Simple Science

Hochmoderne Wissenschaft einfach erklärt

# Biologie # Synthetische Biologie

Gene umsortieren: Die Zukunft von synthetischer Hefe

Wissenschaftler formen die Hefe-Genome um, um neue Fähigkeiten freizuschalten.

Xinyu Lu, Klaudia Ciurkot, Glen-Oliver F. Gowers, William M Shaw, Tom Ellis

― 8 min Lesedauer


Gene mischen für bessere Gene mischen für bessere Hefe führen, dass Hefe besser wird. Genetische Veränderungen könnten dazu
Inhaltsverzeichnis

In den letzten anderthalb Jahrzehnten hat die Synthetische Genomik riesige Fortschritte beim Erstellen und Modifizieren des genetischen Make-ups von Organismen gemacht. Die Wissenschaftler sind von blossem Zusammenstückeln von Genomen dazu übergegangen, sie so zu bearbeiten, dass sich das Verhalten und das Wachstum der Organismen verändern. Diese Reise hat auch ambitionierte Projekte wie die Schaffung von synthetischer Hefe umfasst – eine Art von Pilz, die oft in der Forschung verwendet wird, weil sie gut mit Labortechniken funktioniert.

Was ist synthetische Genomik?

Synthetische Genomik beinhaltet das Erstellen oder Verändern von Genomen – dem kompletten Satz von Genen in einem Organismus. Das ist ein bisschen wie das Umverdrahten eines Smartphones, um neue Features hinzuzufügen. Die Wissenschaftler in diesem Bereich haben das Ziel, Organismen mit bestimmten Eigenschaften oder Fähigkeiten zu erstellen, indem sie ihre genetischen Anweisungen bearbeiten. Das geschieht durch Techniken wie Genbearbeitung, Gensynthese und modulare Montage. Die Wissenschaftler basteln gerne an den genetischen Codes herum, ähnlich wie Kinder mit Bausteinen, um zu sehen, was passiert, wenn sie die Teile umsortieren.

Das synthetische Hefe-Genom-Projekt

Ein bemerkenswertes Projekt in diesem Bereich ist das Synthetic Yeast Genome (Sc2.0), das nach mehreren Jahren Arbeit fast abgeschlossen ist. Dieses Projekt konzentriert sich darauf, einen Hefestamm mit synthetischen Chromosomen zu schaffen. Die Wissenschaftler hatten viel zu tun, um diese synthetischen Chromosomen zu vervollständigen und in einen einzigen Hefestamm zu integrieren. Die Idee ist, diese Genome so zu gestalten, dass sie weniger wie ihre natürlichen Gegenstücke und mehr wie ein massgeschneidertes Gadget sind, das genau das tut, was du willst.

Bis jetzt war jedoch die meiste dieser genetischen Kreativität eingeschränkt. Selbst wenn die Wissenschaftler synthetische Genome erstellten, behielten sie oft die gleiche Geneorganisation wie in der Natur bei. Also, während die Ergebnisse synthetisch waren, waren sie nicht radikal anders als das, was schon vorhanden war.

Warum die Neuanordnung von Genen wichtig ist

Während die Wissenschaftler vollständig synthetische Genome entwickeln, wollen sie ausserhalb der gewohnten Denkmuster denken. Sie möchten Gene auf Chromosomen in funktionale Module organisieren, die aus grundlegenden DNA-Teilen massgeschneidert werden können. Das bedeutet, sie suchen nach Möglichkeiten, Gene so anzuordnen, dass sie optimal zusammenarbeiten.

Dafür brauchen die Forscher neue Werkzeuge und Methoden, um zu testen, wie unterschiedliche Anordnungen die Leistungsfähigkeit von Genen verändern können, insbesondere in Bezug darauf, wie sie sich ausdrücken und zur allgemeinen Gesundheit und Wachstum des Organismus beitragen.

