がんに対する細胞移植療法の進展
新しい方法でがん治療のためのT細胞修飾が強化される。
Melita Irving, E. Dzafo, M. Hafezi, G. M. P. Giordano Attianese, P. Reichenbach, S. Grillet, K. Scholten, G. Coukos, B. Gentner
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採用細胞療法(ACT)は、患者自身の免疫細胞を使ってがんと戦う治療法だよ。このアプローチは、特に進行がんの患者にとって期待できるんだ。ACTの一つの方法は、患者の腫瘍サンプルから腫瘍浸潤リンパ球(TIL)を取り出して、ラボで増やしてから患者に戻すというもの。この方法は、特に転移性メラノーマのケースで成功しているんだ。ただし、挑戦もあって、すべての腫瘍が炎症の兆候を示すわけじゃないから、適切な免疫細胞を見つけるのが難しいこともあるし、特定の細胞を十分な数に育てるのが大変なこともある。
ACTを改善する別の方法は、患者の血液からT細胞を使って、ラボで修正すること。これらのT細胞は、がん細胞をもっと効果的に狙えるように遺伝子を変えられる。これには、T細胞受容体(TCR)やキメラ抗原受容体(CAR)っていうツールを使うんだけど、これが免疫システムががんを認識して攻撃するのを助けるんだ。
遺伝子工学の利用
治療用に修正されるT細胞のほとんどは、ウイルスベクターを使って行われる。これは、細胞に新しい遺伝子を挿入できるウイルスのようなものだ。これらの方法は比較的安全だけど、DNAに変化をもたらして他の問題を引き起こすリスクがあるんだ。また、修正されたT細胞を活性化するために使われる強力な信号は、細胞が早く疲れちゃう原因にもなるんだ。
新しい方法として、CRISPR/Cas9を使うのがある。これは遺伝子を精密に編集するためのツールで、科学者たちはこれを使ってT細胞のDNAの特定の部分にTCRを配置できるようになった。この方式は、これらの受容体をより安定的かつ一貫して表現するのに役立つんだ。初期の研究では、この技術が特定のがんマーカーを狙う効果的なT細胞を生成する可能性があることが示されている。
遺伝子編集効率の向上
CRISPR/Cas9がDNAに切れ目を入れると、細胞はいくつかの主な方法でその切れ目を修復できる。最初の方法は、非相同末端結合(NHEJ)と呼ばれるもので、速いけどエラーが起きることがある。2つ目は、相同修復(HDR)と呼ばれるもので、より正確だけどあまり一般的ではない。研究者たちは、より良い結果を得るために細胞がHDRを利用できるように促す方法を探している。これを達成するための有望な方法は、NHEJ経路を抑制する特定の薬を使うことだ。これにより、より多くの細胞がHDRを使用できるようになるんだ。
研究では、特定の抑制剤がT細胞での遺伝子編集の効率を高めるのを助けることが示されている。これらの結果は、がんを効果的に狙える修正されたT細胞を作るためのより良い方法につながるかもしれない。
実験デザイン
NHEJを抑制する異なる薬がT細胞の遺伝子編集にどのように影響するかを調べるために、研究者たちは実験を行った。いくつかの抑制剤、M3814、PI-103、サモトリシブを比較した。結果は、これらの薬がT細胞の遺伝子編集効率を大幅に改善できる可能性があることを示している。研究者たちは、良好な製造慣行(GMP)に沿ったラボプロセスを開発して、T細胞が安全かつ効果的に臨床使用のために生産できるようにした。
研究の一部では、T細胞にマーカー遺伝子を導入することに焦点を当てて、遺伝子編集の進行状況を追跡できるようにした。CRISPRシステムと遺伝子をT細胞に導入するために、電気穿孔法を使用した。この方法では、DNAが細胞に入るのを助けるために電場をかけるんだ。
電気穿孔後、抑制剤で処理された修正T細胞は、新しい遺伝子を発現する能力を評価された。結果は、これらの抑制剤を使用することで対照群に比べて遺伝子発現が著しく増加したことを示している。
GMP適合プロセス
このプロセスを臨床環境に適したものにするために、研究者たちはさらに方法を洗練させた。特定のがんマーカー(NY-ESO-1)のためのTCRをT細胞に導入しながら、プロセスがGMP基準を満たすようにする方法を開発した。
この最適化されたプロセスでは、T細胞は再びCRISPR/Cas9を使って特定のTCRと追跡用のマーカーを発現するように修正された。今回は、遺伝子編集の直後に抑制剤で細胞を処理し、その後数日間GMP適合の環境で培養した。
この研究の段階からの結果は、前の試みと比べて遺伝子編集の効率が大幅に向上したことを示している。抑制剤で処理されたT細胞は、TCRマーカーと追跡マーカーの両方のレベルが高いことが分かった。
T細胞の生存と増殖への影響の評価
修正されたT細胞を開発する上で重要なのは、彼らが健康でよく成長できることを確保することだ。この研究では、遺伝子編集後に処理されたT細胞がどれだけ生存して増殖したか(数が増えたか)を評価した。研究者たちは、処理された群の全体的な細胞生存率は対照群と比べてわずかに減少したものの、修正細胞は良好な生存率を維持していることを見つけた。
最も重要なのは、T細胞が長期的な効果を持つために望ましい特定の表現型を維持していたこと。研究者たちは、良い割合のT細胞がナイーブな状態を維持しており、これはがんと戦うための持続力と効果にとって有利だと指摘した。
結論
