バクテリアにおけるゲノム編集の課題を乗り越える
バイ菌のゲノム編集技術における意図しない変異を調べる。
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目次
ゲノム編集は、生きている生物のDNAを変えるための強力なツールだよ。バクテリアでは、CRISPR/Cas9システムっていう特別な仕組みを使って、研究者が遺伝子コードに特定の変更を加えてるんだ。Cas9タンパク質はDNAを切るはさみみたいに機能して、RNAの一部がCas9をゲノムの正しい場所に導くんだ。この方法は、遺伝子の機能を研究したり、研究や産業用途のための新しいバクテリア株を開発するのに使われているよ。
CRISPR/Cas9の動作原理
Streptococcus pyogenesっていうバクテリアのCRISPR/Cas9システムは、いろんな種類のバクテリアで使えるように適応されてるんだ。Cas9タンパク質は、特定の位置に導かれる単一ガイドRNA(sgRNA)によってDNAを切るんだ。このsgRNAはDNAの一部にマッチする配列を持ってるから、Cas9はどこを切るかを特定できるんだ。
Cas9が切ると、DNAに二本鎖切断(DSB)ができるんだけど、バクテリアではこういう切断が致命的になることが多いんだ。なぜなら、こういう生物は効率的なDNA修復機構を持っていないことが多いから。これを解決するために、研究者たちは切断を修復し、ゲノムに望んだ変更を加えるためのDNAの一部(編集カセット)を導入する戦略を開発してるんだ。これは一本鎖または二本鎖のドナーDNAを使って行えるよ。
Cas9を使った編集プロセスは非常に正確だけど、バクテリアのゲノムに意図しない変更をもたらす可能性があるんだ。こういう意図しない変更は、バクテリアの予期しない特性につながることがあって、実験結果を複雑にするんだ。
注意深い編集の必要性
科学者たちは、ゲノム編集技術を使って特定の編集を導入できるけど、編集プロセスの後で、いくつかのバクテリアが偶発的な変更を持っていることを発見することが多いんだ。ある研究では、編集されたバクテリアのコロニーの約26%に意図しない変異が見つかったんだ。これらの変異は、科学者たちが意図していた変更ではなく、バクテリアの行動に影響を与える可能性があるんだ。
こういう意図しない変異の存在は心配を呼ぶんだ。なぜなら、これは編集されたバクテリアが特定の方法で振る舞うことに依存する実験で偽の結果につながる可能性があるから。だから、研究者たちは自分たちの編集したバクテリアのゲノムを確認して、望ましくない変更が起きていないかを確かめることが重要なんだ。
ゲノム編集の方法
科学者たちはバクテリアのゲノムを編集するためにいろんな方法を使ってるよ。Cas9システムは最も一般的な方法の一つだけど、他にもlambda RedリコンビナリーングやI-SceI補助編集っていう方法があるんだ。それぞれの方法は、バクテリアのDNAに変更を導入する独自のやり方があるんだ。
Cas9補助編集
Cas9補助編集では、研究者たちはCas9の指示と編集プロセスに必要な要素を持ったヘルパープラスミドを使うんだ。バクテリアは高温処理されて、Lambda Redタンパク質が活性化されて、Cas9が作ったDNAの切断を修復する役割を果たすんだ。バクテリアが正しく編集されたら、科学者たちは特定の抗生物質を使って望ましい編集を持ったバクテリアだけを選ぶんだ。
Lambda Redリコンビナリーング
Lambda Redリコンビナリーングは、Cas9を使わない別の編集方法なんだ。この技術では、Lambda Redタンパク質を使ってバクテリアのゲノムに遺伝子を挿入したり置き換えたりするんだ。この方法は直接DSBを作らないけど、細胞の自然な能力を利用してDNAの小さな変化を修復するんだ。意図しない変異の発生率は低いけど、意図した変更だけが存在することを保証するために注意深い検証が必要なんだ。
I-SceI補助編集
I-SceI補助編集は、DNAに切断を加える最近の方法なんだ。ここでは、I-SceIタンパク質がDNAにブレークを作って、新しい遺伝物質を組み込むことを可能にするんだ。他の方法と同じように、意図しない変化に対する注意深い監視が必要なんだ。
意図しない変異の頻度
詳細な分析を通じて、研究者たちはCas9の編集方法を使った後に、約26%のバクテリアのコロニーに意図しない変化があったことを見つけたんだ。こういう変化はバクテリアの振る舞いに違いをもたらす可能性があって、実験の解釈を複雑にするんだ。対照実験では、編集を行わなかった場合には、たった10%のバクテリアに意図しない変異が見られたんだ。
遺伝子編集後の意図しない変異の高頻度は心配だよ。さまざまな編集方法は、DNA損傷を引き起こして、特にバクテリアがDNAを修復しようとする時にエラーが発生しやすい修復プロセスがあると、変異率が高くなるんだ。
オフターゲット効果の調査
オフターゲット効果は、Cas9や他の編集タンパク質が意図しないDNAの位置で切断することを指すんだ。バクテリアのゲノムは比較的小さいから、研究者たちは最初はオフターゲット効果の可能性は低いと思ってたんだ。しかし、結果はオリジナルの切断位置から遠く離れた場所でも意図しない変異が驚くほど多く見つかったんだ。
研究によると、こういう切断がバクテリアに直接影響を与えない場合も多いけど、実験から集められたデータの複雑さを増すことは確かなんだ。こういう意図しない変異がどこで起こるかを理解することで、研究者たちは編集技術を改善して、より信頼性を高めることができるんだ。
DNA修復機構の役割
バクテリアには、ダメージが発生したときにDNAを修復する自然な機構があるんだ。でも、すべての修復プロセスが正確とは限らないんだ。Cas9が切断すると、バクテリア内でストレス反応が活性化されて、エラーを引き起こすDNAポリメラーゼが生成されることがあるんだ。これらはDNAの隙間を埋める酵素なんだけど、プロセス中にミスも引き起こすことがあるんだ。
こういうエラーを引き起こすポリメラーゼの活動が増えることで、バクテリアのゲノムに意図しない変更が多く発生する理由が説明できるんだ。修復を試みる過程で、特に元の切断位置から遠く離れた場所で変異が導入されることがあるんだ。
