細胞イメージング技術の進歩
新しい方法が細胞のイメージングを改善して、細胞の構造や病気をよりよく理解できるようにしてるよ。
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目次
細胞イメージングは、科学者たちが細胞内の小さな構造を見て研究するのに役立つんだ。これは、細胞がどのように機能し、病気で何が悪くなるかを理解するのに重要なんだけど、従来の細胞観察方法には限界があるんだ。細胞を非常に薄く切る必要があることが多く、重要な詳細を失わずにそれを行うのは難しいこともあるんだ。
クライオ電子顕微鏡法の重要性
クライオ電子顕微鏡法(クライオEM)は、氷結された細胞サンプルを切らずに見ることができる技術だ。この方法は細胞内の構造をクリアに見ることができるけど、全ての細胞が直接イメージングできるほど薄くないし、クライオEM用のサンプル準備が難しいこともあるんだ。
フォーカスイオンビームミリング
クライオEMのサンプルを準備するために、フォーカスイオンビームミリングと呼ばれる技術が使われる。これは、イオンビームを使って凍結されたサンプルの細胞から非常に薄い部分を切り取るプロセスなんだ。これらの薄いセクションはラメラと呼ばれていて、イメージングの準備が整う。目指すのは、ラメラを約100から200ナノメートルの厚さにして、電子が簡単に通過できるようにすることだよ。
サンプル準備の改善
最近、これらの薄いセクションを作る方法が改善されてきたんだ。光学顕微鏡とフォーカスイオンビームミリングを組み合わせることで、科学者たちはサンプルをより効果的に準備できるようになった。このセットアップは、切るプロセス中にラメラの厚さや均一性についてリアルタイムでフィードバックを提供するんだ。これにより、高品質なサンプルをイメージングの準備が整った状態で作るのが簡単になった。
クライオ電子トモグラフィー
クライオ電子トモグラフィー(クライオET)もこの分野で役立つツールだ。これは細胞内の詳細な構造的特徴を明らかにするのに役立つ。その最大の利点の1つは、サンプルにラベルを付けずに実行できることなので、科学者たちは細胞の自然な状態を見ることができる。ただし、鮮明な画像を得るためには、薄いセクションを正確に準備することが依然として重要なんだ。
クライオFIBワークフローの改善
最近、クライオフォーカスイオンビーム(クライオFIB)ワークフローにさまざまな改善が加えられてきた。これらの進展は、サンプルがより迅速かつ信頼性高く準備できるようにすることに焦点を当てている。クライオFIB顕微鏡内でガス注入システムを使用することで、ミリングされるエリアを損傷から保護する層を作成できるんだ。
蛍光イメージングの役割
蛍光イメージングは、サンプル準備プロセスに別の詳細レイヤーを追加する技術だ。これにより、科学者たちはミリング中にターゲット細胞や特定の関心領域を特定できる。ただ、蛍光の課題は、サンプル内の異なる材料による歪みの影響を受けて、ターゲティングが正確であることを確保することなんだ。
軸歪みの課題
蛍光メソッドを使用する際、科学者たちは軸歪みと呼ばれる問題に直面する。これは、光が異なる屈折率を持つ材料を通過する時に起こる現象で、その結果、画像が誤解を招くことがあるんだ。細胞内の構造の正確な位置を特定するのが難しくなるんだ。
RLMによるリアルタイムフィードバック
これらの課題に対抗するために、科学者たちはミリングプロセス中にリアルタイムでフィードバックを得るために反射光顕微鏡(RLM)を使い始めた。この方法は、ラメラの厚さや品質を確認するのに役立つ。RLMと蛍光メソッドを統合することで、サンプルの準備に関するワークフローが大幅に改善されるんだ。
RLMの仕組み
RLMでは、反射光を使ってラメラの表面を見るんだ。反射強度を注意深く調べることで、科学者たちはラメラの厚さや均一性を測ることができる。この方法は、ミリング中に適用された保護層を検査することも可能にし、プロセス全体でそれが intact(無傷)であることを確保できるんだ。
ミリングプロセス
ミリングプロセスは、いくつかのステップを含むよ。まず、低倍率でイメージングを使って潜在的なターゲット細胞を特定する。次に、保護層を適用した後、蛍光イメージングでターゲット位置を洗練させる。そして最後に、ラフミリングを実行し、統合された光学顕微鏡を通じて監視するんだ。
ターゲット選択の洗練
適切な細胞ターゲットを特定した後、科学者たちは複数のイメージング技術を使って選択をさらに洗練させる。イメージングの質に干渉するかもしれない氷の結晶の兆候を探すんだ。これらの望ましくない形成を特定することで、研究者たちは不適切なターゲットを捨て、高品質なラメラの作成成功の可能性を高めるんだ。
自動ミリング技術
イメージングとターゲティングの進展により、自動ミリング技術も実現可能になった。これらの方法は、ターゲットを特定するのとラメラを準備するのとの間の時間を最小限に抑える一連の調整されたステップに依存している。自動化は効率を高め、人為的なミスを排除するんだ。
精密厚さ測定
ラメラが正しい厚さであることを確保するために、いくつかの技術を組み合わせて使うんだ。1つの方法は、ミリングジオメトリからデータを取得すること。一方、もう1つは薄膜干渉を利用して詳細な厚さマップを生成する。この注意深い監視により、科学者たちはクライオEMイメージングに最適な厚さを実現できる。
厚さ制御の重要性
ラメラの厚さを制御することは、成功するイメージングにとって重要なんだ。薄いセクションは、電子がサンプルに効果的に侵入できるようにし、よりクリアな画像を可能にするんだ。一貫した厚さを維持することで、細胞内の重要な構造を隠す可能性のあるアーティファクトを避けられるんだ。
ミリングプロセスの監視
ミリングプロセス中、RLM技術を使って進行状況を監視し、必要に応じて技術を調整するんだ。この継続的な監視により、ラメラが望ましい厚さの範囲内に留まることを確認し、品質や完全性をチェックできるんだ。
薄膜干渉効果
