Avancées en protéomique spatiale : une étude comparative
Cette étude compare des méthodes pour analyser des protéines dans des échantillons de tissus.
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Table des matières
- Méthodes Utilisées en Omics Spatial
- Protéomique dans l'Analyse Spatiale
- Techniques Clés en Protéomique Spatiale
- Avantages de la Protéomique Spatiale
- Comparaison des Différentes Méthodes
- Conception de l'Étude
- Approches Expérimentales
- Résultats de l'Étude Comparative
- Effet de la Variabilité des Tissus
- Caractérisation des Caractéristiques Tissulaires
- Visualisation des Données du Protéome
- Découverte de Modèles Cachés
- Découverte de Clusters de Protéines
- Conclusions et Directions Futures
- L'Importance des Pratiques de Recherche Éthiques
- Source originale
- Liens de référence
L'omics spatial est un domaine scientifique qui étudie comment les tissus sont structurés et fonctionnent en observant plein de biomolécules en même temps. Cette technique aide les scientifiques à voir comment différentes cellules interagissent entre elles dans des tissus sains et malades. Grâce à des méthodes d'imagerie et de séquençage avancées, les chercheurs peuvent mieux comprendre les microenvironnements des tissus.
Méthodes Utilisées en Omics Spatial
Les outils utilisés en omics spatial incluent des techniques comme la transcriptomique spatiale Visium, MERFISH, Slide-Seq, et d'autres. Ces méthodes aident à mesurer l'ARN, qui joue un rôle clé dans l'expression des gènes dans les cellules. Mais, même si ces techniques sont bonnes pour montrer les niveaux d'ARN, elles ne peuvent pas mesurer les protéines directement, qui sont cruciales pour plein de fonctions cellulaires.
Protéomique dans l'Analyse Spatiale
Pour analyser les protéines dans les tissus, les scientifiques utilisent souvent des méthodes basées sur les anticorps comme l'immunohistochimie, GeoMx et la Spectrométrie de masse. Ces techniques peuvent donner des détails sur les quantités de protéines à une très fine échelle. Cependant, elles dépendent de la qualité des anticorps disponibles, ce qui peut parfois limiter leur efficacité.
Une méthode alternative utilise la spectrométrie de masse, qui peut mesurer des milliers de protéines dans un seul échantillon de tissu. Les avancées récentes ont permis d'étudier les protéines au niveau des cellules individuelles, ce qui est un grand pas en avant. Les améliorations dans la façon dont les protéines sont marquées et séparées ont aussi aidé les scientifiques à analyser beaucoup d'échantillons plus rapidement.
Techniques Clés en Protéomique Spatiale
Pour la protéomique spatiale, les scientifiques commencent souvent par isoler des échantillons en utilisant des techniques comme la microdissection au laser. Après avoir isolé les échantillons de tissu, ils peuvent décomposer les protéines en plus petits morceaux pour l'analyse. Le système nanoPOTS est une approche moderne qui permet un meilleur profilage des protéines à une fine résolution.
Une autre technique émergente est la Deep Visual Proteomics, qui combine imagerie, apprentissage machine et spectrométrie de masse. Cette méthode permet d'étudier les protéines de manière très détaillée au niveau des cellules individuelles.
Avantages de la Protéomique Spatiale
La protéomique spatiale gagne en popularité car elle offre une vue détaillée de l'organisation des tissus. En décomposant le tissu en plus petites sections ou "pixels", les chercheurs peuvent analyser les quantités de protéines en utilisant diverses stratégies. Cela inclut des Méthodes sans étiquettes et celles qui utilisent des étiquettes chimiques pour identifier les protéines.
Bien que les méthodes sans étiquettes soient simples et efficaces, elles peuvent manquer de la rapidité nécessaire pour des études plus larges. D'un autre côté, les techniques étiquetées peuvent traiter beaucoup d'échantillons rapidement, mais elles parfois compromettent le détail de l'information.
