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Insights em Tempo Real sobre Respostas a Medicamentos Fúngicos

Estudo revela como fungos reagem a medicamentos antifúngicos em tempo real, melhorando as estratégias de tratamento.

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Os medicamentos antifúngicos são super importantes pra tratar infecções causadas por fungos. Pra descobrir como esses remédios são eficazes, os cientistas usam um método chamado teste de microdiluição em caldo. Esse método ajuda a determinar as concentrações mínimas de remédios necessárias pra parar o crescimento fúngico. Pra isso, células fúngicas são cultivadas em um líquido especial com diferentes quantidades de agentes antifúngicos. Observando essas culturas e medindo a turbidez, os pesquisadores conseguem descobrir a menor quantidade de remédio necessária pra desacelerar ou parar o crescimento do fungo.

Embora esse método de teste seja simples e fácil de repetir nos laboratórios, ele tem suas limitações. Ele geralmente observa uma forma só do fungo, que não é a mesma que costuma causar infecções reais nos pacientes. Isso pode fazer com que se percam respostas importantes dos fungos aos remédios. Alguns estudos mostram que formas diferentes do mesmo fungo podem responder de maneiras diferentes ao mesmo remédio.

A maioria das pesquisas se concentrou na ação de um tipo específico de medicamento antifúngico chamado equinocandinas, especialmente um chamado Caspofungin. Quando o Caspofungin é usado em certas esporas fúngicas, ele causa padrões de crescimento irregulares. Em alguns casos, ele faz com que partes da estrutura do fungo se quebrem, enquanto o novo crescimento surge das áreas danificadas. Outros tipos de fungos, como Candida albicans, também reagem ao Caspofungin, mostrando mudanças em sua estrutura e como crescem.

Essas descobertas mostram como os fungos respondem aos medicamentos antifúngicos e destacam a necessidade de métodos de teste que estejam mais alinhados com a forma como as infecções ocorrem nos pacientes. Faltam informações sobre como outros medicamentos antifúngicos funcionam, especialmente um chamado lipossomal Amphotericin B (AmBisome), que tem sido usado nas clínicas por muitos anos. O AmBisome ataca uma parte específica da célula fúngica, tornando-se eficaz contra diferentes formas do fungo.

Um novo método chamado imagem de células vivas microfluídicas permite que os cientistas vejam como os fungos se comportam em tempo real quando expostos a medicamentos antifúngicos. Esse método é um grande avanço porque permite que os pesquisadores vejam como os fungos reagem continuamente, em vez de apenas no final de um teste. Isso ajuda a imitar melhor como os remédios funcionariam durante uma infecção real.

Em um estudo recente, os cientistas usaram essa técnica de imagem pra comparar como dois patógenos fúngicos importantes reagiram ao Caspofungin e ao AmBisome. Eles observaram várias reações, incluindo diferentes maneiras de crescimento ou danos nos fungos quando expostos aos remédios.

Observando as Respostas Fúngicas

O estudo usou cepas fúngicas que foram modificadas pra brilhar sob certas luzes. Isso permitiu que os pesquisadores vissem e medisse diferentes aspectos das células fúngicas, como crescimento, danos e condição geral. Os pesquisadores estabeleceram as concentrações de remédio que eram necessárias pra inibir o crescimento seguindo diretrizes estabelecidas.

Resposta de Aspergillus fumigatus ao Caspofungin

Quando A. fumigatus foi tratado com uma dose baixa de Caspofungin, as hifas, que são as longas estruturas semelhantes a fios do fungo, continuaram a crescer normalmente no início. Mas, depois de um tempo, partes dessas hifas começaram a se quebrar. Diferentes tipos de danos ocorreram, incluindo tanto as pontas quanto seções mais abaixo da estrutura. Em alguns casos, o fungo mostrou uma capacidade notável de crescer de novo mesmo depois que partes estavam danificadas.

Curiosamente, houve um comportamento novo observado onde algumas seções das hifas podiam se recuperar sem precisar crescer uma nova ponta. Essa recuperação poderia acontecer de forma relativamente rápida, e algumas hifas mostraram sinais de conseguir retomar funções normais após o tratamento com Caspofungin.

No entanto, nem todas as partes do fungo conseguiram crescer de novo. Algumas formas imaturas do fungo perderam todos os sinais de vida após a exposição ao Caspofungin, enquanto outras mostraram esse novo crescimento regenerativo.

Em contraste, quando A. fumigatus foi tratado com AmBisome, a resposta foi muito mais imediata. O remédio rapidamente parou todo o crescimento, e as estruturas começaram a mostrar sinais de danos após um período muito curto. Essa reação estava associada à formação de vacúolos, que são pequenos compartimentos dentro das células cheios de líquido. Com o tempo, alguns desses vacúolos estouraram, levando à morte celular.

