Simple Science

La science de pointe expliquée simplement

# Biologie # Génétique

CATALYTEC : Un nouvel espoir pour les diagnostics génétiques

Une méthode CRISPR innovante améliore l'analyse génétique des maladies rétiniennes.

Valentin J. Weber, Alice Reschigna, Maximilian-J. Gerhardt, Klara S. Hinrichsmeyer, Dina Y. Otify, Thomas Heigl, Frank Blaser, Isabelle Meneau, Martin Biel, Stylianos Michalakis, Elvir Becirovic

― 8 min lire


Avancée CRISPR dans les Avancée CRISPR dans les tests génétiques compréhension des troubles génétiques. Une nouvelle méthode améliore la
Table des matières

Les Maladies génétiques peuvent être galères à diagnostiquer, et étonnamment, même dans des pays bien équipés, pas mal de patients passent à côté des tests appropriés. Il y a un tas de technologies super comme le séquençage de nouvelle génération (NGS) qui peuvent aider à repérer les problèmes génétiques, mais c'est pas toujours parfait. Parfois, elles laissent passer des détails importants. Ça peut empêcher les patients d'obtenir les traitements qu'il leur faut ou de participer à des essais cliniques.

Le Rôle du Séquençage de Nouvelle Génération

Les technologies de séquençage de nouvelle génération (NGS), comme le séquençage du génome entier (WGS) et le séquençage de l'exome entier (WES), ont rendu le diagnostic des maladies génétiques plus accessible. Ces méthodes peuvent lire le code ADN d’une personne et repérer des Mutations qui pourraient provoquer des maladies. Cependant, chacune a ses inconvénients. Par exemple, le WES ignore beaucoup de régions non codantes importantes de l'ADN, ce qui peut impacter le fonctionnement des gènes. D’un autre côté, le WGS peut coûter cher et prendre beaucoup de temps, ce qui le rend moins accessible pour les diagnostics de routine.

Quand des mutations sont trouvées, c'est toujours important de vérifier comment ces changements affectent les niveaux d'ARNm, car ça peut indiquer si une mutation est vraiment nuisible. Malheureusement, les techniques actuelles pour le faire, comme les tests de minigènes, peuvent être compliquées et prendre beaucoup de temps. Certaines mutations qui semblent inoffensives peuvent quand même perturber le traitement de l'ARNm, un peu comme un petit caillou dans ta chaussure qui peut gâcher ta marche.

La Nécessité de Meilleures Techniques

Il y a un vrai besoin de méthodes plus simples et plus efficaces pour identifier et étudier les mutations qui affectent la manière dont l'ARNm est lu et traité. La meilleure façon de vérifier les transcrits des gènes est d'utiliser des échantillons de tissus des patients, mais ça peut être délicat. Certains tissus, comme la rétine-qui peut être pertinent pour les maladies de la vision-sont pas faciles à collecter parce que ça peut être invasif et risqué.

Pour régler ce problème, les scientifiques ont proposé une nouvelle approche appelée CATALYTEC. Cette méthode utilise une technologie appelée CRISPR pour activer des gènes dans des cellules humaines qui ont été rapidement isolées. CATALYTEC permet d'examiner des gènes spécifiques liés à des maladies rétiniennes héréditaires (IRDs) sans avoir à recourir à des procédures risquées.

Pourquoi se Concentrer sur Certains Gènes ?

Les scientifiques ont décidé de concentrer leurs efforts initiaux sur des gènes spécifiques connus pour être impliqués dans des maladies rétiniennes courantes, comme ABCA4, RPE65, MYO7A et USH2A. Pourquoi ces gènes ?

  1. Mutations Courantes : Ces gènes portent souvent des mutations qui peuvent mener à des maladies comme la maladie de Stargardt et l'amaurose congénitale de Leber.
  2. Grandes Structures Génétiques : Trois des quatre gènes ont de grandes structures, rendant plus difficile la détection des mutations, surtout dans les zones non codantes.
  3. Potentiel Thérapeutique : RPE65 est particulièrement important car il est impliqué dans une maladie qui peut être traitée avec une thérapie génique approuvée.