意図しない変異の課題
意図しない変異の高頻度は大きな課題をもたらすよ。それらの多くはサイレント変異で、タンパク質中のアミノ酸を変えないんだ。でも、一部の変異は遺伝子の発現の仕方に変更をもたらすことができて、バクテリアの行動を意図せず変える可能性があるんだ。
研究者たちは慎重でなければならなくて、自分たちの編集結果を検証する必要があるんだ。望ましい変更が達成されたとしても、意図しない変更が実験の結果に影響を与えている可能性があることを考慮しなければならないんだ。
編集技術向上のための推奨事項
編集されたバクテリアにおける意図しない変異の発生を減らすために、研究者たちはいくつかの戦略を考慮できるんだ。一つの選択肢は、エラーを引き起こす修復機構を活性化することで知られているSOS反応を抑制するrecA変異体を使うことだよ。もう一つの可能性は、DSBをまったく作らない新しい遺伝子編集技術、例えばプライム編集を探求することだ。でも、これらの方法はまだすべてのアプリケーションに適しているわけではないんだ。
前にも言ったけど、研究者たちは編集した株が意図しない変異から解放されていることを確認するために、全ゲノムシーケンシングを行うべきなんだ。このプロセスは追加のリソースを必要とするけど、実験で正確な結果を確保するためには重要なんだ。
結論
要するに、CRISPR/Cas9のようなゲノム編集技術はバクテリアのゲノムを操作するための貴重なツールを提供するけど、課題も伴うんだ。意図しない変異の高頻度は研究の結果や解釈を複雑にすることがあるんだ。研究者たちが自分たちの方法を洗練させて、根本的なメカニズムをさらに研究する中で、編集が正確であるかを引き続き確認することが重要なんだ。この慎重なアプローチが、バクテリアやその他の分野でゲノム編集の効果的な活用の道を切り開く手助けになるんだ。
タイトル: CRISPR-Cas9-assisted genome editing in E. coli elevates the frequency of unintended mutations
概要: Cas-assisted lambda Red recombineering techniques have rapidly become a mainstay of bacterial genome editing. Such techniques have been used to construct both individual mutants and massive libraries to assess the effects of genomic changes. We have found that a commonly used Cas9-assisted editing method results in unintended mutations elsewhere in the genome in 26% of edited clones. The unintended mutations are frequently found over 200 kb from the intended edit site and even over 10 kb from potential off-target sites. We attribute the high frequency of unintended mutations to error-prone polymerases expressed in response to dsDNA breaks introduced at the edit site. Most unintended mutations occur in regulatory or coding regions and thus may have phenotypic effects. Our findings highlight the risks associated with genome editing techniques involving dsDNA breaks in E. coli and likely other bacteria and emphasize the importance of sequencing the genomes of edited cells to ensure the absence of unintended mutations. GRAPHICAL ABSTRACT O_FIG O_LINKSMALLFIG WIDTH=200 HEIGHT=61 SRC="FIGDIR/small/584922v1_ufig1.gif" ALT="Figure 1"> View larger version (15K): [email protected]@8c891eorg.highwire.dtl.DTLVardef@7e32b4org.highwire.dtl.DTLVardef@132d3fc_HPS_FORMAT_FIGEXP M_FIG C_FIG
著者: Shelley D Copley, K. A. Widney, D.-d. Yang, L. M. Rusch
最終更新: 2024-03-19 00:00:00
言語: English
ソースURL: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.03.19.584922
ソースPDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.03.19.584922.full.pdf
ライセンス: https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/
変更点: この要約はAIの助けを借りて作成されており、不正確な場合があります。正確な情報については、ここにリンクされている元のソース文書を参照してください。
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