Der Aufstieg von synthetischen Genom-Modulen

Kürzlich haben Forscher synthetische Genom-Module erstellt, insbesondere für Hefe. Diese synthetischen Module bestehen aus Gruppen von Genen, die spezifische Funktionen kodieren, was den Forschern hilft, zu verstehen, wie sich die Veränderung der Genanordnung auf die Funktion auswirkt. Einfacher gesagt, es hilft ihnen zu verstehen, wie man eine bessere Hefe baut.

Was sind defragmentierte Module?

Das Konzept der "defragmentierten" Module beinhaltet das Verlegen von Genen zusammen mit ihren regulatorischen Elementen (wie "An"- und "Aus"-Schaltern) und deren Verknüpfung. Stell dir vor, es ist wie das Umstellen von Möbeln und Deko in einem Raum – manchmal fühlt sich alles einfach besser an, wenn alles neu angeordnet ist.

Refactored-Module: Die nächste Stufe

Um noch weiterzugehen, können Forscher "refactored" Module erstellen. Das bedeutet, sie verlegen nicht nur die Gene, sondern tauschen auch ihre natürlichen regulatorischen Elemente gegen synthetische Versionen aus, die gut verstanden werden. Das gibt ihnen die Möglichkeit, zu experimentieren, wie die Genexpression die Funktion des Moduls kontrolliert, ähnlich wie das Ausprobieren unterschiedlicher Lichtquellen in einem Raum, um zu sehen, welche ihn gemütlicher macht.

Das SCRaMbLE-System: Ein Wendepunkt

Ein spannendes Tool in der Toolbox ist etwas namens SCRaMbLE-System. Entwickelt im Rahmen des Sc2.0-Projekts, erlaubt SCRaMbLE Wissenschaftlern, zufällige Neuanordnungen im Genom hervorzurufen. Durch die Verwendung spezifischer Stellen in der DNA können Wissenschaftler Veränderungen wie Löschungen, Duplikationen und Inversionen von Genen erzeugen.

Dieses System ist wie ein genetisches Mischen und bietet den Forschern einen Weg, Vielfalt innerhalb des Genoms des Organismus zu erzeugen. Aber es gibt einen Haken – da die Änderungen, die durch SCRaMbLE erzeugt werden, oft zufällig sind, dauert es oft mehrere Durchgänge, um die besten Ergebnisse zu finden. Stell es dir vor wie das Suchen nach dem besten Karaoke-Song: Ein Durchgang bringt dich vielleicht nicht ins "A Star is Born"-Territorium, aber nach mehreren Versuchen könntest du die hohen Töne treffen.

Die MuSIC-Methode

Um den Forschern zu helfen, die Vorteile des SCRaMbLE-Systems zu maximieren, wurde eine Methode namens multiplex SCRaMbLE iterative cycle (MuSIC) entwickelt. Diese Methode erlaubt es Wissenschaftlern, kontinuierlich genetische Vielfalt zu erzeugen und nach besseren Merkmalen zu screenen. Es ist ein bisschen wie das Einkaufen nach Klamotten – du probierst viele verschiedene Outfits an, um das zu finden, in dem du dich richtig faboulous fühlst.

Herausforderungen beim Screening

Trotz dieser aufregenden Entwicklungen gibt es Herausforderungen. Die meisten aktuellen Methoden zur Überprüfung der Änderungen in Genen sind oft niedrigkapazitiv. Das bedeutet, sie erlauben nicht eine grosse Anzahl von Tests auf einmal, was es ein bisschen wie das Angeln mit einem kleinen Netz macht. Die Forscher müssen am Ende eine Kolonie nach der anderen analysieren, was den ganzen Prozess verlangsamen kann.

Ausserdem werden einige der Zellen in einer Population nicht einmal von SCRaMbLE verändert. Diese nicht rekombinierten Zellen können Platz und Ressourcen einnehmen, die für vielversprechendere Proben genutzt werden könnten. Es ist wie beim Plätzchenbacken, wenn du ein paar verbrannte dabei hast, die das Blech einnehmen.

