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Nuovi Approcci nella Ricerca sulla Struttura delle Proteine

I progressi nella ricerca sulle proteine migliorano la comprensione delle forme e delle funzioni.

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Le proteine sono molecole vitali che svolgono tante funzioni nel nostro corpo, come combattere le infezioni e accelerare le reazioni chimiche. Il modo in cui una proteina funziona spesso dipende dalla sua forma. Una proteina può cambiare forma, adottando diverse configurazioni che possono influenzare le sue interazioni con altre molecole. Però, studiare queste forme può essere complicato.

L'Importanza della Struttura delle Proteine

I ricercatori hanno cercato di creare modelli dettagliati delle proteine per vedere come le loro forme siano collegate alle loro funzioni. Questi modelli aiutano gli scienziati a progettare nuovi farmaci e a comprendere le malattie. Nonostante i grandi progressi nel definire le strutture di alcune proteine usando tecniche avanzate di imaging, restano delle sfide nel collegare queste strutture a come le proteine funzionano nella vita reale.

Usare Nuovi Strumenti per Studiare le Proteine

Un metodo promettente per studiare le proteine è una tecnica chiamata trasferimento di energia di risonanza di Förster a singola molecola (SmFRET). Questo metodo consente ai ricercatori di osservare come le proteine cambiano forma utilizzando due marcatori speciali che possono segnalare le distanze tra le parti della proteina. Misurando la luce emessa da questi marcatori, gli scienziati possono raccogliere informazioni sulle distanze e i movimenti delle diverse parti della proteina.

La Sfida dei Dati Sparsi

Anche se lo smFRET è uno strumento potente, ha i suoi limiti. Ogni esperimento esamina solo una piccola parte della proteina e non riesce a fornire un quadro completo. Per questo, alcune forme e movimenti delle proteine potrebbero sfuggire. I ricercatori spesso devono effettuare molti esperimenti per comprendere l'intera gamma di forme che una proteina può assumere, il che può essere lungo e complicato.

Combinare Esperimenti e Simulazioni

Per superare alcune di queste limitazioni, i ricercatori stanno combinando i dati sperimentali dallo smFRET con simulazioni al computer. Facendo questo, sperano di creare modelli più accurati delle strutture proteiche che considerino come le proteine cambiano forma dinamicamente. Questa fusione di dati reali e previsioni simulate può portare a migliori intuizioni su come funzionano le proteine.

Il Ruolo della Cinematica nelle Misurazioni

Un'area che è stata trascurata negli studi precedenti è il timing delle misurazioni effettuate durante gli esperimenti di smFRET. Ogni misurazione media le forme e i movimenti che avvengono in un intervallo di tempo specifico. Se una proteina cambia forma rapidamente, quelle variazioni possono essere mediate, portando a una comprensione meno accurata di come si comporta. Ora i ricercatori si stanno concentrando su come questa media temporale possa influenzare i risultati degli studi sulle proteine.

Migliorare l'Accordo tra Dati e Simulazioni

Per migliorare il collegamento tra i risultati sperimentali e le simulazioni, i ricercatori hanno sviluppato metodi per tenere conto degli effetti della media temporale quando si prevedono distanze e interazioni nelle proteine. Applicando queste nuove tecniche ai sistemi proteici reali, scoprono che le previsioni delle simulazioni al computer si allineano molto meglio con i risultati sperimentali.

Case Studies nella Ricerca sulle Proteine

Per illustrare l'efficacia di questo nuovo approccio, i ricercatori hanno studiato tre diverse proteine. La prima è l'Apolipoproteina E4, che presenta sia regioni stabili che flessibili. La seconda è la Lisozima T4, una proteina ben strutturata. La terza è l'ammiloide-β40, una proteina disordinata. Ognuna di queste proteine presenta sfide uniche e applicare aggiustamenti sulla media temporale migliora significativamente l'accuratezza delle previsioni per ciascuna.

Risultati dall'Apolipoproteina E4

L'Apolipoproteina E4 è nota per il suo ruolo nel trasporto del colesterolo ed è legata alla malattia di Alzheimer. I ricercatori hanno usato lo smFRET per misurare le distanze tra parti specifiche di questa proteina. Hanno scoperto che non considerare i rapidi movimenti della proteina portava a previsioni inaccurate. Quando hanno incluso la media temporale nei loro modelli, le previsioni si sono allineate meglio con i dati sperimentali, rivelando di più sulle diverse forme che la proteina può adottare.

Intuizioni Ottenute dalla Lisozima T4

La Lisozima T4 è una proteina più stabile, rendendola un buon candidato per testare queste nuove tecniche di modellazione. Misurando le distanze tra le parti della proteina con smFRET e includendo la media temporale nelle simulazioni, i ricercatori sono riusciti a far combaciare meglio i risultati sperimentali. Questo ha mostrato che considerare la velocità con cui la proteina cambia forma era essenziale per previsioni accurate.

