RAM-FISH: Uma Nova Maneira de Estudar RNA
O RAM-FISH torna a detecção de RNA mais fácil, ajudando os cientistas a entenderem melhor a expressão gênica.
Tirtha Das Banerjee, Joshua Raine, Ajay S. Mathuru, Kok Hao Chen, Antónia Monteiro
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Índice
- Técnicas de Detecção de RNA
- Métodos Baseados em Sequenciamento
- Métodos Baseados em Imagem
- Melhorias em Métodos de Localização de RNA
- RAM-FISH: Uma Nova Solução
- Fluxo de Trabalho do RAM-FISH
- Preparação de Sondas
- Aplicações Práticas do RAM-FISH
- Pesquisa com Borboletas
- Estudos sobre o Cérebro de Zebrafish
- Desafios e Análise de Robustez
- Conclusão
- Fonte original
- Ligações de referência
Seres vivos feitos de muitas células, como animais e plantas, têm sistemas complicados dentro deles. Esses sistemas são controlados por moléculas minúsculas conhecidas como RNA. A forma como essas moléculas de RNA aparecem nas células pode nos dizer muito sobre como os tecidos se desenvolvem e como as doenças começam. Muitos cientistas querem encontrar maneiras fáceis e confiáveis de ver várias moléculas de RNA nos tecidos sem bagunçar muito as coisas.
Para estudar essas moléculas de RNA, os cientistas precisam de métodos que funcionem bem e não ocupem muito tempo ou esforço. Eles também querem garantir que possam olhar diferentes tipos de amostras sem muita preparação. Tecnologias recentes permitem que os cientistas verifiquem RNA em células únicas enquanto mantêm a estrutura do tecido intacta. Existem duas principais metodologias: uma que usa sequenciamento e outra que usa sondas coloridas.
Técnicas de Detecção de RNA
Métodos Baseados em Sequenciamento
Os métodos baseados em sequenciamento envolvem desmontar e ler as sequências de RNA para descobrir quais genes estão ativos. Técnicas populares incluem:
- Visium: Esse método permite a análise espacial de RNA em tecidos, fornecendo um mapa da atividade gênica.
- Stereo-seq: Essa técnica funciona de forma semelhante, mas tem uma abordagem diferente para capturar dados.
- Slide-seq: Esse método captura sinais de RNA usando uma configuração específica de lâmina.
Métodos Baseados em Imagem
Os métodos baseados em imagem usam etiquetas fluorescentes especiais para marcar onde o RNA está e quanto há. Algumas técnicas conhecidas incluem:
- MERFISH: Esse método usa várias rodadas de imagem para coletar dados sobre muitas moléculas de RNA de uma vez.
- osmFISH: Ajuda a visualizar RNA de uma maneira muito detalhada.
- CosMx SMI: Essa abordagem inovadora rastreia RNA em amostras de tecido.
- STARmap: Essa técnica fornece imagens de alta resolução de onde o RNA está localizado nos tecidos.
- seq-FISH: Outro método que permite aos cientistas ver sinais de RNA de forma muito clara.
- FISH&CHIPS: Esse é um método mais recente que funciona junto com outras técnicas.
Embora esses métodos sejam úteis, eles geralmente têm problemas como etapas de preparação complicadas, custos altos e o risco de obter sinais falsos.
Melhorias em Métodos de Localização de RNA
Os cientistas inventaram maneiras melhores de amplificar sinais e suprimir o ruído de fundo. Métodos como HCR3.0 e SABER-FISH tornaram possível ver os sinais mais claramente e reduzir a interferência de fundo. No entanto, essas técnicas ainda têm seus próprios problemas, como:
- Capacidade limitada de lidar com muitos alvos de RNA de uma vez.
- Cronogramas experimentais longos.
- Protocolos que exigem muito trabalho e conhecimentos especializados, o que pode levar a erros.
Alguns métodos novos, como cycleHCR e EASI-FISH, melhoraram o número de alvos que podem lidar, mas exigem configurações complicadas e não são fáceis para todos os laboratórios usarem.
RAM-FISH: Uma Nova Solução
Chega o RAM-FISH! Esse método combina técnicas avançadas para detectar eficientemente mais de 30 alvos de RNA de uma vez. É mais rápido e simples que os métodos antigos, tornando mais fácil para os cientistas usarem. Anteriormente, pesquisadores testaram esse método em escalas de borboleta e cérebros de peixes, e agora foi aprimorado para permitir várias rodadas de detecção.
Fluxo de Trabalho do RAM-FISH
O fluxo de trabalho do RAM-FISH é bem simples. Começa com a preparação das amostras de tecido, que pode ser feita manualmente ou usando sistemas automatizados. Depois de coletar os tecidos, os cientistas fixam e permeabilizam eles. Em seguida, eles realizam os testes eles mesmos ou deixam as máquinas cuidarem disso.
As etapas básicas incluem:
- Coleta de Tecidos: Primeiro, os cientistas pegam amostras do organismo, seja uma borboleta ou um peixe.
- Fixação e Preparação: Os tecidos são tratados para torná-los mais fáceis de trabalhar e para manter as células intactas.
- Procurando o RNA: Eles usam sondas especiais que se ligam ao RNA de interesse. Depois, usam sondas adicionais para amplificar os sinais que querem ver.
