新しいモデルでE.コリの耐性に対処する
新しいモデルがE. coliの抗生物質に対する生存能力についての洞察を明らかにした。
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E. coliっていうのは、Escherichia coliの略で、よくあるバイ菌なんだ。特に尿路感染症を引き起こすことが多くて、毎年約1億5000万人が影響を受けてるんだけど、特に女性に多いんだよね。最近、多くのE. coli株がβ-ラクタム系抗生物質に対して耐性を持つようになってきた。これらは細菌感染の治療に使われる重要な薬の1つなんだ。
抗生物質耐性は公衆衛生の大きな問題だよ。細菌が抗生物質で治療されても生き残れると、感染症の管理が難しくなる。一番の抗生物質の1つがβ-ラクタムで、ペニシリンやセファロスポリンが含まれている。これらの抗生物質は主に細菌の細胞壁を破壊して生存を妨げるんだ。
感染症治療の課題
β-ラクタム治療の課題は、細菌がそれに対して耐性を持つ方法が複雑だからなんだ。耐性は、β-ラクタム抗生物質が細菌の細胞のいくつかの部分を狙うから生じる。細菌はこれらの治療から逃れるためにいろんな方法を使うんだ。その主な防御方法の1つがβ-ラクタマーゼの生成。これは抗生物質を分解してしまう酵素で、効果を無効にしてしまうんだ。
これらの酵素は、細菌の細胞の外や中に見られる。細菌の一部が死ぬと、周囲にβ-ラクタマーゼを放出して抗生物質を破壊し、生き残った細菌が繁殖し続けることができる。これを集団抗生物質耐性って呼ぶんだ。密度の高い細菌集団は小さなグループよりも耐性が強いように見えるんだ。
他にも、抗生物質が狙う重要なターゲットタンパク質の変異、抗生物質が細菌の細胞に入ったり出たりする方法の変化、細胞分裂が遅れることによる細胞の長さの増加など、耐性メカニズムはたくさんある。こうして細菌は細長くなり、これが細胞死を引き起こすこともあるんだ。
こうした防御の複雑さと詳細な定量データが不足しているため、細菌集団がどのようにして治療から逃れるかを説明する統一モデルはまだ開発されていないんだ。
モデルの必要性
細菌が抗生物質にどう反応するかをよりよく理解して予測するためには、さまざまな耐性メカニズムを捉えたモデルが必要なんだ。でも、そんなモデルを作るのは簡単じゃない。抗生物質の効果を評価する通常の方法は、時間経過に伴う細菌の成長率を測定する(成長動態)か、生きている細菌の数を数える(コロニー形成単位、CFU)っていう2つのアプローチがある。
CFUアッセイで細菌の成長を測るのは手間がかかるんだ。細菌サンプルを希釈して、寒天プレートに広げて、インキュベートしてからコロニーを数える必要がある。一方、成長動態は細菌培養の濁りを測定するんだけど、これはバイオマスを示すだけで、生きた細胞の数を必ずしも正確に反映するわけじゃない。特に死んだ細胞や細胞が細長くなってるときはね。
こうした限界を克服するために、研究者たちは両方の方法から得た知見を統一するようなもっと効率的なモデルの開発を探ってるんだ。
包括的モデルの開発
この新しいモデルは、分子の相互作用から細菌の全集団まで、いくつかのレベルで起こる基本的な生物学的プロセスを表現することを目指しているんだ。特に、このモデルでは細胞の伸長が抗生物質の攻撃に対する細菌の生存能力にどれだけ関わっているかを捉えているんだ。細菌が分裂せずに成長できる方法や、ある臨界の長さに達したときに細胞死に至ることを表現してる。
さらに、このモデルはβ-ラクタム系抗生物質で治療された多様な臨床由来株の成長と死のパターンを反映できるんだ。特に、E. coli株がセフォタキシム、セフトリアキソン、メシリナムのような抗生物質に対してどう反応するかの違いを説明しようとしているんだ。
答えるべき重要な質問
このモデルは2つの重要な質問に取り組んでいるんだ:
- 成長動態とCFUデータは細菌の細胞死を説明できるように調和できるのか?
- モデルは成長データのみを基に生きた細胞数を予測できるか?
