Amélioration de la production de n-caprylate grâce aux interactions microbiennes
Cette étude montre comment la coopération microbienne améliore l'efficacité de la production de n-caprylate.
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Table des matières
- Processus de Production
- Défis de Production
- Recherches Précédentes
- Investigation Expérimentale
- Configuration des Bioréacteurs
- Opérations Périodiques
- Milieu et Inoculation
- Expériences pour Suivre les Progrès
- Méthodes d'Analyse
- Aperçus de la Communauté Microbienne
- Le Rôle des Métabolites Intermédiaires
- Gestion de l'Oxygène et Taux de Production
- Conclusions de l'Étude
- Directions Futures
- Source originale
L'élongation de chaîne microbienne, c'est une méthode pour fabriquer des carboxylates à chaîne moyenne, qui sont des produits utiles pour diverses industries. Ces carboxylates, avec des chaînes de carbone de 6 à 12 atomes, sont utilisés pour créer des parfums, la livraison de médicaments, et même comme agents antimicrobiens. En plus, ils servent de blocs de construction pour fabriquer d'autres produits chimiques. Par exemple, l'un des produits, le n-caprylate, peut être transformé en carburant liquide utilisé dans l'aviation.
Processus de Production
Le processus implique des bactéries spécifiques qui aident à allonger des chaînes de carbone plus courtes en plus longues. Ces bactéries transforment des carboxylates à chaîne courte comme l'acétate (2 atomes de carbone) et le n-butyrate (4 atomes de carbone) en plus longs comme le n-caproate (6 atomes de carbone) et le n-caprylate (8 atomes de carbone). Cela se passe généralement dans des environnements sans oxygène, souvent en utilisant de l'Éthanol comme partie du processus.
La production est efficace avec des cultures ouvertes de ces bactéries. L'accent sur le n-caprylate est dû à sa valeur plus élevée comparée à celles à chaîne plus courte. Cependant, produire du n-caprylate à partir de sources comme l'huile de palme et de coco n'est pas durable, ce qui rend nécessaire de trouver de meilleures méthodes de production.
Défis de Production
Un des plus grands défis pour produire du n-caprylate est de contrôler certains archées (un type de micro-organisme) qui peuvent produire du méthane au lieu des carboxylates. Il y a deux principaux types de ces archées : celles qui transforment l'acétate en méthane et celles qui transforment l'hydrogène et le dioxyde de carbone en méthane.
La présence d'oxygène peut nuire au processus. Par exemple, maintenir un environnement légèrement acide peut aider à inhiber les archées qui décomposent l'acétate. De plus, l'équilibre des niveaux d'hydrogène peut influencer l'efficacité de la production de n-caprylate. Cela montre qu'il faut un contrôle précis des conditions environnementales dans le processus de production.
Recherches Précédentes
Alors que des recherches antérieures avaient eu du succès dans la production de n-caprylate en utilisant de l'éthanol et de l'acétate, il était flou de savoir exactement comment les bactéries passaient de ces substances au n-caprylate. Les voies proposées montraient que certaines bactéries, comme Clostridium kluyveri, pourraient être cruciales, mais elles ne produisaient pas des quantités significatives de n-caprylate à cause de leur dépendance à des réactions enzymatiques non spécifiques.
Investigation Expérimentale
Notre investigation visait à comprendre la production à long terme de n-caprylate dans deux types de bioréacteurs en utilisant des milieux définis avec des niveaux élevés d'éthanol et d'acétate mais sans ajout d'extrait de levure. Nous avons suivi comment les variations des niveaux d'oxygène affectaient la production de n-caprylate et surveillé divers groupes Microbiens impliqués dans ce processus.
Plusieurs expériences nous ont aidés à clarifier les voies et les différentes espèces de bactéries impliquées. Nous avons aussi réalisé des métagénomiques, ce qui a aidé à identifier les espèces clés impliquées dans la production de n-caprylate.
Configuration des Bioréacteurs
Deux types de bioréacteurs ont été mis en place pour maintenir le processus de fermentation tout en extrayant les carboxylates produits. Chaque bioréacteur avait des contrôles environnementaux spécifiques, comme la température et le pH, qui étaient strictement régulés. Un bioréacteur avait un matériel de remplissage spécial pour améliorer la communauté microbienne, tandis que l'autre se concentrait sur l'accumulation de biomasse solide sans ce matériel.
Les deux systèmes partageaient des méthodes d'extraction pour prendre les produits chimiques désirés du bouillon de fermentation. Cela impliquait l'utilisation de pompes et de membranes spéciales pour séparer efficacement les carboxylates.