Comparaison des Différentes Méthodes
Quand ils comparent différentes méthodes de mesure des protéines, les chercheurs recherchent souvent combien de protéines ils peuvent détecter, la rapidité de la méthode et la précision des résultats. Dans une étude récente, les chercheurs ont regardé de près deux méthodes : l'approche sans étiquette et celle utilisant un marquage isobarique. Ils ont trouvé que la technique sans étiquette fournissait généralement une couverture plus profonde des protéines et une quantification plus précise.
Conception de l'Étude
Pour comparer équitablement la performance de ces deux approches, les chercheurs ont collecté des échantillons de tissu pancréatique d'un donneur humain en bonne santé. Ils se sont concentrés sur différentes zones du tissu, spécifiquement les régions des îlots et les régions acinaires environnantes. En utilisant une taille de pixel spécifique, ils voulaient équilibrer le succès de la collecte avec les variations naturelles du tissu.
Approches Expérimentales
Dans leurs expériences, les chercheurs ont utilisé trois principaux flux de travail : la méthode sans étiquette, TMT-MS2 et TMT-MS3. Chaque approche a ses forces et faiblesses. Par exemple, bien que la méthode sans étiquette ait donné la couverture la plus approfondie des protéines, les méthodes TMT permettaient un débit plus élevé, ce qui permettait de traiter plus d'échantillons à la fois.
Les chercheurs ont analysé les protéines à partir des pixels de tissu pour comprendre les forces et les limites de chaque méthode. Ils ont découvert que bien que les techniques sans étiquette fournissaient des mesures plus précises, les méthodes TMT étaient meilleures pour des études nécessitant l'examen de nombreux échantillons en peu de temps.
Résultats de l'Étude Comparative
Les résultats de l'étude ont montré que la méthode sans étiquette détectait un plus grand nombre de protéines par rapport aux méthodes TMT. En termes de précision, l'approche sans étiquette a également montré des résultats plus fiables à travers les différents échantillons.
En général, les deux méthodes TMT offraient une bonne concordance dans l'identification des protéines présentes en quantités variées selon les types de tissu. Fait intéressant, alors que TMT-MS3 devait améliorer la précision, il n'a pas surpassé significativement TMT-MS2.
Effet de la Variabilité des Tissus
En raison de la nature du tissu étudié, qui avait un mélange de types cellulaires, il était important de contrôler la variabilité biologique. En sélectionnant des pixels spécifiques dans des zones bien définies du tissu, les chercheurs ont réussi à minimiser les variations inattendues. Cela les a aidés à produire des données plus cohérentes et fiables.
Caractérisation des Caractéristiques Tissulaires
Après avoir évalué les aspects techniques des méthodes de quantification, les chercheurs ont utilisé les données pour explorer les caractéristiques du tissu. En utilisant des techniques de regroupement, ils pouvaient catégoriser les pixels en groupes basés sur la composition cellulaire des tissus. Ce processus a révélé deux principaux clusters : un représentant les cellules acinaires et un autre représentant les cellules des îlots.
Visualisation des Données du Protéome
Pour visualiser les données spatiales, les chercheurs ont utilisé des techniques de réduction de dimensionalité qui simplifiaient la compréhension des relations complexes entre différents types de cellules. Cela a aidé à clarifier à quel point différentes régions du tissu étaient proches les unes des autres en termes de présence de protéines.
L'étude a également souligné l'importance des marqueurs bien connus pour identifier les différents types de cellules présents dans le tissu. Ce processus a impliqué d'associer les protéines identifiées à des marqueurs précédemment documentés, renforçant ainsi l'exactitude des résultats de regroupement.
Découverte de Modèles Cachés
Un des avantages clés de l'analyse spatiale approfondie est sa capacité à révéler des modèles cachés qui peuvent ne pas être visibles par une évaluation morphologique classique. En utilisant des algorithmes spécialisés, les chercheurs ont pu identifier des groupes de protéines affichant des motifs d'abondance similaires à travers le tissu.
Découverte de Clusters de Protéines
Dans leur analyse, les chercheurs ont identifié plusieurs clusters de protéines enrichis soit dans les cellules des îlots, soit dans les cellules acinaires. Ils ont pu relier des protéines spécifiques à certaines caractéristiques tissulaires, permettant une meilleure compréhension de la biologie sous-jacente.