Passons aux Choses Sérieuses

Pour tester CATALYTEC, les scientifiques ont d'abord expérimenté la méthode sur un type de cellule appelé HEK293T. Ils ont utilisé une version modifiée du système CRISPR qui pouvait booster efficacement l'activité des gènes ciblés. En combinant différents composants et guides qui orientaient la machinerie CRISPR aux bons endroits, ils pouvaient activer ces gènes sans trop de tracas.

Après quelques essais et erreurs, ils ont réussi à activer tous les gènes ciblés en même temps sans perdre en efficacité. Ça voulait dire qu'ils pouvaient potentiellement analyser les causes génétiques des maladies de manière plus simple.

Le Défi de la Transfection des Cellules Primaires

Ensuite, il fallait savoir comment appliquer cette technologie sur de vraies cellules de patients, comme les PBMCs (un type de cellule sanguine) et les fibroblastes cutanés. Ils ont essayé différentes manières d'introduire leur système CRISPR dans ces cellules. Cependant, beaucoup de méthodes courantes, comme l'utilisation de phosphate de calcium ou de lipides, n'ont pas bien fonctionné. La plupart du temps, les cellules réagissaient à peine à l’introduction.

Les vecteurs lentiviraux, qui peuvent infecter des cellules non divisantes, semblaient prometteurs mais n'ont pas donné les résultats escomptés. Même avec plein d'optimisations, seules de faibles activations des gènes ont été observées. Du coup, les scientifiques ont changé d’approche parce qu'ils avaient besoin d'une méthode fiable pour appliquer CATALYTEC dans des situations de test réelles.

Trouver le Bon Compromis

Finalement, ils se sont concentrés sur une méthode appelée nucléofection, qui a bien envoyé leurs composants CRISPR. Cette méthode a été super efficace, menant à des augmentations significatives de l'activité des gènes pour ABCA4 et RPE65. Ils pouvaient détecter toute la gamme des transcrits de ces gènes, démontrant ainsi la capacité de la méthode.

Fait intéressant, ils ont découvert que MYO7A, l'un des gènes qu'ils étudiaient, était déjà exprimé dans les cellules primaires, ce qui a rendu les choses encore plus faciles. Mais ils ont aussi remarqué des défis avec USH2A, où ils ne voyaient que des parties du gène exprimées.

Tester les Eaux : Un Aperçu des Cellules de Patients

Les chercheurs ne se sont pas arrêtés là. Ils ont appliqué le protocole CATALYTEC à plusieurs patients avec des maladies rétiniennes confirmées. Chaque patient avait des histoires cliniques différentes, et bien que la plupart aient déjà passé des tests génétiques, seulement quelques-uns avaient des diagnostics clairs.

Après avoir analysé des échantillons de ces patients, ils ont confirmé certaines mutations dans des gènes liés à leurs maladies rétiniennes. Par exemple, un patient avait une mutation spécifique dans RPE65 provoquant un comportement anormal de l'épissage dans son ARN. C'est comme cuire un gâteau et se rendre compte à mi-parcours qu'il te manque un ingrédient-il manque quelque chose de vital.

Dans un autre patient avec une mutation ABCA4, ils ont aussi observé une anomalie d'épissage. Les chercheurs ont pu clairement voir comment ces mutations affectaient la traduction des gènes, confirmant l'utilité de CATALYTEC pour diagnostiquer de vraies maladies chez les patients.

Déchiffrer les Résultats

Des résultats impressionnants ont émergé de l'utilisation de CATALYTEC. Cette méthode a non seulement identifié des mutations, mais a aussi montré que les niveaux d'activation des gènes existants étaient suffisamment significatifs pour analyser divers transcrits. En combinant des méthodes modernes comme le séquençage d'ARN à court et long read, ils ont pu avoir une image plus claire du comportement des gènes dans les cellules des patients.

Ils ont établi que les motifs d'épissage observés dans les cellules sanguines étaient étonnamment similaires à ceux des cellules rétiniennes. C'est crucial, car ça laisse entendre que des échantillons de sang pourraient servir de proxy pour étudier directement les maladies rétiniennes-c'est comme pouvoir examiner les résultats d'un match de foot sans être sur le terrain !