この研究は、CRISPR/Cas9と特定の抑制剤を組み合わせることで、がん治療のためのT細胞の修正プロセスを大きく改善できることを示している。この作業は、安全基準を満たす効果的なエンジニアリングT細胞を作成するための潜在的な道筋を示している。現在の発見は期待できるけど、患者における長期的な影響と安全性を確認するためにさらなる研究が必要だ。
科学者たちがこれらの方法を洗練させ続ける中で、個別化されたT細胞療法が未来のさまざまながん治療に大きな役割を果たすことが期待されている。継続的な研究によって、がん患者の生活を改善する効果的な治療法がもっと期待できるよ。
タイトル: DNA-Dependent Protein Kinase Inhibitors PI-103 and Samotolisib Augment CRISPR/Cas9 Knockin Efficiency in Human T Cells
概要: 1.The adoptive cell transfer of ex vivo expanded tumor infiltrating lymphocytes (i.e., TIL therapy) is a promising clinical strategy and recently FDA approved for melanoma but has major limitations including that not all tumors are inflamed. Moreover, tumor-specific clones can be rare and in an exhausted state due to the suppressive tumor microenvironment. These obstacles can be overcome by engineering autologous peripheral blood T cells with pre-selected T cell receptors (TCRs) by viral vector-mediated gene insertion. While viral transduction is highly efficient, the insertional site is not specific and persistence of the T cells is oftentimes limited. In contrast, site-specific integration of the TCR into the TCR chain (TRAC) locus by CRISPR/Cas9 has been shown to enable more consistent and physiological levels of exogenous TCR expression coupled with superior persistence and tumor control in preclinical studies. Here, we sought to improve the efficiency of CRISPR/Cas9 mediated TCR knockin (KI) into the TRAC locus of primary human T cells. In addition to the previously reported DNA-dependent protein kinase inhibitor M3814, we demonstrate that PI-103 and samotolisib markedly increase KI efficiency in a process that is GMP-compatible, while CC-115 had a variable effect. Importantly, PI-103 and samotolisib do not negatively impact cell viability, fold-expansion nor T cell phenotype and we conclude that they are suitable for the generation of gene-modified T cells for clinical use.
著者: Melita Irving, E. Dzafo, M. Hafezi, G. M. P. Giordano Attianese, P. Reichenbach, S. Grillet, K. Scholten, G. Coukos, B. Gentner
最終更新: 2024-10-22 00:00:00
言語: English
ソースURL: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.10.18.618985
ソースPDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.10.18.618985.full.pdf
ライセンス: https://creativecommons.org/licenses/by-nc/4.0/
変更点: この要約はAIの助けを借りて作成されており、不正確な場合があります。正確な情報については、ここにリンクされている元のソース文書を参照してください。
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