Régulation de l'azote chez les micro-organismes : le rôle de la glutamine synthétase
Explorer comment GS régule l'utilisation de l'azote chez les organismes.
Ruth Anne Schmitz, E. Herdering, T. Reif-Trauttmansdorff, A. Kumar, T. Habenicht, G. Hochberg, S. Bohn, J. Schuller
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Table des matières
- Types de Glutamine Synthétase
- Régulation de l'Activité de la Glutamine Synthétase
- Mécanismes Spécifiques de Régulation de GS
- Le Rôle de 2-Oxoglutarate dans la Régulation de GS
- Résultats sur l'Activité et la Structure de GS
- Inhibition par Rétroaction par la Glutamine
- Interaction avec de Petites Protéines
- Formation de Filaments dans GS
- Caractéristiques Uniques de M. mazei GlnA1
- Remarques Finales
- Source originale
L'Azote est super important pour tous les êtres vivants. C'est essentiel pour fabriquer des protéines et des acides nucléiques, qui sont des éléments clés des cellules. Pour utiliser l'azote, les organismes le transforment en ammonium. Les bactéries et les archées ont deux façons principales de faire ça.
Quand il y a assez d'azote, une enzyme appelée glutamate déshydrogénase (GDH) produit du glutamate à partir d'un autre composé, l'oxoglutarate, et de l'ammonium. Mais quand l'azote est rare, GDH ne fonctionne pas bien car il ne peut pas se lier efficacement à l'ammonium. Dans ce cas, une autre enzyme, la glutamine synthétase (GS), devient active et est produite en grande quantité quand les niveaux d'azote sont bas. GS travaille avec une autre enzyme appelée glutamate synthase (GOGAT) pour aider à capter l'ammonium, formant ce qu'on appelle le chemin GS/GOGAT. Ce chemin est important car il relie le métabolisme de l'azote et du carbone dans les cellules. GS se trouve dans toutes les formes de vie et est surtout crucial quand l'azote est en quantité limitée.
Types de Glutamine Synthétase
Les enzymes GS peuvent être classées en trois types selon leur structure. Les deux premiers types, GS I et GS III, se trouvent surtout dans les bactéries et les archées. Ils forment généralement de grandes structures appelées dodécamères. Le troisième type, GS II, se trouve chez les eucaryotes et forme des structures plus petites appelées décamères.
GS I peut être divisé en deux sous-types selon leurs séquences d'acides aminés. Le type Iβ a un site pour une modification chimique qui peut désactiver l'enzyme. En revanche, le type Iα ne subit pas cette modification et est principalement inhibé par les produits finaux du métabolisme de la glutamine.
Régulation de l'Activité de la Glutamine Synthétase
L'activité de GS est très contrôlée, surtout qu'elle a besoin d'énergie venant de l'ATP pour produire de la glutamine. Dans beaucoup de bactéries, quand l'azote est bas, un gène codant pour GS est activé, surtout grâce à un activateur transcriptionnel. Cependant, chez certaines bactéries gram-positives, le processus fonctionne différemment. Au lieu d'être activé, le gène est désréprimé quand l'azote est bas. Un mécanisme similaire a aussi été trouvé chez certaines archées.
Chez les bactéries gram-positives, la régulation est complexe et implique souvent des interactions entre GS et des protéines qui influencent l'expression des gènes. Dans certaines archées, la régulation est plus simple et se fait à travers de petites molécules qui signalent de faibles niveaux d'azote.
Outre l'expression des gènes, l'activité de GS est également régulée en fonction des niveaux d'azote. Les façons précises dont ça se passe peuvent varier énormément entre les organismes. Certains mécanismes d'inhibition courants incluent être désactivé par les produits du métabolisme de la glutamine, être dégradé par des enzymes, ou être modifié par de petits groupes chimiques.
Mécanismes Spécifiques de Régulation de GS
Il y a plein de façons dont GS peut être régulé chez différents organismes. Par exemple, en réponse à un azote accru, une Inhibition par rétroaction peut se produire où les produits finaux du métabolisme réduisent l'activité de GS. D'autres méthodes incluent la dégradation de l'enzyme, sa modification chimique, ou la limitation de son activité par des interactions avec de petites protéines.