Opérations Périodiques
Avant l'opération principale, nous avons entrepris une phase pré-opérationnelle pour définir les paramètres nécessaires pour une production stable. L'opération a duré plus de deux ans, durant lesquels nous avons fait des ajustements basés sur les performances des bioréacteurs.
Nous avons divisé l'opération en quatre périodes principales selon la gestion des niveaux d'oxygène. Celles-ci variaient de la production stable avec une intrusion passive d'oxygène à des environnements plus contrôlés avec un accès restreint à l'oxygène.
- Production Stable : Au début, nous avions une gamme de carboxylates produits, le n-caprylate étant le produit principal.
- Période de Transition : Nous avons commencé à limiter l'oxygène entrant dans le système pour observer comment cela affectait la production.
- Production Minimale : À ce moment-là, nous avons complètement retiré l'oxygène, ce qui a entraîné des taux de production plus bas.
- Production Fluctuante : Ici, nous avons réintroduit des quantités contrôlées d'oxygène pour évaluer ses effets.
Au fil du temps, diverses modifications apportées aux bioréacteurs ont eu un impact significatif sur les taux de production, montrant à quel point les niveaux d'oxygène étaient importants pour le processus.
Milieu et Inoculation
Le milieu de production que nous avons utilisé était basé sur des études précédentes sur des bactéries capables d'allonger les chaînes de carbone. Nous nous sommes concentrés sur un mélange d'éthanol et d'acétate, avec des ratios de concentration spécifiques qui se sont révélés efficaces.
L'inoculation des bioréacteurs a impliqué de transférer des communautés microbiennes établies dans le système. Malgré le caractère ouvert de nos bioréacteurs, qui permettait l'entrée de microbes externes, nous visons à maintenir un équilibre dynamique des espèces nécessaires.
Expériences pour Suivre les Progrès
Nous avons mené diverses expériences pour tracer comment différentes conditions impactaient la production de carboxylates. À travers ces expériences en bouteille, nous avons simulé des environnements aérobies et anaérobies pour voir comment cela influençait les activités microbiennes.
En traçant des isotopes, nous avons pu observer la conversion de l'éthanol en divers carboxylates et suivre la composition des produits chimiques au fil du temps. Cela a révélé que la présence d'oxygène influençait significativement les types de carboxylates produits.
Méthodes d'Analyse
Des échantillons liquides des deux bioréacteurs ont été prélevés régulièrement pour analyse. Ces échantillons ont été conservés et analysés en utilisant plusieurs techniques pour quantifier les concentrations de carboxylates et suivre les changements de la communauté microbienne.
D'autres techniques comme la métagénomique et le profilage métabolique ont été utilisées pour obtenir des informations plus profondes sur les activités microbiennes et les voies utilisées pour produire du n-caprylate.
Aperçus de la Communauté Microbienne
À travers nos analyses, nous avons trouvé que la communauté microbienne se composait de multiples espèces pouvant prospérer sous les conditions établies dans les bioréacteurs. Une découverte clé a été la présence de bactéries aérobies qui pouvaient convertir l'éthanol en métabolites intermédiaires utiles.
Ces espèces aérobies ont joué un rôle significatif dans la conversion initiale de l'éthanol en d'autres composés avant que l'élongation de chaîne anaérobie ne se produise, suggérant une interaction complexe au sein de la communauté microbienne.
Le Rôle des Métabolites Intermédiaires
Nous avons émis l'hypothèse que les bactéries aérobies produisaient des métabolites qui aidaient à accélérer la production de n-caprylate lorsque les conditions devenaient anaérobies. Cela a montré un chemin potentiel pour une production efficace, avec la phase aérobique posant les bases pour le processus anaérobie.
De plus, la présence de métabolites spécifiques comme le succinate et le pyroglutamate semblait améliorer les taux de conversion, ce qui indique que ces composés pourraient être cruciaux pour optimiser la production.
Gestion de l'Oxygène et Taux de Production
La gestion de l'oxygène s'est révélée être un facteur clé pour atteindre des taux de production élevés de n-caprylate. La phase aérobique initiale a joué un rôle significatif dans la génération de métabolites, qui ont ensuite facilité la conversion efficace dans des conditions anaérobies.
Cependant, nous avons aussi constaté qu'un excès d'oxygène pouvait nuire à la production. L'équilibre était délicat, et des ajustements minutieux étaient nécessaires pour créer des conditions optimales pour les produits cibles.
Conclusions de l'Étude
En résumé, notre étude met en lumière l'importance des interactions microbiennes dans la production de n-caprylate par élongation de chaîne. Nous avons établi un réseau alimentaire dans les bioréacteurs où des espèces aérobies et anaérobies travaillaient ensemble, avec des métabolites spécifiques aidant dans le processus.