Das ReSCuES-Reporter-System: Eine Lösung

Um diese Probleme anzugehen, haben Forscher ein Reporter-System namens ReSCuES entwickelt. Dieses System hilft, gegen nicht rekombinierte Zellen auszuwählen, indem es einen cleveren genetischen Trick anwendet. Es ist wie ein Türsteher in einem Club, der nur die coolen Kids reinlässt – oder in diesem Fall die richtigen genetischen Konstrukte.

Testen synthetischer Module: Das HIS-Beispiel

Um zu sehen, wie gut diese neuen Werkzeuge und Methoden funktionieren, konzentrierten sich die Forscher auf den Histidin-Biosyntheseweg in Hefe. Sie konstruierten synthetische Genom-Module, die wichtige Gene für die Produktion von Histidin, einer wichtigen Aminosäure, enthielten. Indem sie untersuchten, wie sich die Bewegung dieser Gene auf Wachstum und Funktion auswirkte, konnten sie wertvolle Einblicke gewinnen.

Das Experiment

Sie erstellten verschiedene synthetische Module, indem sie entweder:

  • Defragmentierung: Gene mit ihren nativen regulatorischen Elementen verschoben.
  • Refaktorisierung: Nur die Kodierungssequenzen der Gene verschoben und die regulatorischen Elemente durch synthetische ersetzt.

Dann testeten sie jeden Ansatz, um zu sehen, wie sich das auf das Wachstum der Hefe in Medien ohne Histidin auswirkte. Es ist wie das Ausprobieren verschiedener Rezepte, um zu sehen, welches den besten Kuchen macht.

Die Vorteile von SCRaMbLE beim Testen

Durch die Verwendung des SCRaMbLE-Systems konnten die Forscher die Gene innerhalb dieser synthetischen Module vermischen, um optimale Konfigurationen unter bestimmten Wachstumsbedingungen zu finden. Dies erhöht die Chancen, Lösungen zu finden, die die Phänotypen oder beobachtbaren Merkmale in der Hefe verbessern.

Das SCOUT-Reporter-System

Um den Screening-Prozess zu erleichtern, entwickelten die Forscher ein weiteres Tool namens SCOUT (SCRaMbLE Continuous Output and Universal Tracker). SCOUT ermöglicht eine effiziente Isolation von Zellen, die wahrscheinlich nützliche genetische Mischungen durchlaufen haben. Es ist wie die Verwendung eines GPS, um den besten Weg zu finden, wenn du dich verlaufen hast – es führt die Forscher zu den vielversprechendsten Ergebnissen.

Ein Blick auf die Ergebnisse

Sobald die Forscher die richtigen Werkzeuge hatten, führten sie eine Reihe von Tests durch. Sie verwendeten die fluoreszenzaktivierte Zellsortierung (FACS), um die besten Hefemuster, die durch SCRaMbLE gegangen waren, auszuwählen, und sequenzierten und analysierten sie.

Ihre Ergebnisse zeigten, wie sich die Neuanordnung von Genen auf bestimmte Funktionen auswirken kann. Nachdem sie mehrere Runden SCRaMbLE durchlaufen hatten, fanden sie heraus, dass einige Konfigurationen Hefe mit verbesserten Fähigkeiten hervorbrachten, die in Umgebungen gedeihen, in denen sie sonst Schwierigkeiten gehabt hätten.

Die Forscher stellten fest, dass die erste Runde von SCRaMbLE oft die dramatischsten Verbesserungen zur Folge hatte. Aber spätere Runden neigten dazu zu stagnieren, was bedeutete, dass sie eine lokale Leistungsgrenze erreichten.

Iterative SCRaMbLE

Die Forscher wollten sehen, ob die Durchführung von SCRaMbLE mehrmals zu noch besseren Ergebnissen führen würde. Also verwendeten sie iterative SCRaMbLE-Methoden an einem synthetischen Chromosom, um es herauszufinden. Sie überwachten jede Runde sorgfältig und verglichen die Ergebnisse, wie in einem Rennen, um zu sehen, ob eine einfache Strategie zu einem schnelleren Ziel führen könnte.