L'Avenir : Qu'est-ce qui Attend CATALYTEC ?

Les scientifiques voient CATALYTEC comme une méthode polyvalente qui pourrait facilement s'appliquer à d'autres troubles génétiques où la collecte d'échantillons peut être un frein. Ils pensent aussi qu'utiliser des méthodes plus simples pour rassembler des cellules, comme des cellules buccales (cellules de la joue), pourrait mener à des applications encore plus simples en diagnostics.

L'idée est de développer cette approche, rendant les tests génétiques plus simples, plus accessibles et moins invasifs. Les études futures pourraient élargir les types de gènes activés, menant à des applications encore plus larges.

Conclusion : Un Pas Vers de Meilleurs Diagnostics

En résumé, CATALYTEC met en lumière le potentiel de la technologie CRISPR pour améliorer les diagnostics génétiques. En permettant aux scientifiques d'activer des gènes dans les cellules des patients sans procédures invasives, ça ouvre la voie à une meilleure compréhension et diagnostic d'une gamme de troubles génétiques. Alors que les scientifiques s'efforcent de peaufiner cette méthode, cela pourrait changer la donne sur la manière dont nous détectons et traitons les maladies génétiques, rendant la vie un peu plus facile pour les patients.

Qui aurait cru qu'un petit CRISPR pourrait devenir un vrai changeur de jeu ? À l'avenir, il y a plein d'autres possibilités excitantes à l'horizon dans le monde des diagnostics génétiques.

Source originale

Titre: CRISPRa-mediated activation of genes associated with inherited retinal dystrophies in acutely isolated human cells for diagnostic purposes

Résumé: Many patients suffering from inherited diseases do not receive a genetic diagnosis and are therefore excluded as candidates for treatments, such as gene therapies. Analyzing disease-related gene transcripts from patient cells would improve detection of mutations that have been missed or misinterpreted in terms of pathogenicity during routine genome sequencing. However, the analysis of transcripts is complicated by the fact that a biopsy of the affected tissue is often not appropriate, and many disease-associated genes are not expressed in tissues or cells that can be easily obtained from patients. Here, using CRISPR/Cas-mediated transcriptional activation (CRISPRa) we developed a robust and efficient approach to activate genes in skin-derived fibroblasts and in freshly isolated peripheral blood mononuclear cells (PBMCs) from healthy individuals. This approach was successfully applied to blood samples from patients with inherited retinal dystrophies (IRD). We were able to efficiently activate several IRD-linked genes and detect the corresponding transcripts using different diagnostically relevant methods such as RT-qPCR, RT-PCR and long- and short-read RNA sequencing. The detection and analysis of known and unknown mRNA isoforms demonstrates the potential of CRISPRa-mediated transcriptional activation in PBMCs. These results will contribute to ceasing the critical gap in the genetic diagnosis of patients with IRD or other inherited diseases. Graphical abstract O_FIG O_LINKSMALLFIG WIDTH=200 HEIGHT=140 SRC="FIGDIR/small/625601v1_ufig1.gif" ALT="Figure 1"> View larger version (47K): [email protected]@c4c742org.highwire.dtl.DTLVardef@f5c28dorg.highwire.dtl.DTLVardef@b7cf11_HPS_FORMAT_FIGEXP M_FIG C_FIG

Auteurs: Valentin J. Weber, Alice Reschigna, Maximilian-J. Gerhardt, Klara S. Hinrichsmeyer, Dina Y. Otify, Thomas Heigl, Frank Blaser, Isabelle Meneau, Martin Biel, Stylianos Michalakis, Elvir Becirovic

Dernière mise à jour: 2024-12-01 00:00:00

Langue: English

Source URL: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.11.29.625601

Source PDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.11.29.625601.full.pdf

Licence: https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/

Changements: Ce résumé a été créé avec l'aide de l'IA et peut contenir des inexactitudes. Pour obtenir des informations précises, veuillez vous référer aux documents sources originaux dont les liens figurent ici.

Merci à biorxiv pour l'utilisation de son interopérabilité en libre accès.

Articles similaires