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Edição Genômica em Ovelhas: Uma Nova Abordagem

Pesquisadores usam eletroporação e CRISPR pra editar genes de ovelhas e melhorar o crescimento.

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A edição do genoma é uma técnica que pode mudar a composição genética de animais, incluindo gado como ovelhas e bois. Um método comum é a tecnologia CRISPR, que se tornou popular pela sua capacidade de fazer mudanças precisas no DNA. Enquanto os métodos tradicionais de introduzir essas mudanças, como a microinjeção, costumam ser caros e exigem trabalhadores qualificados, a Eletroporação oferece uma forma mais rápida e eficiente de fazer isso.

O que é Eletroporação?

A eletroporação funciona usando pulsos elétricos para tornar as membranas celulares mais permeáveis. Isso permite a introdução de materiais genéticos nas células, como os componentes do CRISPR. Aplicando essa técnica em Zigotos, a primeira fase dos embriões, os cientistas podem aumentar as chances de criar animais com as mudanças genéticas desejadas. Pesquisas mostram que a eletroporação pode gerar altas taxas de mutação e reduzir a chance de mosaicos, onde nem todas as células possuem a mesma mudança genética.

Importância do SOCS2 em Ovelhas

Um alvo para edição do genoma em ovelhas é o gene SOCS2. Esse gene tem um papel na regulação do crescimento e do metabolismo. Estudos mostraram que desativar esse gene pode levar a taxas de crescimento aumentadas. Em camundongos, por exemplo, a ausência de SOCS2 resulta em tamanhos corporais maiores e pesos mais pesados. Portanto, editar o gene SOCS2 em ovelhas poderia levar a animais que crescem mais rápido e de forma mais eficiente.

Visão Geral do Estudo

Neste estudo, os pesquisadores se propuseram a criar ovelhas que não tivessem o gene SOCS2 usando a eletroporação. Eles produziram zigotos a partir de ovos e espermatozoides de ovelhas em condições de laboratório. Após a fertilização, introduziram dois RNAs guias específicos e componentes do CRISPR nos zigotos seis horas depois usando eletroporação. O objetivo era criar ovelhas com mutações no gene SOCS2 que levassem à sua desativação.

Produção de Embriões

Para começar, os pesquisadores coletaram ovários de ovelhas e colheram os complexos cumulus-oócito. Em seguida, amadureceram esses óvulos em um ambiente controlado para prepará-los para a fertilização. Após a maturação, os óvulos foram fertilizados com esperma em condições específicas para criar zigotos.

Processo de Eletroporação

Após a fertilização, os zigotos foram eletroporados para introduzir os RNAs guias e componentes do CRISPR necessários. Os pesquisadores usaram parâmetros elétricos específicos para garantir que o processo fosse eficaz e eficiente. Após a eletroporação, os embriões foram deixados para desenvolver até a fase de blastocisto antes de serem transferidos para mães de aluguel.

Transferência para Ovelhas Substitutas

Treze ovelhas substitutas foram preparadas para receber os embriões. Elas foram sincronizadas para reprodução para garantir que estivessem prontas para aceitar os embriões na hora certa. Após confirmar que as substitutas estavam grávidas através de ultrassom, os pesquisadores monitoraram a saúde dos embriões.

Genotipagem dos Cordeiros

Assim que os cordeiros nasceram, passaram por um teste genético chamado genotipagem para determinar se o gene SOCS2 tinha sido editado com sucesso. Esse teste envolveu amplificação de regiões específicas do DNA que cercam o gene-alvo. Os pesquisadores estavam particularmente interessados em descobrir se o gene havia sido desativado e em que medida.

Resultados do Estudo

Das treze ovelhas substitutas, um total de seis cordeiros nasceu. Desses, três sobreviveram até 20 semanas de idade. A análise genética mostrou que todos os cordeiros editados apresentavam algumas mutações no gene SOCS2. No entanto, as mutações específicas variaram bastante entre os cordeiros, com algumas grandes deleções observadas que não eram a deleção de 85 pares de bases pretendida.