これらの質問に答えるために、研究者たちはさまざまな抗生物質濃度で複数の臨床由来株をテストして、時間経過に伴う成長とCFUデータを測定したんだ。
実験の設定と方法論
モデルを構築するために、研究者たちは異なる抗生物質耐性レベルを持つ11の臨床的に重要なE. coli株を選んだ。これらの株は、反応を研究するためにセフォタキシムのようなβ-ラクタム系抗生物質を受けることになった。実験は管理された研究室環境で行われて、細菌培養が96穴プレートに置かれて、時間と共に成長がモニターされたんだ。
光学密度(OD)の測定は、細菌の成長によって培養物がどれだけ濁ったかを示す指標を提供し、CFUカウントは実際の生きている細菌の数を明らかにした。モデルは両方のデータセットに対してテストされ、その正確性を検証されたんだ。
主要な発見と観察
実験ではいくつかの興味深い発見が得られた。
フィラメンテーション: 抗生物質治療の初期段階で、ODが増加したけどCFUカウントが増えなかった。これは、細菌が抗生物質にさらされて伸びているけど分裂はしていないことを示していて、フィラメンテーションを示唆してるんだ。
細胞死の動態: 初期の成長期間の後、培養物のCFUカウントは減少し、これは長くてフィラメント状の細胞が非可視化になることに関連してる。特にODの測定値は同じ速さで減少せず、細胞死の実際の動態を隠すことがよくあったんだ。
再生の可能性: しばらくすると、生きた細胞の数が再び増え始める変化が見られた。これは、抗生物質が死んだ細胞から放出されたβ-ラクタマーゼによって分解されたことを示唆している。再生は必ずしもOD測定を通じて検出されるわけじゃなくて、集団動態の理解を難しくしてるんだ。
モデルの予測力: モデルはこれらの複雑な動態をうまく捉え、異なる株や抗生物質濃度に対して実験データと良い適合を示した。
データに基づく結果の予測
研究者たちはさらに、モデルがODデータのみを基に生きた細胞数を正確に予測できるかどうかを調べたんだ。彼らはOD測定のみを使っても、生きた細胞の予測がしっかりできることが分かった。これはCFUアッセイの手間を考えると重要な発見だよ。
モデルの予測能力は遅延抗生物質治療に対してもテストされた。抗生物質が成長後に投与されたときでも、モデルは生きた細菌の減少を正確に反映したんだ。これで、細菌集団が抗生物質の圧力にどのように耐えるかの理解が深まった。
最適な治療戦略の探索
モデルを使って、研究者たちは抗生物質治療の最適化についても探ってるんだ。目標は、抗生物質の単一投与を2つの治療に分けて、細菌集団を効果的に減少させる最良の方法を見つけることだよ。
シミュレーションと実験の検証を通じて、彼らは明らかでない最適な治療計画を見つけた。これは抗生物質のタイミングや用量を注意深く管理することで、より良い結果が得られることを示してる。たとえば、初めに小さな用量を投与して、その後に大きな用量を与えることで、細菌の再生を効果的に抑えられるんだ。
より広い意味と今後の方向性
この包括的なモデルは、抗生物質治療に対する細菌の反応を理解する上でのギャップを埋めるものなんだ。分子相互作用、細胞生理、集団動態についての知識を統合することで、抗生物質耐性を持つ細菌による感染症の管理や治療に貴重な洞察を提供することができるんだ。
この発見は、臨床現場で精密な治療戦略の必要性を強調していて、細菌集団が抗生物質の挑戦にどのように動的に反応するかを意識させることになる。これは、抗生物質耐性が増している中で、臨床医が治療を選択し、投与する方法に大きな影響を与える可能性があるんだ。
将来的には、このモデルを栄養素の可用性や宿主との相互作用などの追加要素を含めることで、体内での細菌の挙動のより完全なイメージを作ることができるだろう。
要するに、この研究は抗生物質治療と細菌の反応の複雑な関係を明らかにしていて、臨床環境での抗生物質耐性に対処するための改善された戦略への道を開いているんだ。また、成長データのみを基に細胞の反応を予測できる能力は、細菌感染を効果的に管理する上で重要な進展を示しているんだ。
タイトル: A quantitative approach to easily characterize and predict cell death and escape to β-lactam treatments
概要: Commensal and pathogenic E. coli strains are increasingly found to be resistant to {beta}-lactams, one of the most widely prescribed classes of antibiotics. Understanding escape to such treatments is complex since {beta}-lactams have several cellular targets and since several mechanisms might be involved in treatment escape in a combined manner. Surprisingly, the accumulated knowledge has not yet proven effective enough to predict the bacterial response to antibiotic treatments at both cellular and population levels with quantitative accuracy for -producing bacteria. Here, we propose a mathematical model that captures in a comprehensive way key phenomena happening at the molecular, cellular, and population levels, as well as their interactions. Our growth-fragmentation model gives a central role to cellular heterogeneity and filamentation as a way for cells to gain time until the degradation of the antibiotic by the {beta}-lactamases released by the dead cell population. Importantly, the model can account for the observed temporal evolution of the total (live and dead) biomass and of the live cell numbers for various antibiotic concentrations. To our knowledge, this is the first model able to quantitatively reconciliate these two classical views on cell death (OD and CFUs) for clinical isolates expressing extended-spectrum beta-lactamases (ESBL). Moreover, our model has a strong predictive power. When calibrated using a slight extension of OD-based data that we propose here, it can predict the CFU profiles in initial and delayed treatments despite inoculum effects, and suggest non-trivial optimal treatments. Generating quality data in quantity has been essential for model development and validation on non-model E. coli strains. We developed protocols to increase the reproducibility of growth kinetics assays and to increase the throughput of CFU assays.
著者: Gregory Batt, V. Andreani, V. Gross, L. You, P. Glaser, I. El Meouche
最終更新: 2024-06-28 00:00:00
言語: English
ソースURL: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2021.07.16.452741
ソースPDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2021.07.16.452741.full.pdf
ライセンス: https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/
変更点: この要約はAIの助けを借りて作成されており、不正確な場合があります。正確な情報については、ここにリンクされている元のソース文書を参照してください。
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