Par exemple, chez la levure, GS peut être inhibée par la glutamine et peut aussi être dégradée quand l'azote est rare. De plus, GS peut former différentes structures, comme des filaments inactifs, sous des conditions de stress. Dans E. coli, son activité est contrôlée par un mélange d'inhibition par rétroaction et de modifications chimiques.
L'interaction de GS avec de petites protéines peut aussi affecter son activité. Ces protéines peuvent stabiliser des formes inactives de l'enzyme, l'empêchant de fonctionner quand elle ne doit pas.
Dans le cas de M. mazei, un type d'archée capable de fixer l'azote, la régulation de GS est particulièrement importante. Cet organisme dépend d'une molécule appelée 2-oxoglutarate (2-OG) pour détecter la disponibilité de l'azote. Quand l'azote est bas, les niveaux de 2-OG augmentent et cette molécule peut changer significativement la forme et l'activité de GS.
Le Rôle de 2-Oxoglutarate dans la Régulation de GS
Chez M. mazei, le 2-OG joue un rôle crucial dans la régulation de GS. À mesure que les niveaux d'azote chutent, les niveaux de 2-OG augmentent. Cette molécule se lie à GS, entraînant des changements qui activent l'enzyme. Plus précisément, le 2-OG aide GS à former un dodécamère stable, ce qui est essentiel pour son activité. La présence de 2-OG fait pencher la balance vers des complexes plus grands et plus actifs, préparant l'enzyme à travailler quand l'azote est rare.
Fait intéressant, la façon dont le 2-OG active GS chez M. mazei est différente de celle d'autres organismes. Alors que beaucoup de bactéries et d'eucaryotes ont des formes actives de GS qui sont simplement désactivées en condition d'azote élevé, M. mazei utilise directement le 2-OG pour aider à former son état actif.
Résultats sur l'Activité et la Structure de GS
Des études récentes sur GS de M. mazei ont montré des détails fascinants sur le fonctionnement de cette enzyme. Quand GS purifiée est traitée avec du 2-OG, elle s'assemble en une structure de dodécamère stable. Cette assemblée est cruciale car elle permet à l'enzyme de devenir active. Dans des expériences, les scientifiques ont observé qu'en ajoutant plus de 2-OG, davantage de dodécamères de GS se formaient, soulignant le lien fort entre les niveaux de 2-OG et l'activité de GS.
La photométrie de masse, une technique utilisée pour mesurer la taille des complexes protéiques, a montré que sans 2-OG, GS existe principalement sous forme de petites unités appelées monomères ou dimères. Cependant, une fois le 2-OG ajouté, la protéine s'assemble en une forme beaucoup plus grande, le dodécamère.
De plus, l'activité de GS montre une augmentation significative avec des concentrations plus élevées de 2-OG. Cela démontre que non seulement le 2-OG favorise l'assemblage de GS, mais il renforce aussi sa capacité à catalyser les réactions nécessaires pour l'assimilation de l'azote.
Inhibition par Rétroaction par la Glutamine
En plus de la régulation par le 2-OG, la GS de M. mazei est également affectée par la glutamine. Quand il y a des concentrations élevées de glutamine, l'activité de l'enzyme peut être réduite. Cette inhibition par rétroaction fonctionne à travers un acide aminé spécifique (R66) dans GS, qui se lie à la glutamine et conduit à une forme moins active de l'enzyme.
Des expériences ont montré qu'une forme mutante de GS qui manque de cet acide aminé critique ne répond pas à la glutamine de la même manière, maintenant son activité même en présence de l'acide aminé. Cela indique que la régulation par rétroaction par la glutamine est un aspect essentiel de l'activité de GS chez M. mazei.
Interaction avec de Petites Protéines
Des recherches antérieures ont montré que GS chez M. mazei interagit avec de petites protéines, comme GlnK1 et sP26. Ces protéines peuvent aider à réguler l'activité de l'enzyme sous différents niveaux d'azote. Cependant, dans des études récentes, le rôle exact de ces petites protéines est resté flou. Dans certaines conditions, il semble qu'elles n'ont pas une forte influence sur l'activité de GS ou son assemblage, ce qui suggère que leur interaction pourrait dépendre de conditions cellulaires spécifiques.
Les rôles proposés de ces petites protéines indiquent qu'elles pourraient être impliquées dans la coordination des activités de GS et d'autres enzymes dans le métabolisme de l'azote, mais d'autres recherches sont nécessaires pour bien clarifier leurs fonctions.