Le Sfide con l'Ammiloide-β40

L'ammiloide-β40 è una proteina problematica spesso associata alla malattia di Alzheimer ed è conosciuta per avere una struttura disordinata. La sua natura flessibile rende difficile una modellazione accurata. I ricercatori hanno scoperto che anche dopo aver tenuto conto della media temporale, le variazioni nei Campi di Forza usati nelle simulazioni portavano a discrepanze tra i comportamenti previsti e osservati della proteina. Questo ha evidenziato l'importanza di utilizzare i giusti parametri di simulazione quando si studiano proteine disordinate.

L'Importanza dei Campi di Forza

Nel contesto delle simulazioni proteiche, i campi di forza sono modelli matematici che descrivono come gli atomi interagiscono all'interno della proteina. Scegliere il giusto campo di forza è cruciale perché può influenzare significativamente i risultati della simulazione. Per l'ammiloide-β40, i ricercatori hanno trovato che alcuni campi di forza fornivano previsioni migliori sul suo comportamento rispetto ad altri, influenzando l'accordo tra simulazioni ed esperimenti.

Scoprire Nuove Strutture Proteiche

Una scoperta interessante durante gli studi è stata riguardo alla Lisozima T4. I ricercatori hanno notato una piccola popolazione di forme proteiche che non erano state precedentemente osservate negli studi strutturali classici. Questa scoperta li ha portati a condurre simulazioni mirate per esplorare queste nuove forme, suggerendo il potenziale di scoprire aspetti precedentemente sconosciuti del comportamento delle proteine.

Direzioni Future nella Ricerca sulle Proteine

L'approccio combinato di usare smFRET e simulazioni considerando la media temporale apre nuove strade per comprendere le proteine. Questo può portare a una migliore progettazione di farmaci e terapie, fornendo intuizioni su come funzionano le proteine in salute e malattia.

Conclusione

Lo studio delle proteine e delle loro funzioni è un campo complesso. Usando tecniche sperimentali avanzate e simulazioni sofisticate, i ricercatori possono ottenere una comprensione più profonda delle forme e dei movimenti delle proteine. Considerare il timing delle misurazioni e migliorare i metodi di simulazione può migliorare notevolmente l'accuratezza delle previsioni. Questo lavoro non solo aiuta a comprendere specifiche proteine, ma apre anche la strada a applicazioni più ampie in biologia e medicina. Con l'evoluzione di modelli e metodi sempre più sofisticati, possiamo aspettarci continui progressi nella nostra comprensione della dinamica delle proteine e delle loro implicazioni per la salute e la malattia.

Fonte originale

Titolo: Accounting for fast vs slow exchange in single molecule FRET experiments reveals hidden conformational states

Estratto: Proteins are dynamic systems whose structural preferences determine their function. Unfortunately, building atomically detailed models of protein structural ensembles remains challenging, limiting our understanding of the relationships between sequence, structure, and function. Combining single molecule Forster resonance energy transfer (smFRET) experiments with molecular dynamics simulations could provide experimentally grounded, all-atom models of a proteins structural ensemble. However, agreement between the two techniques is often insufficient to achieve this goal. Here, we explore whether accounting for important experimental details like averaging across structures sampled during a given smFRET measurement is responsible for this apparent discrepancy. We present an approach to account for this time-averaging by leveraging the kinetic information available from Markov state models of a proteins dynamics. This allows us to accurately assess which timescales are averaged during an experiment. We find this approach significantly improves agreement between simulations and experiments in proteins with varying degrees of dynamics, including the well-ordered protein T4 lysozyme, the partially disordered protein apolipoprotein E (ApoE), and a disordered amyloid protein (A{beta}40). We find evidence for hidden states that are not apparent in smFRET experiments because of time averaging with other structures, akin to states in fast exchange in NMR, and evaluate different force fields. Finally, we show how remaining discrepancies between computations and experiments can be used to guide additional simulations and build structural models for states that were previously unaccounted for. We expect our approach will enable combining simulations and experiments to understand the link between sequence, structure, and function in many settings.

Autori: Gregory R Bowman, J. J. Miller, U. L. Mallimadugula, M. I. Zimmerman, M. D. Stuchell-Brereton, A. Soranno

Ultimo aggiornamento: 2024-06-03 00:00:00

Lingua: English

URL di origine: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.06.03.597137

Fonte PDF: https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.06.03.597137.full.pdf

Licenza: https://creativecommons.org/licenses/by-nc/4.0/

Modifiche: Questa sintesi è stata creata con l'assistenza di AI e potrebbe presentare delle imprecisioni. Per informazioni accurate, consultare i documenti originali collegati qui.

Si ringrazia biorxiv per l'utilizzo della sua interoperabilità ad accesso aperto.

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