薄膜干渉は、ラメラの厚さをより正確に測定するのに使える現象なんだ。ラメラが削られるにつれて、反射光の変化から厚さの変動を明らかにすることができる。これらの効果を理解することで、科学者たちはより正確な測定ができるんだ。
品質管理された製造ワークフロー
イメージングや製造技術の進展を受けて、品質管理されたワークフローが生まれてきた。最初のターゲット選択は蛍光顕微鏡を使って行われ、その後RLMによる品質管理が行われる。統合された技術を使用することで、研究者たちはラメラ製造を改善し、より良い結果を得ることができるんだ。
生物学的研究への応用
蛍光イメージング、RLM、クライオFIBミリングの組み合わせ技術は、生物学的研究に新たな扉を開くんだ。この統合アプローチによって、細胞構造の可視化が改善され、細胞がどのように機能し、病気がそれにどのように影響するかについての深い洞察が得られるんだ。
細胞イメージングの未来
イメージング技術が進化するにつれて、研究者たちの細胞研究方法も進化するだろう。新しい方法や技術を統合することで、科学者たちは細胞イメージングの限界を押し広げ続けられるんだ。ワークフローの自動化の進展も、これらの方法が世界中のラボで日常的に使われるようになる可能性があることを示唆しているんだ。
結論
クライオ電子顕微鏡法や関連技術の進展は、細胞構造のイメージング能力を大きく向上させてきたんだ。サンプルの準備に関してより効率的で信頼性のあるワークフローを作ることで、科学者たちはより鮮明な画像を得て細胞の複雑な生物学をより良く理解できるようになった。方法の継続的な革新と統合を通じて、細胞イメージングの未来は明るいよ。
タイトル: Thickness and quality controlled fabrication of fluorescence-targeted frozen-hydrated lamellae
概要: Cryogenic focused ion beam (FIB) milling is essential for fabricating thin lamella-shaped samples out of frozen-hydrated cells for high-resolution structure determination. Structural information can only be resolved at high resolution if the lamella thickness is between 100 and 200 nm. While the lamella fabrication workflow has undergone significant improvements since its conception, quantitative, live feedback on lamella thickness and quality is still lacking. Taking advantage of a coincident light microscopy integrated into the FIB-SEM, we present three different strategies that together allow accurate, live control during lamella fabrication. First, we combine 4D-STEM with fluorescence microscope (FM) targeting to determine the lamella thickness. Second, with reflected light microscopy (RLM) we screen target sites for ice contamination and monitor lamella thickness and integrity of the protective Pt coating during FIB milling. Third, we exploit thin-film interference to obtain fine-grained feedback on thickness uniformity below 500 nm. We finally present a full workflow for fluorescence-targeted and quality controlled fabrication of frozen-hydrated lamellae, benchmarked with excellent agreement to energy filtered transmision electron microscopy (EFTEM) measurements and reconstructed tomograms obtained with electron cryo-tomography.
著者: Daan Boltje, R. Skoupy, C. Taisne, W. Evers, A. J. Jakobi, J. Hoogenboom
最終更新: 2024-07-08 00:00:00
言語: English
ソースURL: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.07.04.602102
ソースPDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.07.04.602102.full.pdf
ライセンス: https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/
変更点: この要約はAIの助けを借りて作成されており、不正確な場合があります。正確な情報については、ここにリンクされている元のソース文書を参照してください。
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