新しい方法がエンハンサーの機能に光を当てる
研究者たちが生きたマウスの肝細胞でエンハンサーの活性を調べる技術を開発した。
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目次
エンハンサーはDNAの特別な部分で、遺伝子がオンまたはオフになるのを制御するのを助けるんだ。エンハンサーは影響を与える遺伝子のすぐそばにはないから、距離を置いて作用することができるよ。エンハンサーは特定のタンパク質と結合して、遺伝子からタンパク質を作るプロセス、つまり転写の開始を手伝うんだ。エンハンサーがどう機能するかは、細胞の種類によって変わることがあるんだよ。
クロマチンとヒストンマーカーの重要性
エンハンサーは通常、開いた状態でしっかりと詰まっていないDNAの領域に見つかるんだ。エンハンサーの周りには、遺伝子活性を促進したりブロックしたりするヒストンと呼ばれるタンパク質の特定の化学マーカーがあるんだ。H3K27ac、H3K4me1、H3K4me3のような活性化マーカーがあると、その領域はエンハンサーである可能性が高い。一方、H3K27me3やH3K9me3のような抑制マーカーがあると、その領域は活動していないかもしれない。
これらのヒストンマーカーのパターンは、染色体を構成する物質であるクロマチンの全体的な状態についての手がかりを与えてくれる。クロマチンの状態の変化は、体内のさまざまな要因や環境から起こり得て、これらの変化は細胞によってさまざまな長さの時間記憶されることがあるんだ。
ゲノム内のエンハンサーの発見
研究者たちは、ゲノム全体でエンハンサーを特定するために特定の技術を使っているよ。一般的な方法の一つは、クロマチン免疫沈降および配列決定(ChIP-seq)で、これは科学者がこれらのマーカーがどこにあるかを調べるのを可能にするんだ。他の方法では、オープンなDNA領域を特定する酵素を使ったりするんだけど、これらの先進的なツールでも、多くのエンハンサーがまだ特定されていないんだ。
エンハンサーは、近くのプロモーターに距離を置いてループして遺伝子活性を促進することができる。でも、どのエンハンサーがどの遺伝子を制御しているのかを調べるのは大変で、タンパク質をコードしない広大なDNA領域がたくさんあるからなんだ。
現在の方法の課題
さまざまな組織、例えば肝臓において、多数の予測されたエンハンサーが特定されているけど、彼らの機能を分析するのが難しいんだ。ほとんどの伝統的な技術は実際の組織ではなく、人間の細胞系に焦点を当てているため、知識にギャップが生じているんだ。それに、実験で特定のタイプのプラスミドを使うと、望ましくない免疫反応を引き起こすことがあって、結果を複雑にしてしまうんだ。
ウイルスベクターを使うようなアプローチも、これらの課題に取り組もうとしているけど、毒性や免疫活性化のような問題も引き起こすことがあるんだ。
新しい方法:HDI-STARR-seq
エンハンサーの活動をよりよく研究するために、研究者たちはHDI-STARR-seqという新しい技術を開発したんだ。この方法では、水力注入(HDI)を使ってDNA配列のライブラリを生きたマウスの肝臓細胞に直接届けるんだ。これにより、エンハンサーの自然な構造と局所細胞環境との相互作用が保持されるんだ。
この方法では、最小限のマウスアルブミンプロモーターを使ってエンハンサー配列の発現を促進するんだ。これにより、肝臓細胞での活性が促進され、異なるエンハンサーが生きた生物の中でどう機能するかの洞察を得ることができるんだ。
HDI-STARR-seqの実験設定
実験では、若いオスとメスのマウスを使うんだ。研究者たちはエンハンサー配列を含むDNA断片のライブラリを作成し、これをHDIを使ってマウスの肝臓に届けるんだ。一定の期間後、肝臓を収穫して分析し、どのエンハンサーが活性かを確認できるようにするんだ。
マウスが特定の化合物で処理されると、研究者たちはエンハンサーによって駆動される遺伝子発現の変化を観察し、異なる条件下でエンハンサーがどのように機能するかを明らかにするんだ。
プラスミド配送効率の評価
プラスミドがどれだけうまく届けられたかを理解するために、さまざまな実験で制御レポータージーンの活性を測定するんだ。これには、肝組織を処理してプラスミドDNAを抽出し、レポータージーン活性の量に基づいて配送の効率を評価するいくつかのステップが含まれるんだ。
成功した配送は、これらの制御遺伝子の活性が増加することで示され、プラスミドが肝細胞内の目的地に到達したことを確認できるんだ。
エンハンサーライブラリの構築
この研究で特定されたエンハンサーは、以前の研究でオープンクロマチンサイトとして示された特定のDNA領域から来ているんだ。このエンハンサー配列はマウス肝臓DNAから増幅され、プラスミドベクターに挿入される。目的は、エンハンサー配列の多様なプールを作って、その活性をテストすることなんだ。
生きたマウスでのエンハンサー活性の測定
ライブラリが作成され肝臓に届けられたら、研究者たちはさまざまな分析を通じてエンハンサー活性を測定することができるんだ。重要なのは、これらのエンハンサーからどれだけのRNAが生成されるかを見ることで、これが活動の指標になるんだ。収集されたデータは、特定の生物学的条件下でどのエンハンサーが機能しているかをマッピングするのに役立つんだ。
結果の分析
実験からの結果は、肝臓に多くの活性なエンハンサーが存在することを示しているんだ。このデータは、これらのエンハンサーの多くが、化学処理や性差などによって影響を受けるさまざまな遺伝子の近くに位置していることを示しているよ。
これらの発見は、エンハンサーが異なる文脈で遺伝子調節にどのように寄与するかについての洞察を提供し、外部刺激や病気に対する遺伝的な素因への反応を仲介する役割を強調しているんだ。
結論