- Imagem: Finalmente, as amostras são examinadas sob um microscópio especial para capturar os sinais de RNA.
Na configuração manual, os passos de hibridização, lavagem e remoção de sinal acontecem principalmente em placas de vidro ou pequenos tubos. A abordagem automatizada usa um sistema fluídico para agilizar o processo, tornando-o mais eficiente.
Preparação de Sondas
Para preparar sondas para detectar RNA, os pesquisadores criaram modelos úteis no Excel. Esses modelos ajudam a projetar oligonucleotídeos que podem se ligar ao RNA específico que querem estudar. Eles usam uma sequência gênica de bancos de dados e preparam as sondas para garantir que se liguem corretamente.
Aplicações Práticas do RAM-FISH
Pesquisa com Borboletas
Uma aplicação empolgante do RAM-FISH é olhar para o desenvolvimento das asas das borboletas. Borboletas têm padrões de cores únicos que mudam à medida que crescem. Cientistas estudaram até 33 genes em diferentes estágios de desenvolvimento para ver como se comportam.
Por exemplo:
- Wnt1, Wnt6 e Wnt10: Esses genes mostraram padrões consistentes relacionados às margens das asas e manchas, combinando com estudos anteriores.
- Cubitus interruptus (ci): Esse gene foi encontrado em certas áreas da asa, que se alinha com trabalhos anteriores.
Usando RAM-FISH, os pesquisadores puderam ver como é complexa a expressão gênica durante o desenvolvimento da borboleta, ajudando a entender seu crescimento e padrões de cor.
Estudos sobre o Cérebro de Zebrafish
Larvas de zebrafish são outro ótimo exemplo do RAM-FISH em ação. Por causa de sua estrutura simples e transparência, zebrafish são ideais para estudar como os genes funcionam no cérebro durante os estágios iniciais da vida. Pesquisadores usaram RAM-FISH para conferir como certos genes se expressam em seus cérebros, o que é importante para entender os comportamentos.
Por exemplo, vários genes relacionados à função nervosa foram examinados, mostrando onde e como estão ativos. Isso ajuda a construir uma imagem mais clara da função e desenvolvimento do cérebro.
Desafios e Análise de Robustez
Embora o RAM-FISH seja uma ferramenta poderosa, os cientistas precisaram enfrentar alguns desafios, como garantir que os sinais se mantenham fortes através de várias rodadas de detecção. Eles analisaram especificamente o gene optomotor-blind (omb) para ver como os sinais se degradam com o tempo.
Para testar a confiabilidade do método, compararam imagens tiradas após diferentes rodadas de detecção. Eles descobriram que, embora possa haver alguma perda de sinal, os padrões gerais permaneciam claros, apoiando a robustez do método RAM-FISH.
Conclusão
O RAM-FISH representa um avanço empolgante no campo da detecção e localização de RNA. Ele oferece uma maneira mais simples, rápida e confiável de estudar a expressão gênica em vários organismos. Seja desvendando os segredos do desenvolvimento das asas de borboletas ou fornecendo insights sobre cérebros de zebrafish, esse método tem potencial para revolucionar a forma como os cientistas exploram o mundo da expressão gênica.
Neste cenário em constante mudança da pesquisa científica, o RAM-FISH promete muito para muitos pesquisadores que buscam métodos eficientes para desvendar o fascinante mundo do RNA e seu papel nos processos da vida. Com essa ferramenta em mãos, os cientistas provavelmente farão descobertas que aumentarão nossa compreensão da biologia, desenvolvimento e doenças de maneiras que só podemos antecipar.
Então, vamos ficar de olho; quem sabe quais descobertas incríveis nos aguardam com essa nova abordagem para o estudo do RNA!
Fonte original
Título: Spatial mRNA profiling using Rapid Amplified Multiplexed-FISH (RAM-FISH)
Resumo: Localizing multiple RNA molecules simultaneously in intact tissues and organs is valuable for gaining insights into possible gene-regulatory interactions underlying cell differentiation. Existing technologies for multiplexed RNA localization are expensive, computationally complex, have elaborate sample preparation steps, have size limitations, and require weeks of processing time. This limits the widespread use of such techniques in most labs. Here we describe a cost-effective methodology, Rapid Amplified Multiplexed-FISH (or RAM-FISH), based on Hybridization Chain Reaction 3.0 for localizing dozens of transcripts in the same sample. This methodology achieves multiplexing by localizing 3 genes per cycle to detect 30 or more genes within a few days. The method can be applied to fixed tissue sections, entire organs, or whole organisms such as larval Danio rerio, without extensive sample preparation steps. The automation used here can also be adapted to perform other amplification-based FISH. Here, we demonstrate its utility, flexibility, and versatility for gene expression analysis in two very different types of samples, Bicyclus anynana butterfly larval wings and intact 10-day-old Danio rerio fish larvae.
Autores: Tirtha Das Banerjee, Joshua Raine, Ajay S. Mathuru, Kok Hao Chen, Antónia Monteiro
Última atualização: 2024-12-12 00:00:00
Idioma: English
Fonte URL: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.12.06.627193
Fonte PDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.12.06.627193.full.pdf
Licença: https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/
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