Während sie Verbesserungen beobachteten, merkten sie auch, dass nach einem bestimmten Punkt – der vierten oder fünften Runde – die Gewinne minimal waren. Das deutete darauf hin, dass es eine Grenze gibt, wie viel Neuanordnung dem Organismus zugutekommen kann, ohne dass er die Lebensfähigkeit verliert.

Fazit: Die Zukunft der synthetischen Genomik

Die Fortschritte in der synthetischen Genomik stellen eine aufregende Grenze in der Wissenschaft dar. Mit Werkzeugen wie SCRaMbLE und SCOUT machen die Forscher bedeutende Fortschritte in der Manipulation genetischen Materials, um Organismen mit gewünschten Eigenschaften zu schaffen. Es ist eine Welt, in der Gene wie Puzzlestücke angeordnet werden können, und das Ziel darin besteht, das perfekte Stück zu finden.

Obwohl einige Herausforderungen bestehen bleiben, ebnen die laufenden Verbesserungen in Methoden und Technologien den Weg für die Zukunft der synthetischen Biologie. Während die Forscher weiterhin an genetischen Codes herumbasteln und neue Werkzeuge entwickeln, sind die potenziellen Anwendungen der synthetischen Genomik riesig, von Gesundheitsversorgung bis Landwirtschaft und darüber hinaus.

Und wer weiss? Eines Tages könnten wir vielleicht einen Hefestamm haben, der das perfekte Bier ganz alleine brauen kann! Aber bis dahin werden die Wissenschaftler weiter experimentieren, umsortieren und vielleicht sogar singen – zumindest im Labor!

Originalquelle

Titel: Iterative SCRaMbLE for Engineering Synthetic Genome Modules and Chromosomes

Zusammenfassung: Synthetic biology offers the possibility of synthetic genomes with customised gene content and modular organisation. In eukaryotes, building whole custom genomes is still many years away, but work in Saccharomyces cerevisiae yeast is closing-in on the first synthetic eukaryotic genome with genome-wide design changes. A key design change throughout the synthetic yeast genome is the introduction of LoxPsym site sequences. These enable inducible genomic rearrangements in vivo via expression of Cre recombinase via SCRaMbLE (Synthetic Chromosome Recombination and Modification by LoxPsym-mediated Evolution). When paired with selection, SCRaMbLE can quickly generate strains with phenotype improvements by diversifying gene arrangement and content in LoxPsym-containing regions. Here, we demonstrate how iterative cycles of SCRaMbLE can be used to reorganise synthetic genome modules and synthetic chromosomes for improved functional performance under selection. To achieve this, we developed SCOUT (SCRaMbLE Continuous Output and Universal Tracker), a reporter system that allows SCRaMbLEd cells to be sorted into a high diversity pool. When coupled with long-read sequencing, SCOUT enables high-throughput mapping of genotype abundance and correlation of gene content and arrangement with growth-related phenotypes. Iterative SCRaMbLE was applied here to yeast strains with a full synthetic chromosome, and to strains with synthetic genome modules encoding the gene set for histidine biosynthesis. Five synthetic designs for HIS modules were constructed and tested, and we investigated how SCRaMbLE reorganised the poorest performing design to give improved growth under selection. The results of iterative SCRaMbLE serve as a quick route to identify genome module designs with optimised function in a selected condition and offer a powerful tool to generate datasets that can inform the design of modular genomes in the future.

Autoren: Xinyu Lu, Klaudia Ciurkot, Glen-Oliver F. Gowers, William M Shaw, Tom Ellis

Letzte Aktualisierung: 2024-12-06 00:00:00

Sprache: English

Quell-URL: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.12.06.627136

Quell-PDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.12.06.627136.full.pdf

Lizenz: https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/

Änderungen: Diese Zusammenfassung wurde mit Unterstützung von AI erstellt und kann Ungenauigkeiten enthalten. Genaue Informationen entnehmen Sie bitte den hier verlinkten Originaldokumenten.

Vielen Dank an biorxiv für die Nutzung seiner Open-Access-Interoperabilität.

Mehr von den Autoren

Ähnliche Artikel