Avanços na Edição Genética para Pesquisas sobre Malária
Cientistas usam os sistemas CRISPR e DiCre pra estudar os genes do parasita da malária.
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Índice
- Ciclo de Vida do Parasita Plasmodium
- Pesquisa sobre o Ciclo de Vida do Plasmodium
- Avanços na Edição Gênica
- Combinando CRISPR e DiCre
- Progressão do Ciclo de Vida em Parasitas Modificados
- Estudando a Função Gênica
- Observações Detalhadas em Parasitas Editados Gênicamente
- Direções Futuras na Pesquisa sobre Malária
- Conclusão
- Fonte original
- Ligações de referência
A malária é uma doença séria que afeta muita gente ao redor do mundo. Ela é causada pelo parasita Plasmodium, que se espalha pela picada de um mosquito Anopheles infectado. Quando o mosquito pica uma pessoa, ele injeta uns parasitas minúsculos chamados esporozoítas na pele. Esses esporozoítas se movem pelo corpo e chegam ao fígado, onde podem se multiplicar e depois invadir as células vermelhas do sangue, causando os sintomas da malária.
Ciclo de Vida do Parasita Plasmodium
O ciclo de vida do parasita Plasmodium envolve várias etapas. Depois de ser injetado por um mosquito, os esporozoítas vão pro fígado e infectam as células do fígado (hepatócitos). Dentro do fígado, os parasitas se desenvolvem em outra forma chamada Merozoítas. Alguns desses merozoítas entram nas células vermelhas do sangue e se multiplicam, levando aos sintomas da malária. Outros merozoítas se tornam gametócitos, que são absorvidos de volta por outro mosquito quando ele pica uma pessoa infectada, permitindo que o ciclo continue.
Pesquisa sobre o Ciclo de Vida do Plasmodium
Os cientistas estão estudando diferentes estágios do ciclo de vida do Plasmodium para encontrar processos importantes que podem ser alvo de tratamento ou prevenção. Um modelo comum usado nessa pesquisa é o parasita P. berghei, que infecta roedores. Esse parasita é mais fácil de manipular no laboratório e tem semelhanças com a malária que afeta os humanos. Embora as tecnologias de edição gênica tenham ajudado os pesquisadores a aprender mais sobre os Genes do parasita, muitas funções gênicas ainda são desconhecidas.
A transfecção, um método usado para inserir novo material genético no parasita, geralmente é feita durante os estágios sanguíneos assexuados. Isso significa que os pesquisadores podem perder genes importantes que só estão ativos em outros estágios. Recentemente, novas técnicas permitem que os cientistas controlem a atividade gênica de forma mais precisa.
Um desses métodos é o sistema DiCre. Esse sistema foi desenvolvido primeiro em outro parasita, Toxoplasma gondii, e desde então foi adaptado para uso em P. falciparum e P. berghei. O sistema DiCre permite que os pesquisadores apaguem genes específicos de uma maneira controlada. Ele funciona dividindo a enzima Cre recombinase em duas partes, que só se tornam ativas quando outra molécula chamada rapamicina está presente. Isso permite um controle preciso sobre quais genes são deletados durante o ciclo de vida do parasita.
Avanços na Edição Gênica
Na última década, os cientistas fizeram grandes avanços em tecnologias de edição gênica, especialmente com um método chamado CRISPR. Esse sistema é composto por uma proteína chamada Cas9, que pode cortar o DNA em locais específicos. Quando usado em parasitas do Plasmodium, o CRISPR pode criar quebras no DNA, que podem ser reparadas usando um molde fornecido, permitindo a introdução de novo material genético ou a exclusão de genes indesejados.
Os pesquisadores vêm melhorando o sistema CRISPR para P. berghei para aumentar sua eficiência. Ao combinar o CRISPR com o sistema DiCre, os cientistas podem criar novas linhagens de parasitas que têm maior flexibilidade para estudar a função gênica ao longo do ciclo de vida.
Combinando CRISPR e DiCre
Para criar novas linhagens de P. berghei que exprimem tanto Cas9 quanto o sistema DiCre, os pesquisadores integraram esses componentes no genoma do parasita juntamente com um marcador fluorescente. Isso ajuda a rastrear os parasitas sob um microscópio. Eles criaram duas novas linhagens: uma com um marcador fluorescente verde (GFP) e outra com um marcador vermelho (mCherry). Essas linhagens permitem que os cientistas monitorem visualmente os parasitas enquanto manipulam seus genes.
Por exemplo, os pesquisadores usaram CRISPR para modificar um gene essencial chamado clamp em uma dessas linhagens transgênicas. Quando induziram a exclusão condicional do gene clamp usando rapamicina, os parasitas tiveram dificuldades para invadir as células vermelhas do sangue. Isso mostrou que o gene clamp é vital para a habilidade do parasita de infectar seu hospedeiro.
Progressão do Ciclo de Vida em Parasitas Modificados
As linhagens modificadas de P. berghei foram testadas para garantir que ainda poderiam completar seu ciclo de vida normalmente. Camundongos foram infectados com os parasitas modificados, que foram transmitidos para mosquitos. Os pesquisadores observaram que tanto as linhagens fluorescentes verdes quanto as vermelhas se desenvolveram normalmente dentro dos mosquitos e produziram esporozoítas que podiam invadir as glândulas salivares do mosquito.