HDI-STARR-seqの開発は、生きた生物におけるエンハンサーの研究の重要な進展を示しているんだ。この方法は、肝細胞の自然な文脈でエンハンサー活性を探ることを可能にし、以前の研究で直面していた多くの制限を克服するんだ。効果的な配送方法と包括的な分析を組み合わせることで、研究者たちはエンハンサーがどのように機能するか、そして遺伝子調節においてどれほど重要かについての理解を深めることができるんだ。この知識は、将来的にさまざまな生物学的プロセスや病気のメカニズムを理解するために影響を持つかもしれないよ。
タイトル: HDI-STARR-seq: Condition-specific enhancer discovery in mouse liver in vivo
概要: STARR-seq and other massively-parallel reporter assays are widely used to discover functional enhancers in transfected cell models, which can be confounded by plasmid vector-induced type-I interferon immune responses and lack the multicellular environment and endogenous chromatin state of complex mammalian tissues. Here, we describe HDI-STARR-seq, which combines STARR-seq plasmid library delivery to the liver, by hydrodynamic tail vein injection (HDI), with reporter RNA transcriptional initiation driven by a minimal Albumin promoter, which we show is essential for mouse liver STARR-seq enhancer activity assayed 7 days after HDI. Importantly, little or no vector-induced innate type-I interferon responses were observed. Comparisons of HDI-STARR-seq activity between male and female mouse livers and in livers from males treated with an activating ligand of the transcription factor CAR (Nr1i3) identified many condition-dependent enhancers linked to condition-specific gene expression. Further, thousands of active liver enhancers were identified using a high complexity STARR-seq library comprised of [~]50,000 genomic regions released by DNase-I digestion of mouse liver nuclei. When compared to stringently inactive library sequences, the active enhancer sequences identified were highly enriched for liver open chromatin regions with activating histone marks (H3K27ac, H3K4me1, H3K4me3), were significantly closer to gene transcriptional start sites, and were significantly depleted of repressive (H3K27me3, H3K9me3) and transcribed region histone marks (H3K36me3). HDI-STARR-seq offers substantial improvements over current methodologies for large scale, functional profiling of enhancers, including condition-dependent enhancers, in liver tissue in vivo, and can be adapted to characterize enhancer activities in a variety of species and tissues by selecting suitable tissue- and species-specific promoter sequences.
著者: David J Waxman, T.-Y. Chang
最終更新: 2024-06-12 00:00:00
言語: English
ソースURL: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.06.10.598329
ソースPDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.06.10.598329.full.pdf
ライセンス: https://creativecommons.org/licenses/by-nc/4.0/
変更点: この要約はAIの助けを借りて作成されており、不正確な場合があります。正確な情報については、ここにリンクされている元のソース文書を参照してください。
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