Resposta de Candida albicans ao Caspofungin

Padrões semelhantes foram observados em C. albicans. Quando exposto ao Caspofungin, as hifas não pararam de crescer imediatamente. Levou algumas horas pra que o remédio começasse a ter efeito. Em vez de formar novas pontas como A. fumigatus, C. albicans mostrou ramificações e mudou pra um método diferente de crescimento chamado brotamento isotrópico. Isso significa que, em vez de crescer mais, as células fúngicas começaram a crescer em todas as direções.

O tempo que levou pra C. albicans começar a apresentar danos foi mais longo do que pra A. fumigatus. No entanto, uma vez que os danos começaram, continuou a crescer, embora de uma maneira menos estruturada. Foi notado que se o grupo de células estava denso o suficiente antes do tratamento, as células centrais tinham alguma proteção contra os efeitos do remédio.

Depois de serem expostas ao AmBisome, C. albicans rapidamente parou de crescer e começou a mostrar sinais de danos internos, semelhantes aos de A. fumigatus. Vacúolos se formaram rapidamente, e esses eventualmente romperam, levando à perda de função.

Comparando a Dinâmica de Crescimento Fúngico

Os pesquisadores usaram dados de imagem pra acompanhar como as células fúngicas mudaram em resposta aos tratamentos com remédios ao longo do tempo. Pra ambos os tipos de fungos, ficou claro que as respostas imediatas ao AmBisome incluíam a parada do crescimento e a perda de materiais internos. No caso de C. albicans, algumas das células começaram a mostrar sinais de um tipo específico de dano que não havia sido registrado antes em fungos.

O estudo também destacou que, enquanto C. albicans levou mais tempo pra começar a se degradar sob o tratamento com Caspofungin, ainda conseguiu crescer de uma maneira diferente em comparação com células não tratadas.

Conclusão

Esse estudo ilumina como os fungos se adaptam aos medicamentos antifúngicos e a importância de examinar suas respostas em tempo real. Ao entender as diferentes maneiras que os fungos respondem aos tratamentos, os cientistas podem desenvolver métodos melhores pra combater essas infecções em ambientes clínicos. As descobertas têm implicações sobre como a resistência antifúngica se desenvolve e podem ajudar a guiar tratamentos futuros pra torná-los mais eficazes contra patógenos fúngicos.

Além disso, a pesquisa enfatiza que a forma como os fungos crescem e reagem durante o tratamento é complexa e pode incluir comportamentos de recuperação surpreendentes. Esse conhecimento é crucial pra melhorar o manejo das infecções fúngicas, especialmente em pacientes com sistemas imunológicos enfraquecidos que estão em maior risco de doenças fúngicas graves. Usando técnicas modernas de imagem, os pesquisadores começaram a entender melhor as dinâmicas intrincadas do crescimento e dano fúngico, o que pode abrir caminho pra terapias antifúngicas mais eficazes no futuro.

Fonte original

Título: Live-cell imaging of pathogenic fungal hyphae reveal dynamic cellular responses to clinical antifungals

Resumo: Antifungal susceptibility testing quantifies end-point fungal biomass in liquid cultures initiated from non-invasive yeast or spore morphologies. However, end-point analyses obscure informative spatio-temporal responses to drug exposures. In the major fungal pathogens Aspergillus fumigatus and Candida albicans we used microfluidic-coupled, fluorescence-mediated live-cell imaging to capture the real-time responses of fungal hyphae to clinical concentrations of AmBisome or Caspofungin. In both fungi, AmBisome exposure caused rapid growth arrest, extensive hyphal vacuolation and membrane blebbing. Responses to Caspofungin exposure were slower with initial lytic effects occurring after 1.5 or 4 hours in A.fumigatus and C.albicans, respectively. Whilst C.albicans hyphae undergo unsalvageable hyphal lysis in response to Caspofungin, A.fumigatus exhibit several compensatory growth behaviours, including a novel resuscitative growth form, that circumvent lytic events to maintain apical and sub-apical hyphal growth. This study reveals how the differing biologies of the two pathogens affected outcomes and contributes to the highly disparate rates of antifungal efficacy amongst commonly used drugs, where spore/yeast-derived inhibitory doses may underestimate the dose required to arrest/kill the invasive hyphal morphotypes of fungal pathogens in vitro.

Autores: Elaine Bignell, D. D. Thomson, R. Inman

Última atualização: 2024-07-22 00:00:00

Idioma: English

Fonte URL: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.07.19.602466

Fonte PDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.07.19.602466.full.pdf

Licença: https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/

Alterações: Este resumo foi elaborado com a assistência da AI e pode conter imprecisões. Para obter informações exactas, consulte os documentos originais ligados aqui.

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