Depois de isolar os esporozoítas, os cientistas os injetaram em células hepáticas humanas para estudar seu comportamento. Os parasitas modificados mostraram atividade normal, o que significa que podiam atravessar células em ambiente de laboratório e se replicar com sucesso no fígado. Além disso, quando esporozoítas foram injetados em camundongos, causaram as mesmas infecções parasitárias que as linhagens de controle.
Estudando a Função Gênica
Para investigar melhor o papel de genes específicos durante o ciclo de vida do Plasmodium, os pesquisadores usaram técnicas de edição gênica para criar linhagens knockout condicionais. Um gene essencial estudado foi chamado CLAMP, que desempenha um papel crítico no crescimento na fase sanguínea do parasita.
Os cientistas introduziram sites LoxP no gene clamp usando CRISPR. A ideia era que, quando a rapamicina fosse administrada, isso desencadearia a exclusão do gene clamp, permitindo que os pesquisadores vissem como isso afetava a capacidade de crescimento e infecção do parasita.
Quando os cientistas trataram os parasitas knockout de clamp com rapamicina, viram uma rápida diminuição na parasitemia (a presença de parasitas no sangue). Isso confirmou que o gene clamp é necessário para que os parasitas invadam as células vermelhas do sangue. Por outro lado, quando merozoítas não tratados foram injetados em camundongos, eles invadiram e estabeleceram infecções normalmente.
Observações Detalhadas em Parasitas Editados Gênicamente
Para visualizar o impacto da edição gênica nos parasitas modificados, os cientistas realizaram vários testes, incluindo ensaios de imunofluorescência. Eles usaram anticorpos que se ligam especificamente à proteína CLAMP para ver onde ela estava localizada dentro dos merozoítas. Eles descobriram que a proteína estava concentrada em uma extremidade dos merozoítas, o que é típico para proteínas envolvidas na invasão de células-hospedeiras.
A capacidade de rastrear essas modificações e seus efeitos no ciclo de vida do parasita fornece insights valiosos. Isso permite que os pesquisadores entendam melhor como genes específicos contribuem para a sobrevivência e transmissão do parasita da malária.
Direções Futuras na Pesquisa sobre Malária
A combinação de CRISPR e o sistema DiCre representa uma abordagem poderosa para o estudo da malária e outras doenças relacionadas. Ao criar edições genômicas precisas e observar como essas mudanças afetam o ciclo de vida do parasita, os pesquisadores podem identificar novos alvos potenciais para o desenvolvimento de medicamentos ou design de vacinas.
Estudos futuros provavelmente se concentrarão em usar essa tecnologia para triagens genéticas maiores. Isso pode abrir novas avenidas para entender as interações complexas entre o parasita e seu hospedeiro, bem como os mecanismos que ele usa para escapar do sistema imunológico.
Conclusão
A malária continua a ser um desafio de saúde global, e entender a biologia do parasita Plasmodium é crucial para desenvolver tratamentos eficazes e estratégias de prevenção. Avanços em tecnologias de edição gênica, particularmente a integração dos sistemas CRISPR e DiCre, oferecem aos pesquisadores ferramentas inovadoras para dissecar as funções de genes essenciais ao longo do ciclo de vida do parasita.
O desenvolvimento de linhagens marcadas fluorescentemente permite rastreamento visual e observação em tempo real dos parasitas, possibilitando estudos mais detalhados. À medida que os pesquisadores continuam a investigar os papéis de genes específicos, eles buscam descobrir novas maneiras de combater a malária e reduzir seu impacto na saúde pública mundial.
Título: Constitutive expression of Cas9 and rapamycin-inducible Cre recombinase facilitates conditional genome editing in Plasmodium berghei
Resumo: Malaria is caused by protozoan parasites of the genus Plasmodium and remains a global health concern. The parasite has a highly adaptable life cycle comprising successive rounds of asexual replication in a vertebrate host and sexual maturation in the mosquito vector Anopheles. Genetic manipulation of the parasite has been instrumental for deciphering the function of Plasmodium genes. Conventional reverse genetic tools cannot be used to study essential genes of the asexual blood stages, thereby necessitating the development of conditional strategies. Among various such strategies, the rapamycin-inducible dimerisable Cre (DiCre) recombinase system emerged as a powerful approach for conditional editing of essential genes in human-infecting P. falciparum and in the rodent malaria model parasite P. berghei. We previously generated a DiCre-expressing P. berghei line and validated it by conditionally deleting several essential asexual stage genes, revealing their important role also in sporozoites. The advent of CRISPR enabled targeted genome editing with higher accuracy and specificity and greatly advanced genome engineering in Plasmodium spp. Here, we developed new P. berghei parasite lines by integrating the DiCre cassette and a fluorescent marker in parasites constitutively expressing Cas9. Owing to the dual integration of CRISPR-Cas9 and DiCre, these new lines allow unparalleled levels of gene modification and conditional regulation simultaneously. To illustrate the versatility of this new tool, we conditionally knocked-out the essential gene encoding the claudin-like apicomplexan micronemal protein (CLAMP) in P. berghei and confirm the role of CLAMP during invasion of erythrocytes.
Autores: Olivier Silvie, S. Das, T. Unhale, C. Marinach, B. d. C. Valeriano Alegria, C. Roux, H. Madry, B. Mohand Oumoussa, R. Amino, S. Iwanaga, S. Briquet
Última atualização: 2024-10-14 00:00:00
Idioma: English
Fonte URL: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.10.14.618196
Fonte PDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.10.14.618196.full.pdf
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