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Riboswitches et régulation des gènes : un regard de plus près

Examine comment les riboswitches contrôlent l'activité génétique en réponse aux métabolites.

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Les Riboswitches sont de petits morceaux d'ARN qui peuvent contrôler l'activité des gènes en réponse à des molécules spécifiques, surtout trouvés chez les bactéries. Ils sont généralement situés juste avant les gènes et peuvent allumer ou éteindre les gènes selon la présence de certains Métabolites. Cette capacité de régulation est obtenue par des changements dans leur structure. Les riboswitches peuvent passer entre deux formes, en fonction de la présence d'un métabolite. La partie du riboswitch qui se lie au métabolite s'appelle l'aptamère, et comprendre comment ça fonctionne est important pour saisir comment les riboswitches régulent les gènes.

Un exemple de riboswitch est le riboswitch SAM-I, qui réagit à la S-adénosyl méthionine (SAM). La liaison de SAM provoque des changements structurels qui influencent si un gène est exprimé ou non. En l'absence de SAM, le riboswitch permet la transcription du gène en aval. Quand SAM se lie, le riboswitch change de forme, empêchant la transcription. Ce processus implique des interactions complexes entre différentes parties de la Structure de l'ARN.

Le rôle des riboswitches

Les riboswitches jouent un rôle clé dans la régulation de l'expression des gènes. Ils aident les cellules à réagir aux changements de leur environnement en modifiant combien d'un gène particulier est exprimé. C'est surtout critique chez les bactéries, qui doivent souvent s'adapter rapidement à de nouvelles conditions. Les riboswitches fournissent un moyen aux cellules d'atteindre cette régulation sans avoir besoin de protéines, ce qui en fait un domaine d'étude fascinant.

La capacité des riboswitches à passer entre des formes actives et inactives est cruciale pour leur fonctionnement. Quand un métabolite spécifique se lie au riboswitch, ça peut déclencher un changement dans la structure de l'ARN. Ce changement structurel peut bloquer ou permettre l'expression des gènes, selon le contexte cellulaire.

Mécanisme de fonctionnement du riboswitch

Le riboswitch SAM-I fonctionne grâce à un domaine d'aptamère qui peut se lier à la SAM. Quand la SAM n'est pas présente, le riboswitch reste ouvert, permettant la transcription. Cependant, quand la SAM est présente, elle se lie à l'aptamère, provoquant un changement de forme et bloquant la transcription. Ce mécanisme est important pour réguler l'expression des gènes en réponse à la disponibilité de la SAM dans la cellule.

Le changement de conformation qui se produit lorsque la SAM se lie est significatif. La structure de l'ARN devient plus stable et peut former de nouvelles interactions, y compris la création d'une boucle ou d'un épingle à cheveux qui stoppe la transcription. Ça met en évidence comment les riboswitches ne sont pas juste des régulateurs passifs ; ils changent activement de forme pour contrôler l'expression des gènes.

L'importance du domaine d'aptamère

Le domaine d'aptamère est une partie critique du riboswitch. Il est responsable de la reconnaissance et de la liaison au métabolite. Cette liaison entraîne des changements dans la structure de l'ARN qui sont cruciaux pour son fonctionnement. Les chercheurs cherchent à comprendre comment la séquence des nucléotides dans l'aptamère encode l'information nécessaire pour ce changement structurel.

Les Aptamères peuvent avoir des structures différentes, et la façon dont ils se replient peut influencer leur capacité à se lier à des métabolites spécifiques. En analysant les séquences de différents aptamères, les scientifiques peuvent découvrir des motifs qui aident à prédire comment ces molécules se comporteront.

Comprendre la structure et la fonction de l'ARN

La relation entre la séquence et la structure de l'ARN est complexe. L'évolution a tendance à conserver les séquences qui sont importantes pour la fonction, ce qui suggère que l'étude de plusieurs séquences d'ARN peut révéler des idées significatives. En comparant les structures de différentes séquences d'ARN, les chercheurs peuvent prédire comment elles se comporteront.

Plusieurs méthodes sont utilisées pour analyser les structures de l'ARN. L'apprentissage automatique est devenu un outil populaire pour prédire les structures de l'ARN en fonction des séquences. Divers algorithmes visent à améliorer la précision de ces prévisions, facilitant ainsi la compréhension du fonctionnement de l'ARN.

Le défi de la conception de l'ARN

Concevoir des séquences d'ARN qui peuvent se replier en formes spécifiques ou effectuer certaines fonctions est un défi important. Les méthodes traditionnelles se concentrent souvent sur la prédiction des structures secondaires et ignorent les interactions tertiaires, qui peuvent être essentielles pour la fonction. Le besoin de nouvelles méthodes de conception qui peuvent prendre en compte tous les éléments structurels dans l'ARN est clair.

Les riboswitches présentent un problème de conception unique car leurs séquences doivent encoder différents états structurels et un mécanisme de commutation. Cela ajoute de la complexité au processus de conception, car à la fois la séquence et la structure doivent être optimisées pour la fonction.

Modèles génératifs pour la conception de l'ARN

Des modèles génératifs, comme les Machines de Boltzmann Restreintes (RBM), ont été développés pour créer des séquences d'ARN qui peuvent répondre à des objectifs de conception spécifiques. Ces modèles apprennent à partir de séquences d'ARN existantes et peuvent générer de nouvelles séquences qui respectent les règles apprises.