Formation de Filaments dans GS
Une observation intéressante lors des études de GS chez M. mazei est la formation potentielle de structures semblables à des filaments. Ces structures pourraient apparaître sous certaines conditions, similaires à ce qu'on voit chez d'autres organismes comme la levure et E. coli. Cependant, la signification de ces filaments est encore incertaine, et les chercheurs examinent s'ils jouent un rôle dans la régulation rapide de l'activité de GS.
Ces structures filamenteuses ajoutent une autre couche de complexité à la régulation de GS et soulignent la nécessité de recherches supplémentaires pour comprendre leur but et comment elles pourraient modifier la performance de l'enzyme dans diverses conditions environnementales.
Caractéristiques Uniques de M. mazei GlnA1
La régulation de GS chez M. mazei présente des caractéristiques uniques par rapport à d'autres bactéries et eucaryotes. L'activation de GS par le 2-OG est une méthode directe qui ne nécessite pas de protéines supplémentaires, contrairement aux régulations observées chez d'autres organismes. Cette simplicité d'activation pourrait représenter un mécanisme régulateur plus ancien, en particulier chez les archées méthanogènes.
Comparativement, d'autres bactéries utilisent divers moyens pour inhiber ou altérer leur activité de GS, comme les interactions avec de petites protéines ou des modifications chimiques. Chez M. mazei, la réponse directe au 2-OG pour l'activation la distingue des régulations plus complexes de GS trouvées chez les cyanobactéries ou les entérobactéries.
Remarques Finales
Les études sur GS chez M. mazei fournissent des informations précieuses sur la façon dont les microorganismes s'adaptent aux changements des niveaux d'azote. Les rôles critiques du 2-OG et les effets de rétroaction de la glutamine montrent un système bien coordonné qui répond aux changements environnementaux. Comprendre ces mécanismes nous aide à apprendre comment les formes de vie gèrent les nutriments essentiels, et cela pourrait aussi avoir des implications pour l'agriculture et la biotechnologie dans la gestion de l'azote. D'autres recherches ne manqueront pas de révéler encore plus sur ce processus complexe et vital.
Source originale
Titre: 2-oxoglutarate triggers assembly of active dodecameric Methanosarcina mazei glutamine synthetase
Résumé: Glutamine synthetases (GS) are central enzymes essential for the nitrogen metabolism across all domains of life. Consequently, they have been extensively studied for more than half a century. Based on the ATP dependent ammonium assimilation generating glutamine, GS expression and activity are strictly regulated in all organisms. In the methanogenic archaeon Methanosarcina mazei, it has been shown that the metabolite 2-oxoglutarate (2-OG) directly induces the GS activity. Besides, modulation of the activity by interaction with small proteins (GlnK1 and sP26) has been reported. Here, we show that the strong activation of M. mazei GS (GlnA1) by 2-OG is based on the 2-OG dependent dodecamer assembly of GlnA1 by using mass photometry (MP) and single particle cryo-electron microscopy (cryo-EM) analysis of purified strep-tagged GlnA1. The dodecamer assembly from dimers occurred without any detectable intermediate oligomeric state and was not affected in the presence of GlnK1. The 2.39 [A] cryo-EM structure of the dodecameric complex in the presence of 12.5 mM 2-OG demonstrated that 2-OG is binding between two monomers. Thereby, 2-OG appears to induce the dodecameric assembly in a cooperative way. Furthermore, the active site is primed by an allosteric interaction cascade caused by 2-OG-binding towards an adaption of an open active state conformation. In the presence of additional glutamine, strong feedback inhibition of GS activity was observed. Since glutamine dependent disassembly of the dodecamer was excluded by MP, feedback inhibition most likely relies on an allosteric binding of glutamine to the catalytic site. Based on our findings, we propose that under nitrogen limitation the induction of M. mazei GS into a catalytically active dodecamer is not affected by GlnK1 and crucially depends on the presence of 2-OG.
Auteurs: Ruth Anne Schmitz, E. Herdering, T. Reif-Trauttmansdorff, A. Kumar, T. Habenicht, G. Hochberg, S. Bohn, J. Schuller
Dernière mise à jour: 2024-12-13 00:00:00
Langue: English
Source URL: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.03.18.585516
Source PDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.03.18.585516.full.pdf
Licence: https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/
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