Essas mudanças inesperadas destacam a complexidade da edição do genoma e a necessidade de uma análise cuidadosa após a edição. Os pesquisadores descobriram que uma parte significativa dessas mutações era indetectável por métodos tradicionais como PCR e sequenciamento de Sanger, que são comumente usados em estudos genéticos.

Efeitos Fora do Alvo

Uma preocupação significativa na edição do genoma é a possibilidade de efeitos fora do alvo, onde mudanças indesejadas ocorrem em outras partes do genoma. Os pesquisadores procuraram possíveis locais fora do alvo analisando regiões com pequenas discrepâncias em relação às sequências guias. Eles identificaram vários locais candidatos, mas não encontraram evidências significativas de que mutações fora do alvo estavam ocorrendo, sugerindo que a abordagem deles pode ser segura.

Impacto no Crescimento

Os pesquisadores observaram que as ovelhas sem o gene SOCS2 tiveram aumentos notáveis em peso e taxas de crescimento em comparação com as ovelhas controle. Aos 20 semanas, os cordeiros editados eram significativamente mais pesados que os controles. Isso está alinhado com resultados vistos em outras espécies e sugere que o gene SOCS2 desempenha um papel importante na regulação do crescimento.

Aplicações Potenciais

Este estudo demonstra os benefícios potenciais de usar eletroporação e tecnologia CRISPR para melhorar a genética do gado. A capacidade de aumentar as taxas de crescimento em ovelhas pode ter implicações econômicas substanciais para a indústria agrícola. Animais que crescem mais rápido podem reduzir os custos de produção e aumentar a segurança alimentar.

Conclusão

Resumindo, a pesquisa mostrou com sucesso o uso da eletroporação para edição de genes em ovelhas. Ao desativar o gene SOCS2, os cientistas criaram cordeiros com maior potencial de crescimento. Embora ainda haja desafios a serem enfrentados, especialmente na compreensão dos efeitos completos dessas modificações genéticas, os achados são promissores para o futuro da reprodução e engenharia genética em gado. As técnicas usadas neste estudo podem abrir caminho para métodos mais eficazes e eficientes de aprimorar características do gado nos próximos anos.

Fonte original

Título: Efficient Generation of SOCS2 Knock-out Sheep by Electroporation of CRISPR-Cas9 Ribonucleoprotein Complex with Dual-sgRNAs.

Resumo: Knock-out (KO) sheep were produced using CRISPR-Cas9 ribonucleoprotein complexes in zygotes targeting an 85 bp section of the first exon of the Suppressor of Cytokine Signalling-2 (SOCS2) gene. Electroporation was performed 6 hours post-fertilization with dual-guide CRISPR-Cas9 ribonucleoproteins (RNPs). Fifty-two blastocysts were transferred to 13 estrus-synchronized recipients, yielding five live lambs and one stillborn. These lambs were all compound heterozygotes with mutations predicted to result in SOCS2 KO. Three lambs carried large deletion alleles (259 bp, 1694 bp, and 2127 bp) that evaded initial detection via initial PCR screening. Off-target analysis identified a small number of mutations which may have been the result of off-target activity in regions with some homology to the guides, but notably such mutations were also observed in unedited controls. Further, we observed several orders of magnitude more mutations outside of these regions of homology in both edited animals and controls. Western blot and RT-PCR analysis of cell lines from SOCS2 KO lambs showed trace levels of SOCS2 mRNA and SOCS2 protein. In conclusion, combining IVF and electroporation of dual-guide CRISPR-Cas9 RNPs was effective at generating KO sheep.

Autores: Alison Louise Van Eenennaam, A. K. Mahdi, D. S. Fitzpatrick, D. E. Hagen, B. R. McNabb, T. Urbano, W. M. Muir, N. Werry, J. F. Medrano, P. J. ROSS

Última atualização: 2024-07-01 00:00:00

Idioma: English

Fonte URL: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.06.30.601433

Fonte PDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.06.30.601433.full.pdf

Licença: https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/

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