dans la transmission des forces peuvent influencer comment les organes se forment.
Cette recherche éclaire les complexités des interactions cellulaires dans les tissus et le rôle central des propriétés mécaniques. Comprendre ces dynamiques peut également conduire à des aperçus sur diverses maladies, comme le cancer, où les propriétés mécaniques des tissus sont altérées.
Directions futures dans la recherche sur les tissus
À l'avenir, les chercheurs s'intéressent à explorer comment ces principes mécaniques peuvent être appliqués à l'ingénierie tissulaire et à la médecine régénérative. En répliquant l'environnement mécanique des tissus, les scientifiques pourraient améliorer la croissance et la réparation des tissus dans les contextes cliniques.
De plus, comprendre les motifs spatiaux de contractilité au sein des tissus pourrait mener à de nouvelles stratégies pour traiter des maladies impliquant une mécanique tissulaire anormale. En se concentrant sur la manière dont les cellules détectent et réagissent à leur environnement mécanique, il pourrait être possible de développer des thérapies ciblant ces interactions.
En résumé, les relations entre les forces cellulaires, l'adhésion et les propriétés mécaniques sont d'une grande pertinence dans la compréhension du fonctionnement et de l'adaptation des tissus. À mesure que la recherche progresse, cela pourrait ouvrir la voie à des solutions innovantes pour divers problèmes de santé, en soulignant l'interaction cruciale entre les cellules et leur environnement.
Titre: Monolayer force generation and transmission is dictated by focal adhesion distribution
Résumé: For tissues to develop and maintain their function, cells must orchestrate their behaviour by generating and transmitting contractile forces. These forces are transmitted to their surrounding matrix or neighbouring cells via adhesion complexes. How tissues reach a force-balance is often assumed to involve intercellular stresses counterbalancing those in the substrate. However, experimental findings indicate that dampening focal adhesions can increase intercellular stresses. As the ECM is rarely uniform in composition or mechanical properties, it is important to understand how focal adhesions alter stress transmission and the force-balance of a tissue. To address this, we confined monolayers on disk or ring adhesive patterns to alter how they were bound to the substrate. Traction force microscopy and laser ablations of cell-cell junctions were used to examine stresses across epithelial monolayers whilst modulating substrate stiffness. We show that monolayers reach different force-balance states depending on focal adhesion distribution, with intercellular stresses not correlated with overall traction stresses on rings. Using an active matter model to examine the force-balance dynamics, we reveal that tissues reach a force-balance by generating non-uniform patterns of contractility linked to adhesion patterning. This work highlights the importance of considering the position and mechanical properties of cell-ECM and cell-cell attachments to capture the mechanical landscape of living tissues.
Auteurs: John Robert Davis, J. Solowiej-Wedderburn, S. L. Vega, J. A. Burdick, C. Dunlop, N. Tapon
Dernière mise à jour: 2024-04-10 00:00:00
Langue: English
Source URL: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.04.10.588783
Source PDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.04.10.588783.full.pdf
Licence: https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/
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