En analysant soigneusement les protéines dans le contexte de leurs emplacements spatiaux, ils ont pu tirer des conclusions sur la façon dont différents types de cellules fonctionnent ensemble dans l'environnement tissulaire. Cela incluait des aperçus sur comment diverses protéines contribuent à des fonctions comme le signalement cellulaire et le métabolisme.
Conclusions et Directions Futures
L'étude comparative de différentes méthodes Protéomiques souligne l'importance de choisir la bonne approche en fonction des objectifs de recherche. Les méthodes sans étiquette excellent en profondeur et en précision, ce qui les rend adaptées pour des études qui se concentrent sur moins d'échantillons avec des données plus complexes. En revanche, les méthodes basées sur TMT offrent rapidité et efficacité, ce qui peut être inestimable dans des projets à grande échelle.
Alors que le domaine de l'omics spatial continue de croître, la combinaison des techniques d'imagerie traditionnelles avec le profilage protéomique moderne devrait probablement donner lieu à de nouvelles perspectives sur les fonctions des tissus en santé et en maladie. Comprendre ces dynamiques sera crucial pour explorer de nouvelles voies pour la recherche médicale et les thérapies potentielles pour diverses maladies.
De plus, les améliorations continues dans la technologie et la méthodologie amélioreront encore les capacités de la protéomique spatiale, permettant aux chercheurs de s'attaquer à des questions biologiques de plus en plus complexes. Ces avancées pourraient également mener à la découverte de nouveaux biomarqueurs ou de cibles thérapeutiques, contribuant finalement à de meilleurs diagnostics et traitements en milieu clinique.
L'Importance des Pratiques de Recherche Éthiques
Dans la recherche impliquant des tissus humains, les considérations éthiques jouent un rôle vital. Les chercheurs doivent respecter des directives strictes lors de l'obtention et du traitement des échantillons. S'assurer du consentement éclairé et suivre les réglementations aide à protéger les donneurs et à maintenir l'intégrité du processus de recherche. Ce cadre éthique est essentiel pour favoriser la confiance et faire avancer les connaissances scientifiques de manière responsable.
En respectant ces valeurs, le domaine de l'omics spatial peut continuer à progresser et à contribuer de manière significative à notre compréhension de la biologie et de la médecine.
Titre: Proteome-scale tissue mapping using mass spectrometry based on label-free and multiplexed workflows
Résumé: Multiplexed bimolecular profiling of tissue microenvironment, or spatial omics, can provide deep insight into cellular compositions and interactions in healthy and diseased tissues. Proteome-scale tissue mapping, which aims to unbiasedly visualize all the proteins in a whole tissue section or region of interest, has attracted significant interest because it holds great potential to directly reveal diagnostic biomarkers and therapeutic targets. While many approaches are available, however, proteome mapping still exhibits significant technical challenges in both protein coverage and analytical throughput. Since many of these existing challenges are associated with mass spectrometry-based protein identification and quantification, we performed a detailed benchmarking study of three protein quantification methods for spatial proteome mapping, including label-free, TMT-MS2, and TMT-MS3. Our study indicates label-free method provided the deepest coverages of [~]3500 proteins at a spatial resolution of 50 {micro}m and the highest quantification dynamic range, while TMT-MS2 method holds great benefit in mapping throughput at >125 pixels per day. The evaluation also indicates both label-free and TMT-MS2 provide robust protein quantifications in identifying differentially abundant proteins and spatially co-variable clusters. In the study of pancreatic islet microenvironment, we demonstrated deep proteome mapping not only enables the identification of protein markers specific to different cell types, but more importantly, it also reveals unknown or hidden protein patterns by spatial co-expression analysis.
Auteurs: Ying Zhu, Y. Kwon, J. Woo, F. Yu, S. M. Williams, L. M. Markillie, R. J. Moore, E. S. Nakaysu, J. Chen, M. Campbell-Thompson, C. E. Mathews, A. I. Nesvizhskii, W.-J. Qian
Dernière mise à jour: 2024-07-10 00:00:00
Langue: English
Source URL: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.03.04.583367
Source PDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.03.04.583367.full.pdf
Licence: https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/
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