Bien que des progrès significatifs aient été réalisés, les travaux futurs se concentreront sur le perfectionnement de ces méthodes et la compréhension des mécanismes derrière les comportements distincts des voies de carbone affichées, surtout lors de la conversion du n-caproate en n-caprylate.
Directions Futures
Cette recherche ouvre la voie à une exploration plus approfondie de l'élongation de chaîne microbienne. Les études futures pourraient se concentrer sur l'optimisation de la composition de la communauté microbienne et des conditions environnementales pour améliorer les taux de production et le rendement.
Dans l'ensemble, nos résultats indiquent qu'un équilibre soigneux entre les processus aérobies et anaérobies peut améliorer considérablement l'efficacité de la production de carboxylates précieux comme le n-caprylate à partir de ressources renouvelables.
Titre: Toward industrial C8 production: Oxygen intrusion drives renewable n caprylate production from ethanol and acetate via intermediate metabolite production
Résumé: Previous bioreactor studies achieved high volumetric n-caprylate (i.e., n-octanoate) production rates and selectivities from ethanol and acetate with chain-elongating microbiomes. However, the metabolic pathways from the substrates to n-caprylate synthesis were unclear. We operated two n-caprylate-producing upflow bioreactors with a synthetic medium to study the underlying metabolic pathways. The operating period exceeded 2.5 years, with a peak volumetric n-caprylate production rate of 190 {+/-} 8.4 mmol C L-1 d-1 (0.14 g L-1 h-1). We identified oxygen availability as a critical performance parameter, facilitating intermediate metabolite production from ethanol. Bottle experiments in the presence and absence of oxygen with 13C-labeled ethanol suggest acetyl-coenzyme A-based derived production of n-butyrate (i.e., n-butanoate), n-caproate (i.e., n-hexanoate), and n-caprylate. Here, we postulate a trophic hierarchy within the bioreactor microbiomes based on metagenomics, metaproteomics, and metabolomics data, as well as experiments with a Clostridium kluyveri isolate. First, the aerobic bacterium Pseudoclavibacter caeni and the facultative anaerobic fungus Cyberlindnera jadinii converted part of the ethanol pool into the intermediate metabolites succinate, lactate, and pyroglutamate. Second, the strict anaerobic C. kluyveri elongated acetate with the residual ethanol to n-butyrate. Third, Caproicibacter fermentans and Oscillibacter valericigenes elongated n-butyrate with the intermediate metabolites to n-caproate and then to n-caprylate. Among the carbon chain-elongating pathways of carboxylates, the tricarboxylic acid cycle and the reverse {beta}-oxidation pathways showed a positive correlation with n-caprylate production. The results of this study inspire the realization of a chain-elongating production platform with separately controlled aerobic and anaerobic stages to produce n-caprylate renewably as an attractive chemical from ethanol and acetate as substrates. Broader contextNext to renewable electric energy, carbon-based chemicals have to be produced sustainably and independently from fossil sources. To meet this goal, we must expand the portfolio of bio-based conversion technologies on an industrial scale to cover as many target chemicals as possible. We explore the bioprocess of chain elongation to provide medium-chain carboxylates that can function as future platform chemicals in the circular economy. The most valuable medium-chain carboxylate produced with chain elongation is n-caprylate (i.e., n-octanoate). This molecule with eight carbon atoms in a row (C8) is challenging to produce renewably for the chemical industry. Previous reports elucidated that elevated ethanol-to-acetate ratios, which are found in syngas-fermentation effluent, stimulated n-caprylate production. Until now, studies have suggested that chain elongation from high concentrations of ethanol and acetate is a fully anaerobic process. We refine this view by showing a trophic hierarchy of aerobic and anaerobic microbes capable of facilitating this process. Appropriate oxygen supplementation enables the synthesis of succinate, lactate, and pyroglutamate that permit high-rate chain elongation to n-caprylate under anaerobic conditions. Given these results, future research should focus on the segregated study of aerobic and anaerobic microbes to further enhance the process performance to produce n-caprylate renewably at an industrial scale.
Auteurs: Largus T Angenent, K. Gemeinhardt, B. Seung Jeon, J. Nepomuscene Ntihuga, H. Wang, C. Schlaiss, T. N. Lucas, I. Bessarab, N. C. Nalpas, N. Zhou, J. G. Usack, D. Huson, R. Williams, B. Macek, L. Aristilde
Dernière mise à jour: 2024-07-17 00:00:00
Langue: English
Source URL: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.07.12.603245
Source PDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.07.12.603245.full.pdf
Licence: https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/
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