En utilisant des données provenant de riboswitches connus, les chercheurs peuvent entraîner des RBM pour comprendre les caractéristiques qui rendent ces structures d'ARN fonctionnelles. Le RBM peut ensuite proposer de nouvelles séquences qui pourraient fonctionner de manière similaire, permettant une approche plus systématique de la conception de l'ARN.

Validation expérimentale des conceptions d'ARN

Une fois de nouvelles séquences d'ARN générées, elles doivent être testées pour vérifier leur fonctionnalité. La méthode SHAPE-MaP est une méthode à haut débit pour évaluer la structure de l'ARN. Elle mesure la flexibilité de l'ARN à des sites spécifiques, fournissant des informations sur la façon dont l'ARN se replie.

En comparant les données structurelles des séquences conçues avec celles de séquences naturelles connues, les chercheurs peuvent déterminer si les nouveaux riboswitches créés réagissent efficacement à leurs métabolites correspondants. Cette étape de validation est cruciale pour confirmer que le processus de conception a été réussi.

Résultats des tests expérimentaux

Dans des études, un ensemble de séquences d'ARN naturelles liées au riboswitch SAM-I a été testé, et les résultats ont montré que la plupart des séquences réagissent à la SAM comme prévu. Elles ont montré des changements structurels clairs lors de la liaison, confirmant leur fonctionnalité.

Les séquences d'ARN générées ont également montré du potentiel. Une proportion importante de ces séquences conçues a démontré la capacité de changer de structure en réponse à la SAM. Cependant, le pourcentage de conceptions réussies était inférieur à celui observé dans les séquences naturelles, ce qui indique que, bien que les modèles RBM soient efficaces, ils n'atteignent pas encore le niveau d'optimisation trouvé dans la nature.

Aperçus de l'analyse des séquences

En examinant les séquences du riboswitch SAM-I et leurs structures correspondantes, les chercheurs ont identifié des sites clés essentiels pour la fonctionnalité du riboswitch. Ces sites emblématiques sont impliqués dans la liaison à la SAM et les changements structurels qui se produisent lorsque la SAM est présente.

Comprendre quels sites sont critiques pour la fonction peut éclairer les efforts de conception futurs. En se concentrant sur ces zones, les chercheurs peuvent créer des conceptions plus efficaces et explorer les limites de la fonctionnalité de l'ARN.

L'avenir de la conception de commutateurs ARN

Les résultats prometteurs des séquences d'ARN naturelles et conçues laissent entrevoir le potentiel des riboswitches à être utilisés dans diverses applications, y compris la régulation des gènes, l'ingénierie métabolique et la biologie synthétique. La capacité de créer des commutateurs ARN fonctionnels ouvre de nouvelles possibilités pour contrôler les processus biologiques.

Des recherches supplémentaires sont nécessaires pour affiner les méthodes de conception et améliorer la précision des prévisions. En intégrant de meilleures techniques d'apprentissage automatique et une validation expérimentale, les chercheurs visent à repousser les limites de ce qui est possible avec la conception de l'ARN.

Conclusion

Les riboswitches représentent un domaine passionnant de la biologie moléculaire, fournissant un aperçu de la façon dont l'ARN peut réguler l'expression des gènes. Comprendre les mécanismes derrière leur fonctionnement et développer des méthodes pour concevoir de nouvelles séquences d'ARN sont cruciaux pour élargir notre outil dans l'ingénierie génétique et la biologie synthétique.

À travers l'utilisation de techniques de modélisation avancées et de tests expérimentaux rigoureux, les scientifiques font des progrès dans la création de commutateurs ARN pouvant être utilisés dans des applications pratiques. Les travaux dans ce domaine continuent d'évoluer, promettant des solutions innovantes aux défis en génétique et biotechnologie.

Source originale

Titre: Designing molecular RNA switches with Restricted Boltzmann machines

Résumé: Riboswitches are structured allosteric RNA molecules that change conformation in response to a metabolite binding event, eventually triggering a regulatory response. Computational modelling of the structure of these molecules is complicated by a complex network of tertiary contacts, stabilized by the presence of their cognate metabolite. In this work, we focus on the aptamer domain of SAM-I riboswitches and show that Restricted Boltzmann machines (RBM), an unsupervised machine learning architecture, can capture intricate sequence dependencies induced by secondary and tertiary structure, as well as a switching mechanism between open and closed conformations. The RBM model is then used for the design of artificial allosteric SAM-I aptamers. To experimentally validate the functionality of the designed sequences, we resort to chemical probing (SHAPE-MaP), and develop a tailored analysis pipeline adequate for high-throughput tests of diverse homologous sequences. We probed a total of 476 RBM designed sequences in two experiments, showing between 20% and 40% divergence from any natural sequence, obtaining {approx} 30% success rate of correctly structured aptamers that undergo a structural switch in response to SAM.

Auteurs: Jorge Fernandez-de-Cossio-Diaz, P. Hardouin, F.-X. Lyonnet du Moutier, A. Di Gioacchino, B. Marchand, Y. Ponty, B. Sargueil, R. Monasson, S. Cocco

Dernière mise à jour: 2024-04-20 00:00:00

Langue: English

Source URL: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2023.05.10.540155

Source PDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2023.05.10.540155.full.pdf

Licence: https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/

Changements: Ce résumé a été créé avec l'aide de l'IA et peut contenir des inexactitudes. Pour obtenir des informations précises, veuillez vous référer aux documents sources originaux dont les liens figurent ici.

Merci à biorxiv pour l'utilisation de son interopérabilité en libre accès.

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